補骨脂酚對UVB誘導HaCaT細胞凋亡因子p53和caspase—3表達的影響

孫琪+樸成玉+陳丹丹等

[摘要]目的：探討補骨脂酚對UVB誘導HaCaT細胞凋亡因子p 53和caspase-3表達的影響及其機制。方法：四甲基噻唑藍[3-（4，5-Dimethyl-2-Thiazolyl）-2，5-Diphenyl Tetrazolium Bromide，MTT]法檢測不同濃度補骨脂酚對正常細胞增殖的影響。實驗設計分為四組，空白組、模型組、雌二醇組及補骨脂酚組。以照射強度0.61mW/cm²，照射時間10min，建立HaCaT細胞凋亡模型；MTT法檢測各組細胞增值率；活性氧（Reactive Oxygen Species，ROS）試劑盒檢測各組細胞中ROS含量變化；線粒體膜電位檢測試劑盒（JC-1）檢測各組細胞線粒體膜電位變化；實時定量PCR（Reverse transcriptional PCR，RT-PCR）檢測各組細胞中caspase-3 mRNA表達水平；蛋白免疫印跡法（Western Blot）檢測各組細胞中p53、caspase-3蛋白表達水平。結果：10^-6mol/L補骨脂酚組細胞增值率無明顯變化（P>0.05），但是可降低ROS含量、線粒體膜電位、caspase-3mRNA表達量、p53及caspase-3蛋白表達量（P<0.05）。結論：補骨脂酚可抑制UVB誘導的HaCaT細胞凋亡，其作用機制主要是通過降低細胞內活性氧的含量、降低細胞線粒體膜電位、抑制p53及caspase-3的表達。

[關鍵詞]補骨脂酚；UVB；HaCaT；凋亡；p53；caspase-3

[中圖分類號]R285.5 [文獻標志碼]A [文章編號]1008-6455（2017）07-0037-04

紫外線包括UVA（長波）、UVB（中波）及UVC（短波）三種不同波長。其中UVB雖然波長短，但是輻射強度大，可以穿透表皮，因此UVB越來越引起人們的關注。紫外線照射劑量超過皮膚承受能力，會引發皮膚炎癥、老化、凋亡甚至皮膚癌。豆科植物補骨脂干燥成熟種子中除了含有補骨脂素及異補骨脂素，還含有少量的補骨脂酚。補骨脂酚是補骨脂揮發油的主要成分，約占60%。研究表明，補骨脂酚具有抗炎、抗氧化、抗菌、抗病毒、抗腫瘤、抗抑郁以及雌激素樣作用。近幾年來，補骨脂酚的研究越來越多，有報道稱，補骨脂酚對成纖維光老化衰老基因具有調控作用，與本實驗研究結果相近。本研究選擇UVB誘導HaCaT細胞凋亡模型作為研究對象，觀察補骨脂酚對UVB誘導HaCaT細胞凋亡因子p53、caspase-3 mRNh及蛋白表達的影響。

1材料和方法

1.1實驗材料：細胞株為人永生化角質形成細胞，來源于上海中喬新舟有限公司。

主要儀器：SS-01B型UVB紫外光療儀（上海希格瑪高技術公司）；MK3型酶標儀（上海熱電儀器有限公司）；SmartChemi500型一體式微型化學發光成像儀（北京賽智創業有限公司）。

試劑：補骨脂酚標準品（成都曼思特生物科技有限公司，批號：MUST-15012210）；雌二醇標準品（中國藥品生物制品檢定所）；DMEM培養液（Hyclone公司，批號：NZM1301）；胎牛血清（FBS）（Hyclone公司，批號：NYB0614）；四甲基噻唑藍（MTT）（Sigma公司，批號：021005）；線粒體膜電位檢測試劑盒（JC-1）（碧云天生物技術）；小鼠抗人β-actin單克隆抗體（北京中杉金橋有限責任公司）；兔抗人p53多克隆抗體（南京恩晶生物科技有限公司）；兔抗人caspase-3多克隆抗體（博奧森生物有限公司）；羊抗小鼠二抗（博士德生物有限公司）；羊抗兔二抗（博士德生物有限公司）。

1.2實驗方法

1.2.1溶液配制：雌二醇溶液配制：將0.23mg雌二醇粉末放入到2ml無水乙醇中進行混合，加入吐溫250μl，再使用DMEM培養液進行10倍稀釋，最終濃度達到1×10^-7mol/L，最后0.22Pm微孔濾膜過濾除菌，-20℃冰箱保存待用。

補骨脂酚溶液配置：精密稱取補骨脂酚2.54mg，用10μl二甲基亞砜（Dimethylsulfoxide，DMS0）將其充分溶解，再加I）MEM基礎培養基定容至10ml，濃度為10^-3mol/L，0.22μm濾膜濾過除去細菌及雜質，DMEM培養液稀釋補骨脂酚，稀釋濃度分別為10 4mol/L、10^-5mol/L、10^-6mol/L、10^-7mol/L、10^-8mol/L、10^-9mol/L、10^-10mol/L、10^-11lmol/L等9個濃度，-20℃冰箱保存待用。

