禽腺病毒AH株的分離與鑒定

趙瑞宏 ， 張丹俊 ， 戴 銀 ， 沈學懷 ， 潘孝成 ， 胡曉苗 ， 侯宏艷 ， 周學利

(安徽省農業科學院畜牧獸醫研究所，安徽 合肥 230031)

禽腺病毒AH株的分離與鑒定

趙瑞宏 ， 張丹俊 ， 戴 銀 ， 沈學懷 ， 潘孝成 ， 胡曉苗 ， 侯宏艷 ， 周學利

(安徽省農業科學院畜牧獸醫研究所，安徽 合肥 230031)

為獲得禽腺病毒毒株，將臨床疑似Ⅰ群禽腺病毒感染病例的肝組織，通過接種SPF雞胚進行病毒分離，用PCR方法對分離產物進行擴增，將PCR產物進行序列測定，對測定的序列在NCBI網上進行分析，結果顯示，從病料可分離出病毒，用PCR方法特異性地擴增出了與設計片段大小相一致的片段，序列分析表明，分離株序列與禽腺病毒SD1-15分離株序列同源性99%，說明分離株為Ⅰ群禽腺病毒血清4型。

禽腺病毒 ； 分離 ； 鑒定

Ⅰ群禽腺病毒病最早于1987年發生于臨近巴基斯坦卡拉奇的安格拉地區，因此又稱“安格拉病”。在短短一年內，本病迅速傳播到巴基斯坦地區的多數肉仔雞群。我國1988年山東即有Ⅰ群禽腺病毒的報道[1]，近兩年病毒毒力增強，能引起3～6周齡雞群發病，病死率超過30%，2015年，安徽淮北發現有雞群感染Ⅰ群禽腺病毒，2016年蔓延至淮南、合肥等地區，現將該病實驗室檢驗情況報告如下。

1 材料與方法

1.1 材料 UNlQ-10柱式病毒基因組DNA抽提試劑盒，購自上海生工生物工程技術服務有限公司；2×TaqMastermix和MarkerⅦ,購自天根生化科技(北京)有限公司；0.22 μm一次性濾器，購自Millipore公司；其他化學試劑均為國產分析純。雞胚購自山東無特定病原雞實驗種雞場的SPF種蛋孵化至9～11日齡。20日齡SPF雞為SPF種蛋孵化后隔離飼養。

病料采自安徽省淮北、淮南和合肥等地區的多個養雞場發病雞群。

1.2 方法

1.2.1 臨床癥狀及剖檢觀察 記錄2015年11月以來，送檢至本所獸醫臨床診斷指導中心的發病雞的臨床癥狀及其病理變化。

1.2.2 細菌學檢測 無菌采取病(死)雞的肝臟、脾臟、腎臟組織，接種于普通營養瓊脂、麥康凱瓊脂、鮮血瓊脂平板等培養基，置37 ℃溫箱培養。

1.2.3 病料的采集與病毒分離[2]采集病雞肝臟、脾臟和腎臟，按1∶4加滅菌生理鹽水研磨成乳狀，凍融3次，8 000 r/min離心10 min，取上清，加入終濃度為2 000 IU/mL(μg)青霉素和鏈霉素 37 ℃作用1 h后，0.22 μm微孔濾膜除菌。尿囊腔接種9日齡SPF雞胚，每胚接種0.2 mL，37 ℃孵化，收集24 h～120 h死亡雞胚的尿囊液。

1.2.4 分離毒血凝性測定 按文獻[3]介紹的方法對分離的雞胚尿囊液進行血凝性測定。

1.2.5 病毒核酸的提取 分別取200 μl死亡雞胚尿囊液和對照雞胚尿囊液，按UNlQ-10柱式病毒基因組DNA抽提試劑盒說明書所述方法提取病毒DNA，-20 ℃保存備用。

1.2.6 PCR檢測[4]參照GenBank上登錄的腺病毒SDSX-15株(登錄號：KU877435.1)的序列，應用DNAStar設計引物，上游引物：5′-GATGCGCGGGTGGTCCTTC-3′，下游引物：5′-AGTTGTTGCGCACGGCTTCC-3′，由上海生工生物工程技術服務有限公司合成。

