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沉默白細胞介素-1β基因對脊髓鈍挫傷大鼠波形蛋白的影響①

2018-01-31 02:34:57胡析牛英杰黃媛李盈潔曾茜向陽張曉梁楠
中國康復理論與實踐 2018年1期

胡析,牛英杰,黃媛,李盈潔,曾茜,向陽,張曉,梁楠

1.成都醫學院,a.臨床醫學院;b.檢驗醫學院;c.基礎醫學院實驗教學中心,四川成都市610500

脊髓損傷是中樞神經系統常見的外傷,常由于車輛事故、高空墜落等造成,給患者、家庭和社會帶來巨大的心理壓力和沉重的經濟負擔[1-2]。脊髓初期機械性損傷導致脊髓缺血、缺氧、水腫、炎癥、脂質過氧化和自由基損傷等二次損傷,其中炎癥反應是導致神經損傷和功能喪失的重要原因[3-4]。

白細胞介素-1β (interleukin-1β,IL-1β)是一種重要的炎性因子,可介導中性粒細胞浸潤,引起白細胞聚集,刺激白細胞、內皮細胞等表達黏附分子,進而導致過度的炎癥反應和脊髓缺血,還能促進自由基和興奮性氨基酸等神經毒性物質的產生和釋放[5-6]。IL-1β在脊髓損傷早期過量表達,參與急性脊髓損傷發生發展過程,加重炎癥反應,造成組織損傷,誘導神經細胞的凋亡[7-8]。

波形蛋白(vimentin,Vim)是目前已知表達最廣泛的Ⅲ型中間絲蛋白,與微管、微絲一起構成細胞骨架,與中樞神經系統的分化、發育以及損傷修復等生物學行為密切相關[9]。在脊髓損傷早期,炎癥反應刺激星形膠質細胞進入增殖狀態。星形膠質細胞腫脹、肥大,發生反應性膠質增生,與結締組織等形成膠質瘢痕[10]。在脊髓損傷早期,IL-1β作為炎癥因子不僅加重脊髓缺氧缺血區域的炎癥反應,還會導致神經膠質細胞增生。在脊髓損傷晚期,脊髓膠質瘢痕導致運動功能難以恢復[11]。波形蛋白不僅能維持細胞骨架穩定,還與損傷后膠質瘢痕形成和抑制軸突再生有關[12]。

本研究采用免疫組化技術以及實時定量聚合酶鏈反應(real-time quantitative polymerase chain reaction,RT-qPCR),對波形蛋白表達進行定位和定量研究。利用慢病毒干擾IL-1β基因表達,生物信息學方法預測IL-1β與波形蛋白的關系,了解脊髓損傷后干預IL-1β的表達對脊髓膠質瘢痕的影響。

1 材料與方法

1.1 實驗動物及分組

健康成年Sprague-Dawley大鼠30只,3月齡,雌雄不限,體質量200~220 g,由四川省中醫藥科學院提供,許可證號SCXK(川)2013-19。分籠飼養,溫度20~25℃。大鼠編號,采用Excel生成隨機數,將大鼠分為空載組(n=15)和干擾組(n=15),兩組再分為3 d、7 d和28 d三個亞組,3 d和28 d亞組各3只大鼠,7 d亞組9只大鼠。

1.2 方法

1.2.1 慢病毒質粒的制備

引物和質粒均購自GeneCopoeia。將IL-1βsiRNA序列克隆到紅色熒光蛋白(red fluorescent protein,RFP)標記的載體中,將該載體5μg和慢病毒1μl包裝質粒,共轉染到293T細胞,生成慢病毒質粒。48 h后取含有慢病毒細胞的上清液,置于0.45μm醋酸纖維素過濾器中過濾,除去濾液,取5 ml,4℃、3500 r/min離心25 min,除去上清液,沉淀重新溶解在PBS 500 μl中。-80℃冰箱凍存。

1.2.2 載體注射

大鼠用3.6%水合氯醛腹腔注射麻醉,雄性30 mg/kg,雌性20 mg/kg。俯臥位固定,常規備皮、消毒,背部T9-11水平正中切口,分離筋膜、肌肉,剝除T11棘突及椎板,充分暴露T10節段脊髓。使用DW-5腦立體定位儀(成都泰盟)于T10節段脊髓擬打擊點左右兩側各注射慢病毒質粒5μl(干擾組)或含有空載體的質粒5μl(空載組),進針3~5μm,朝著大鼠尾側進針,與水平線呈45°。依次縫合肌肉、筋膜及皮膚,消毒及抗感染處理后獨籠飼養。

