劉 哲, 許園園, 婁麗娜, 蘇小俊
(江蘇省農業科學院蔬菜研究所/江蘇省高效園藝作物遺傳改良重點實驗室,江蘇南京 210014)
miRNA是一種非編碼小RNA,總長度為20~22個核苷酸,存在于生物體內[1-2]。1993年第1個miRNA(lin-4miRNA)基因在線蟲(Caenorhabditiselegans)中被發現,直到2002年第1個植物miRNA被發現[3-4],對植物miRNA的研究才逐漸得到世界各國科研人員的關注。雖然對植物miRNA的研究從21世紀初才開始,與動物miRNA的研究相比還存在一定差距,但隨著miRNA研究方法的不斷更新以及專業儀器設備的更新換代,植物miRNA被發現的數量也不斷增加,種類也不斷豐富。目前,已經在擬南芥(ArabidopsisthalianaL.)、煙草(Nicotianatabacum)、水稻(OrzasativaL.)、絲瓜屬(Luffaspp.)、玉米(ZeamaysL.)、普通小麥(TriticumaestivumL.)、蕨類(Pteridophyta)等植物中陸續發現了不同數量和類型的miRNA[5-12]。
miRNA的生物進化過程在植物中是相對保守的,并且在植物和動物中有較大的同源性,使得其在結構和功能上有較大的相似性[13]。MIR基因編碼植物miRNA,且在擬南芥中,大部分MIR基因位于基因間隔區[14]。miRNA的生物合成可分為以下幾步:(1)MIR基因在RNA聚合酶Ⅱ的作用下轉錄形成miRNA初級轉錄物pri-miRNA[15]。pri-miRNA結構中含有1個特殊結構,即不完全的雙鏈發夾結構,該結構能夠被核糖核酸酶Ⅲ(RNase Ⅲ)家族蛋白DICER-LIKE 1(DCL1)特異性識別并加工為miRNA前體[13,16]。(2)在DCL1等蛋白的作用下,pre-miRNA頸環結構被去掉,進而形成具有miRNA/miRNA*復合體結構的雙鏈miRNA[14]。(3)在解旋酶作用下,該雙鏈miRNA在細胞質中被分解為2條單鏈,而miRNA在ARGONAUTE 1(AGO1)復合體的作用下得以保留,進一步形成能作用于靶基因miRNA誘導的沉默復合物(RNA-induced silencing complex,簡稱RISC)[17]。然后,miRNA被降解,但是有研究表明,有些miRNA并不會被降解[18]。
作物產量的提高和品質的提升可受到逆境脅迫的影響,國內外科研人員正試圖揭示這一復雜的植物生長發育機制,關于其生物學機制的研究也越來越得到重視。近年來眾多研究表明,miRNA在植物脅迫響應和抗逆性提高等方面具有十分重要的作用[5,19]。研究發現,在逆境脅迫因子誘導下,植物體內會形成miRNA誘導沉默復合物,這些復合物能與靶mRNA通過互補配對結合,進而調節其相應靶基因mRNA的表達,從而有效調控下游與抵抗脅迫相關基因的表達,引起與相應抗逆性相關代謝產物的增多或減少,實現對逆境的適應。在調控靶基因時,1個miRNA可以調控多個靶基因,如在擬南芥中基因pho2和UBC24均可受miRNA399調控[20];同時1個靶基因可受多個miRNA調控,如馮浩研究發現,興資9104的條銹病抗/感性狀是多條miRNA共同調控的結果[21]。
植物組織中的一些miRNA受幾種不同非生物脅迫的誘導。miR169家族包含17個miRNA,它們具有9種不同的序列結構,干旱脅迫時,擬南芥通過抑制miR169a與miR169c的表達來提高抗旱性,但在水稻中,miR169g主要在根部和莖部表達,以提高水稻的抗旱性[22]。Kantar等利用 RT-PCR的方法研究發現,大麥葉片中Hvu-miR156a、Hvu-miR166、Hvu-miR171、Hvu-miR408的表達量在受到脫水處理后明顯增加[23];另外,利用miRNA芯片技術對小麥研究發現,經過不同時間的干旱處理后,根和葉中都有miRNA表達且表達量遠高于對照[24]。在缺水處理時,蒺藜狀苜蓿(Medicagotruncatula)芽和根中的miR398a/b和miR408表達量明顯增加,而COX5b的表達受到抑制,說明編碼銅蛋白的COX5b可響應缺水脅迫[25]。在低溫誘導下,毛果楊miR168、miR477以及擬南芥miR169、miR171、miR172、miR408等表達量明顯增加,但毛果楊miR156、miR475、miR476的基因表達量降低[26]。研究發現,在擬南芥中miR417的表達受鹽害脅迫調節,其過量表達可提高擬南芥的抗鹽性[27-28]。同一種miRNA在不同的生理環境下發揮的作用不同,如利用基因沉默技術研究發現,miR395通過靶定腺苷5′-磷酰硫酸(adenosine 5′-phosphoryl sulphuric acid,簡稱APS)和AST68參與調節硫酸鹽在植物體內的積累和配置,而在高鹽和干旱脅迫下的煙草(Nicotianatabacum)中,miR395的表達量明顯提高[29]。