JC-1染色工作液配置：將8ml純水加入到50μl JC-1（200×）中進行混勻，再加入2ml JC-1染色緩沖液（5×）混勻即可。

JC-1染色緩沖液（1×）配置：取3ml JC-1染色工作液（5×）加入12ml純水，混勻，放于冰浴中保存待用。

1.2.2 HaCaT細胞凋亡模型的建立及分組：參照文獻，按每孔15×10³個細胞接種于96孔板，將其分為空白組、模型組、10^-7mol/L雌二醇及10^-6mol/L補骨脂酚組。培養24h后，空白組及模型組分別加入新的培養液繼續培養；10^-7mol/L雌二醇及10^-6mol/L補骨脂酚組分別加入相應的藥物溶液培養。24h后，空白組更換新的培養液，使用鋁箔紙蓋上繼續培養24h；模型組、10^-7mol/L雌二醇及10^-6mol/L補骨脂酚組棄去培養液，分別加入200μl磷酸鹽緩沖液（Phosphate Buffered Solution，PBS）覆蓋，選擇最佳照射時間10min進行照射，棄去PBS后繼續加入新的培養液繼續培養24h。最終，加入20μl MTT及150μl DMSO，酶標儀檢測各組細胞吸光值。endprint

1.2.3細胞增長率測定：參照文獻，取對數生長期細胞，接種于96孔板，培養24h，根據預實驗結果，選定10^-11、10^-10、10^-9、10^-8、10、1^-7、10^-6、10^-4及10^-3mol/L九個濃度補骨脂酚加入96孔板中，繼續培養24h，棄去舊培養液，繼續加入新培養液培養24h，再加入20μl MTT及150μl DMSO，于492nm波長處酶標儀檢測每組間細胞的吸光值。細胞增殖率=給藥組OC值/空白組OD值（其值設為1）×100%。

1.2.4 ROS試劑盒檢測ROS含量：取對數生長期的細胞，消化、離心，接種于6孔板后，進行分組，分別為空白組、模型組、10^-7mol/L雌二醇及10^-6mol/L補骨脂酚組，于37℃5%CO₂培養箱中培養，72h后取出，棄掉培養液，加入1mlDCFH-DA（10μM/L）溶液，放于培養箱孵育20min，每隔5min顛倒混勻一下，使探針和細胞充分接觸。采用無血清的培養液洗滌3次，PBS清洗3次，加入胰蛋白酶進行消化，培養液終止消化，離心，放于1.5ml離心管中，加入1mlPBS重懸細胞，濾網濾過。最后，使用流式細胞儀檢測各組細胞中ROS含量。

1.2.5線粒體膜電位試劑盒檢測各組細胞膜電位變化：建模成功后，收集每組細胞分別放于1.5ml離心管中，參照文獻，每管中分別加入0.5ml培養液及0.5ml JC-1染色工作液混勻，37℃培養箱中孵育20min，加入1ml JC-1染色緩沖液（1×）重懸，6009 4℃離心5min，棄上清，重復2次，再加入1ml JC-1染色緩沖液（1×）重懸，流式細胞儀進行檢測。

1.2.6 RT-PCR測定各組細胞中mRNA表達水平：建模成功后，Trizol試劑、氯仿、異丙醇、75%乙醇提取各組RNA，使用Nano-100微量分光光度計測定RNA純度和濃度，計算所需體積數，按照逆轉錄試劑盒說明書將RNA逆轉錄為eDNA，然后以cDNA為模板進行實時定量PCR。caspase-3引物（F：5-TGGTTCATCCAGTCECl3TG-3，R：5-ATTCTGTTGCCAC-TITTCG-5）。

反應程序：預變性95℃ 5min，變性95℃ 30s，退火/延伸60℃ 60s，30個循環。本實驗的循環數即Ct值、融解曲線和擴增曲線可從real-time PCR上直接讀取。β-actin作為各處理組的內參基因，caspase-3等目的基因在處理組相對于對照組的AACt值計算得出：AACt=（Ct目的基因Ct內參基因）處理組-（Ct目的基因-Ct內參基因）對照組，按照公式可算出各組caspase-3等目的基因相對于對照組表達量：目的基因相對表達量=2-ΔΔCt。