PCR擴增：取2×TaqPCR Master Mix 12.5 μL，上、下游引物(20 mmol/L)各1.0 μL，病毒DNA 2.0 μL，ddH2O 8.5 μL混勻。PCR反應程序：94 ℃預變性5 min；94 ℃變性30 s，52 ℃退火30 s，72 ℃延伸30 s，35個循環；72 ℃延伸10 min。1%瓊脂糖凝膠電泳分析擴增效果。

1.2.7 序列測定與比對 將PCR產物送上海生工生物工程技術服務有限公司進行測序，用BLAST(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi) 進行同源性檢索。

1.2.8 動物回歸試驗 SPF種蛋孵化后隔離飼養至20日齡分成兩組，每組10只，攻毒組經肌肉注射接種雞胚尿囊液毒，對照組接種滅菌生理鹽水，接種劑量均為0.2 mL/只。觀察并記錄攻毒組和對照組雞群在接種后的精神狀態、采食量和死亡情況，剖檢并觀察死亡雞的病理變化。

2 結果與分析

2.1 臨床特征 主要臨床癥狀表現為：4-6周齡突然發病，精神沉郁，羽毛松亂，腹瀉，貧血，消瘦，最后死亡。

剖檢病變主要見于心臟和肝臟，表現心包積液，膠胨樣(見中插彩版圖1)，肝臟腫大、質脆、易碎，有的會出現肝周炎；脾臟有白色壞死點，氣管常有較多黏液，肺臟淤血，腎呈樹枝狀充血；有的腺胃有出血點。

2.2 病毒分離 病料接種各種培養基平板，在 37 ℃培養72 h后，均無細菌生長。病料接種雞胚后，雞胚在72 h后出現死亡，收集72 h～120 h死亡的雞胚尿囊液。將此分離毒株命名為Anhui(簡稱AH)。

2.3 尿囊液血凝性測定 收獲的雞胚尿囊液作常規血凝試驗(HA)，結果顯示,所收集的尿囊液均無血凝性，證明不是禽流感和新城疫等有血凝活性的病毒。

2.4 PCR檢測 用腺病毒特異性的的引物進行PCR擴增，在1%瓊脂糖凝膠電泳，雞胚尿囊液和雞病料均可見1條大小約為500 bp的特異條帶(見圖2)。

圖2 PCR產物的電泳結果

2.5 序列測定與比對 將測得的基因序列用BLAST(http:// blast. ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi) 進行同源性檢索，結果表明,所測序列與腺病毒SD1-15株、SDXT4-15株和SDSX1株序列相似性為99%(見圖3)。

圖3 所測序列檢索結果

2.6 動物回歸試驗 攻毒組雞群第2天出現精神沉郁,羽毛蓬亂,采食量減少，第3天死亡2只，第4天死亡1只。對照組沒有死亡，精神正常，采食量未發生變化。剖檢死亡雞只可見心包積液，肝腫大、淤血,呈土黃色,質脆易碎,與禽腺病毒感染雞剖檢病變一致。

3 討論

3.1 Ⅰ群禽腺病毒能引起鵪鶉支氣管炎以及雞包涵體肝炎[5-6]，也可以導致心包積水綜合征(HPS),在3～5周齡的肉雞中常出現[7-9]。Adrych K認為,禽腺病毒有可能引起人以及動物的肥胖[10-11]。我國1988年山東即有Ⅰ群禽腺病毒的報道[1]，近兩年病毒毒力增強，能引起3～6周齡雞群發病，病死率超過30%，2015年蔓延至安徽淮北地區，2016年淮南、合肥等地區均有發生，本研究通過細菌培養、雞胚接種、PCR鑒定和測序，說明所分離的病毒為Ⅰ群禽腺病毒血清4型，為Ⅰ群禽腺病毒疫苗的研制打下基礎。

3.2 在引物設計時，根據鄰近省份流行株進行設計，由于分離株與流行株相近，故更容易擴增出預期片段。同時由于分離株與流行株相近，用其生產滅活疫苗或培育弱毒疫苗用于免疫雞群，將會對雞群起到更好的保護作用。