一些植物miRNA的表達可受重金屬脅迫的影響。Ding等利用生物芯片對鎘脅迫下水稻miRNA的表達進行分析發現,水稻中存在19個與鎘應答相關的miRNA,其中miR528的表達量在鎘脅迫下增加,miR162、miR168、miR396等的表達量下降[30]。在低硫的誘導下,擬南芥miR395的表達明顯受到抑制[31]。植物中響應銅(Cu)脅迫的轉錄水平調控因子是miR398,在土壤高濃度Cu的脅迫下,miR398誘導超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,簡稱SOD)基因過量表達,合成更多的Cu/鋅(Zn)-SOD酶,從而使銅離子流向SOD,降低銅離子的含量和毒害,使得植物體內的銅離子達到平衡。
miR156和miR172家族在調控植物開花過程中具有重要作用,同時,它們也是年齡途徑的重要組成成員[32-33]。其中miR172在葉片和花蕾中的豐度隨著植物年齡的增大不斷增加,而miR156在胚胎和早期植物幼苗中的表達量較高,且隨著植物年齡的增大而降低[34]。
在擬南芥中,與開花相關的miR156家族包括miR156a~miR156j共10個成員[32],它們能靶向作用于17個SPL(squamosa promoter-binding potein-like)轉錄因子中的11個,并通過轉錄切割的方式下調這些SPL基因的表達。過表達miR156的植株表現出開花延遲和幼年階段延長等現象[33]。同時,在其他作物如水稻、番茄、玉米中過表達miR156也表現為開花延遲,表明miR156在控制開花的作用上是相對保守的[35-37]。
miR172家族包括miR172a~miR172e共5個成員,它們主要在miR156下游抑制開花[38]。通過核染色質免疫共沉淀技術驗證發現,miR156靶向基因為SPL9和SPL10,是miR172b的直接轉錄激活子,同時SPL9過表達轉基因株系中miR172的表達水平明顯升高[39]。在擬南芥中,miR172有6個靶基因,分別為AP2、TOE1、TOE2、TOE3、SMZ、SNZ[32],這些基因是典型的開花抑制子,并且被miR172在轉錄水平抑制[40-41]。此外miR172的過表達也會導致FT、LFY、AP1等上調表達,同時,SMZ和TOE1也能調控FT基因表達[38]。
miR159靶向作用于MYB轉錄因子,而miR319靶向作用于TCP轉錄因子,它們在功能上有一定的冗余[42]。在擬南芥中,MYB33、MYB65、MYB101主要受miR159家族miR159a~miR159c 3個成員的調控[43]。有研究表明,miR159能參與調控植物開花中的赤霉素途徑,能夠促進擬南芥在短日照下開花[32]。TCP2、TCP3、TCP4、TCP10、TCP24 等5個靶基因主要受miR319家族中miR319a~miR319c等3個成員的調控[44]。過表達miR319的擬南芥植株在長日照條件下呈現出晚花現象[45],此外,失去TCP4基因功能的突變體植株也呈現出晚花現象[46],進一步證明miR319在植物開花的控制過程中起到了重要作用。近年來,大量miRNA被發現與植物開花的時間調控有關,如miR390家族和miR399家族[42,47]。
關于絲瓜及絲瓜所屬的葫蘆科miRNA的研究起步較晚。凌鍵利用重測序的單核苷酸多態性(single nucleotide polymorphisms,簡稱SNP)數據分析了黃瓜miRNA位點的遺傳多樣性[48]。李超漢發現,NAM基因家族是miR164的靶標基因,可調控植物的生長發育,通過利用高通量測序與生物信息學手段研究發現,miRNA參與黃瓜嫁接苗對干旱、高鹽、缺氮、缺磷脅迫的應答[49]。梁超瓊等研究發現,植物抗病過程和生長過程中的MYB類轉錄因子主要受miR159和miR858調控[50]。郭清利對黃瓜葉片小RNA進行測序分析,在黃瓜葉片中共預測到82個miRNA,其中保守、非保守miRNA分別為42、40個,其中48個為首次發現的miRNA[51]。劉娜等通過Solexa測序分析發現,嫁接能夠影響植物的生長發育,并能提高植物對脅迫的抗性[52]。Chen等利用下一代測序技術對絲瓜品種YLB05(耐褐變)和XTR05(易褐變)的基因表達譜進行分析,獲得9.1 GB有效數據,提供了全面的轉錄組序列資源[9]。這些研究成果促進了絲瓜miRNA的研究,也為絲瓜耐褐變遺傳育種的深入研究提供了新的思路,相信隨著研究人員的不斷努力和生物信息學等新技術的發展,絲瓜miRNA的研究會更為全面和深入。