1.2.7 Western Blot檢測各組細胞中蛋白表達水平：建模成功后，按300μl/瓶加入RIPA裂解液，使用前2～3min需向裂解液內加入3μl PMSF（終濃度1mM），選用BCA試劑盒測蛋白濃度，電泳75min，轉膜35min，封閉液封閉2h，一抗（1：300）孵育，于4℃條件下過夜。次日，二抗（1：10 000）孵育1h，加入TBST后放于床上震蕩，重復3次，在膜上滴加發光工作液，把膜置于化學發光成像儀內，曝光并拍照，分析圖像結果，應用Lane ID凝膠分析系統分析條帶灰度（IOD），分析并獲得各條帶的灰度值，目的蛋白的表達水平根據靶條帶的灰度值與內參（β-actin）的灰度值的比值來反映。

1.3統計學分析：采用SPSS23.0軟件進行分析，計量資料均用（x±s）表示，將用單因素方差分析（one-wayANOVA）進行分析，經組間比較方法，兩兩比較采用LSD法。P<0.05認為差異具有統計學意義。

2結果

2.1不同濃度補骨脂酚對細胞增殖率的影響：如表1所示，與空白組相比，10^-11、10^-10、10^-9、10^-8、10^-7mol/L補骨脂酚組細胞增殖率明顯上升（P<0.01），10^-5、10^-4、10^-3mol/L補骨脂酚組細胞增殖率明顯降低（P<0.05），10^-6mol/L補骨脂酚組細胞增值率無明顯變化，差異無統計學意義（P>0.05）。

2.2補骨脂酚作用于光老化模型對細胞活性的影響：如表2所示，與空白組相比，模型組細胞增殖率明顯下降（P<0.01）；與模型組相比，10^-7mol/L雌二醇組及10^-6mol/L補骨脂酚組細胞增殖率明顯上升，差異具有統計學意義（P<0.05）。

2.3 ROS含量測定結果：如表3所示，與空白組相比，模型組ROS含量明顯升高（P<0.01）；與模型組相比，10^-7mol/L雌二醇組及10^-6mol/L補骨脂酚組ROS含量明顯降低，差異有統計學意義（P<0.05）。

2.4線粒體膜電位測量結果：如表4所示，與空白組相比，模型組線粒體膜電位明顯增加（P<0.01）；與模型組相比，10^-7mol/L雌二醇組及10^-6mol/L補骨脂酚組線粒體膜電位明顯降低，差異具有統計學意義（P<0.05）。

2.5各組細胞中caspase-3 mRNA表達量測定結果：如表5所示，與空白組相比，模型組中easpase-3 mRNA表達量升高（P<0.01）；與模型組相比，10^-7mol/L雌二醇組及10^-6mol/L補骨脂酚組caspase-3 mRNA表達量均降低，差異具有統計學意義（P<0.01）。

2.6各組細胞中p53、easpase-3蛋白表達量測定結果：如表6及圖1所示，與空白組相比，模型組中P53及caspase-3蛋白表達量明顯上升（P<0.01）；與模型組相比，10^-7mol/L雌二醇組及10^-6mol/L補骨脂酚組中p53及easpase-3蛋白表達量明顯下降，差異具有統計學意義（P<0.01）。

3討論

皮膚易遭受紫外線輻射誘發細胞凋亡。因角質形成細胞位于皮膚表皮層，紫外線主要誘導角質形成細胞凋亡。其中p53可以被UVB誘導的DNA損傷所激活，細胞凋亡主要是由多個信號通路調控的死亡過程，p53蛋白在細胞的凋亡過程中占有重要的作用。p53蛋白和半胱氨酸鹽酸天冬氨酸蛋白-3（caspase-3）是促凋亡基因，在DNA損傷、細胞凋亡、癌基因的激活等方面發揮重要作用。caspase-3蛋白酶作為細胞凋亡的終極指標，是參與細胞凋亡的關鍵酶，其中，caspase-3可以促使各種凋亡因子被激活，一旦被激活，可以使細胞內蛋白質降解，最終導致細胞死亡。p53參與調控線粒體凋亡通路，主要是通過對線粒體膜上Bcl-2家族蛋白成員的轉錄調控，使線粒體膜電位發生改變，最終導致激活caspases-3以及啟動細胞凋亡級聯反應。

為了闡明補骨脂酚對HacaT細胞凋亡保護作用的機制，本研究繼續觀察補骨脂酚對凋亡相關基因（p53、caspase-3）表達的影響，結果顯示，與空白對照組相比，模型組凋亡相關基因p53、caspase-3表達水平顯著升高，該結果與模型組HaCaT細胞凋亡水平顯著升高相一致。而給予10^-7mol/L雌二醇及10^-6mol/L補骨脂酚治療后，與模型組相比，治療組HaCaT細胞凋亡水平顯著降低。

綜上所述，本研究結果證實補骨脂酚對HaCaT細胞凋亡保護作用的機制可能是通過調節p53及caspase-3相關基因的表達。通過本實驗研究發現，可以將補骨脂酚應用于天然化妝品中，為預防紫外線對皮膚的破壞奠定一定的理論基礎。endprint