3.3 從流行情況看，本次疫情擴散快，流行范圍廣，在短短半年時間內就迅速波及至全省，這也與新發病特點相符，由于雞體內缺乏抵御新發病的中和抗體，一旦感染即會迅速傳播。從送檢的病例可以看出，本病一年四季均有發生，發病的主要是一些中小型企業及散養戶，說明中小型企業及散養戶在平時的飼養管理和生物安全方面重視不夠，仍需進一步加強。

3.4 防控方面，從中國獸醫藥品監察所官網查詢可知，針對Ⅰ群禽腺病毒的疫苗，還無生產批文。控制此病主要依靠生物安全措施：(一)控制人員和車輛流動，加強雞場周圍及人員和車輛的衛生消毒工作，努力把該病控制在雞場之外；(二)加強飼養管理，做好常規疫苗免疫工作，提高飼料營養水平，增強雞體的抵抗力；(三)一旦發病，要立即采取隔離消毒措施，避免病毒在雞群中擴散。

[1] 國紀壘，I群禽腺病毒山東株的分離鑒定及其致病性研究[D]．泰安：山東農業大學，2012．

[2] 趙瑞宏，侯宏艷，張丹俊，等．鴨黃病毒AH01株的分離與鑒定[J]．中國獸醫科學，2012，42(05)：473-477．

[3] 殷震，劉景華．動物病毒學[M]．2版．北京：科學出版社，1997： 204-209，343-353．

[4] 薩姆布魯克J，拉塞爾D W，著．分子克隆實驗指南[M]．黃培堂，王嘉喜，朱厚礎，等譯．3版．北京：科學出版社，2002：614-616．

[5] Christensen N，Saifuddin M．Aprimary epidemic of inclusion body hepatitis inbroilers[J]．Avian Dis，1988，33(5)：622-631．

[6] Bauer H J，Logeman K，Hauschild S，etal．Avian adeno-associated virus and fowl adenovirus: Studies of viral interactions in chicken cell cultures[J]．Avian Pathol，1986，15(4)：355-356．

[7] Yates V J，Fry D，Rhee Y O．Serological response of chickens exposed to a typeⅠavian adenovirus alone or incombination with the adeno-assoeiated virus[J]．Avian Dis，1977，21(4)：407-413．

[8] Emy K，Sheppard M，Pallister J．Immunological and molecular comparison of fowl adenovirus serotype 4 and 10 [J]．Arch Virol，1995，140(4)：491-501．

[9] Van Den Ende，Kipps A，Don P．The isolation in eggs of a new filtrable agent which may be the cause of bovine lumpy skin disease[J]．J Gen Microbiol，1949，3(3)： 174-182．

[10] Adrych K．Can obesity be infeetious[J]．Przegl Lek，2005，62(9)：916-8．

[11] Jaworowska A，Bazylak G．Obesity development associated with viral infections [J]．Postepy Hig Med Dosw，2006，60：227-236．

IsolationandIdentificationofFowlAdenovirusAHStrain

ZHAO Rui-hong ， ZHANG Dan-jun ， DAI Yin ， SHEN Xue-huai ， PAN Xiao-cheng ， HU Xiao-miao ， HOU Hong-yan ， ZHOU Xue-li

(Institute of Animal Husbandry and Veterinary Medicine,Anhui Academy of AgriculturalSciences, Hefei 230031,China)

In order to obtain the virus of fowl adenovirus,liver tissue collected from chicken with clinical suspected fowl adenovirus infection. we isolate virus throughinoculate collected specimens to SPF chicken embryo,and then identify the collected specimens and chicken embryo allantoic fluid using PCR. The PCR product was sequenced.The results showed that the allantoic fluid was PCR positive for duck flavivirus. The sequence was 99% identity between tested virus and fowl adenovirus 4 isolate SD1-15 hexon protein gene.This indicated that the isolated virus was fowl adenovirus.

fowl adenovirus ； isolation ； identification

ZHANG Dan-jun

S855.3

A

0529-6005(2017)10-0045-03

2016-12-19

國家蛋雞產業技術體系合肥綜合試驗站項目(CARS-41-S13)

趙瑞宏(1973-)，男，副研究員，碩士，主要從事畜禽傳染病學研究,E-mail:zrhkdy@aliyun.com

張丹俊，E-mail: zhangdj694@sina.com