1.3 模型制備

大鼠在注射質粒48 h后,同法麻醉,常規消毒,拆線打開切口,采用Allen法以自行制作的打擊裝置,用10 g沖擊棒自30 mm高處自由墜落,致傷脊髓。逐層縫合傷口。

術后大鼠注射青霉素16萬U、5%葡萄糖氯化鈉溶液2 ml,小心護理,獨籠飼養。每天早晚擠壓大鼠膀胱協助排尿各2次,至排尿反射恢復。注意觀察皮膚有無壓瘡或感染、下肢有無潰爛。室溫維持25~30℃,正常飲食。

大鼠的模型操作和術后護理遵循《關于善待實驗動物的指導性意見》、《實驗動物管理條例》、《醫學實驗動物管理實施細則》的規定。

1.4 免疫組化染色

各組術后3 d、7 d及28 d各取3只大鼠,同法麻醉,俯臥位固定,自左心室插管,剪開右心耳,快速灌注4℃生理鹽水,至肝臟變為黃褐色,再灌注4%多聚甲醛20 min。打開椎弓管,暴露并切除T8、T10、T12脊髓,固定48 h后放入自動脫水包埋機,常規制備石蠟切片,厚5μm,取連續5張貼片、烤片。

酶免疫組化染色采用SP法。烤片、脫蠟及水化,高壓熱抗原修復,3%H2O2封閉內源性過氧化酶,正常山羊血清封閉非特異性抗原。加波形蛋白一抗(1∶200,武漢博士德)4℃過夜;次日取出復溫,0.01 mol/L PBS漂洗,依次加入SP試劑(SP-9001,北京中杉金橋)B液與C液,37℃孵育,間隔使用PBS漂洗;配制DAB-H2O2顯色液,室溫下反應。顯微鏡下顯色充分,及時用0.01 mol/L PBS終止反應。蘇木素復染,1%鹽酸-酒精分色,自來水返藍,梯度灑精逐級脫水,二甲苯透明,樹膠封片。OLYMPUS光學顯微鏡400倍下觀察免疫陽性反應物分布情況。

1.5 RT-qPCR

術后7 d大鼠6只同法麻醉,以損傷段為中心,取出損傷段脊髓1 cm,-80℃冰箱保存。脊髓放入經過DEPC水處理過后的玻璃勻漿器中,經Trizol、氯仿、異丙醇、75%乙醇處理,得到總RNA,去核酸水30μl溶解,保存于-80℃冰箱。取所得RNA經全波長酶標儀(Thermo,1510)測量OD值,檢測其純度合格后,按說明書進行逆轉錄合成cDNA(Revert AidTMFrist Strand cDNA Synthesis Kit,MBI公司),然后進行引物擴增。擴增參數:95℃2 min,95℃15 s,52℃20 s,60 ℃ 40 s, 45個循環。讀取Ct,按2-ΔΔCt計算出相對含量。

引物如下:

IL-1β:正向 5'-GAG CTG AAA GCT CTC CAC C-3';逆向 5'-TTCCATCTTCTTCTTTGGGT-3'。

波形蛋白:正向5'-CTC TGC CAC TCT TGC TCC TGG A-3';逆向5'-AAA TAT CTG ACC AAC TTGTTA C-3'。

β-actin:正向 5'-GAA GAT CAA GAT CAT TGC T-3';逆向 5'-TACTCCTGCTTGCTGATCCA-3'。

1.6 生物信息學分析

通過http://www.genemania.org/進行搜索。物種選擇H.sapiens(human)和R.norvegicus(rat),目的基因選擇IL-1β和波形蛋白。

1.7 統計學分析

采用SPSS 18.0統計軟件處理數據。數據以(xˉ±s)表示,采用獨立樣本t檢驗。顯著性水平α=0.05。

2 結果

2.1 生物信息學分析

2.1.1 人類基因

IL-1β與肌聯蛋白(Titin,TTN)存在共同表達關系,與IL-1受體1(IL1R1)位于同一信號通路,擁有相同的物理反應結構域。波形蛋白與IL1R1共表達,與TTN存在共同表達,并位于同一信號通路中。見圖1。

2.1.2 大鼠基因

波形蛋白與IL-18、CXC類趨化因子10(C-X-C motif chemokine ligand 10,CXCL10)、S100鈣結合蛋白A8(S100 calcium binding protein A8,S100A8)、S100A9、受體相互作用蛋白激酶-3(receptor interacting serine/threonine kinase 3,RIPK3)、趨化因子C-C配體3(C-C motif chemokine ligand 3,CCL3)存在共同表達關系。波形蛋白與CXCL2和磷脂酶A2-ⅣA(Phospholipase A2 Group IVA,PLA2G4A)存在共同表達和共同的物理反應結構域的關系。IL-1β與S100A8、S100A9、CCL3、CXCL2、PLA2G4A、CXCL1、細胞間黏附分子1(intercellular adhesion molecule 1,ICAM1)存在共同表達。IL-1β與IL18存在共同表達和共享蛋白結構域,與CXCL10和RIPK3存在共同表達和共同定位。見圖2。

2.2 免疫組化染色

波形蛋白存在于脊髓前角神經元和神經膠質細胞中。各時間點,干擾組免疫陽性細胞數均低于空載組(P<0.05)。見表1、圖3。

圖1 人類基因中IL-1β與波形蛋白的預測關系

圖2 大鼠基因中IL-1β與波形蛋白的預測關系

表1 各時間點各組脊髓中波形蛋白陽性細胞數比較(/HD)

圖3 各時間點各組脊髓中波形蛋白表達(免疫組化染色,400×)

2.3 RT-qPCR

術后7 d,干擾組波形蛋白mRNA相對表達量(0.279±0.023),較空載組(0.818±0.178)明顯下降(t=6.692,P=0.002)。

3 討論

脊髓損傷是一個破壞性嚴重且病理生理比較復雜的臨床疾病,能夠造成神經再生與功能恢復障礙,可導致運動、感覺和自主神經功能障礙。

本研究顯示,脊髓損傷后,大鼠神經功能改善有限,不足以引起運動功能有意義的改變;波形蛋白主要在脊髓前角神經元和神經膠質細胞中表達;抑制IL-1β表達后,波形蛋白表達明顯下降。

脊髓損傷的功能恢復與神經膠質細胞的功能密切相關。在中樞神經系統,神經膠質細胞分布廣泛,具有支架作用,支持神經元胞體和突起保持一定形態。神經膠質細胞在出生后仍然保持一定的分裂能力[13]。

脊髓損傷后限制神經再生的主要原因有膠質瘢痕形成、抑制性微環境(硫酸軟骨素蛋白聚糖和髓磷脂相關抑制因素)和神經營養支持的缺乏。其中膠質纖維酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GFAP)、波形蛋白和巢蛋白等中間絲蛋白的沉積是主要因素,星形膠質細胞肥大為特征的反應性神經膠質增生[14]。

脊髓損傷后,星形膠質細胞活化與神經炎癥反應密切相關。在炎癥因子等環境條件因子的作用下,靜止的星形膠質細胞被激活,細胞體積肥大、數量增加,細胞間互相連接形成致密網狀結構,過度表達中間絲蛋白,如GFAP和波形蛋白[15-16]。

波形蛋白是哺乳動物中間絲蛋白的一種,表達于間充質細胞、軟骨細胞和內皮細胞,在反應型星形膠質細胞表達上調[17-18]。波形蛋白在形成膠質瘢痕并抑制軸突再生的過程中發揮重要作用[19-20]。

IL-1β是重要的炎癥因子,在脊髓損傷后早期大量釋放,造成脊髓二次損傷[21]。IL-1β主要來源于脊髓損傷局部的神經元和神經膠質細胞。在正常中樞神經系統中幾乎檢測不到IL-1β表達,但損傷后表達增加數倍[22]。宋興華等[23]研究發現,IL-1β在脊髓損傷后30 min表達快速增高,并于損傷后6 h達到高峰,此后逐漸下降。IL-1β參與合成損傷介質,促進機體炎癥反應,導致脊髓損傷局部炎癥和水腫[24],引起脊髓組織潰變和壞死,進而形成脊髓空洞。此外,IL-1β還可能參與細胞凋亡過程[25]。Nesic等[26]研究表明,IL-1β受體拮抗劑可明顯減少脊髓損傷區細胞凋亡。

脊髓損傷后IL-1β對波形蛋白表達可能有影響。GeneMANIA生物信息學分析顯示,IL-1β與波形蛋白存在著多種直接或間接關系。IL-1β是一種重要的炎性介質,在正常脊髓組織中,IL-1βmRNA表達微弱,而在脊髓損傷后3 h表達迅速升高,并于12 h達到峰值;隨后表達逐漸降低[27]。脊髓損傷后,IL-1β可能參與誘導神經膠質細胞增生,促進波形蛋白表達和膠質瘢痕形成;抑制波形蛋白表達可減少瘢痕的形成,促進損傷部位軸突的延伸。

綜上所述,波形蛋白廣泛表達于神經膠質細胞,促進損傷后膠質瘢痕形成。通過調節炎癥因子IL-1β可以影響膠質細胞的增殖和脊髓瘢痕形成,進一步影響脊髓損傷后大鼠功能恢復,為將來臨床治療脊髓損傷提供了可能的治療新靶點。

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