李 碩, 蘇 杰, 高 峰, 張文靜
(吉林大學(xué) 環(huán)境與資源學(xué)院, 地下水資源與環(huán)境教育部重點實驗室, 長春 130012)
地下水是地球上分布最廣的淡水資源之一, 我國地下淡水資源主要用于生活飲用水供水水源. 由于農(nóng)業(yè)、 醫(yī)藥、 生活等過程形成的病原微生物----病毒污染地下水土, 對生態(tài)環(huán)境與人類健康產(chǎn)生嚴重威脅, 因此已引起人們廣泛關(guān)注[1-2]. 常見的腸道病毒在水土環(huán)境中感染微生物能力較強, 其納米級體積結(jié)構(gòu)小, 在地下水土環(huán)境中易存活, 以病毒膠體形式進行遷移[3-4].
目前, 關(guān)于地下水土環(huán)境中病毒的研究主要集中在檢測方法、 遷移行為及污染控制等方面, 遷移行為研究中選用的MS2病毒和φX174病毒不能代表所有病毒的遷移行為, 且目前的研究僅考慮了水巖理化因子的影響, 對易受地下水酸堿環(huán)境影響的定量化研究較少[5-6]. 本文選用污染水體中檢測到的vB_EcoM-ep3大腸桿菌病毒作為模式病毒, 通過室內(nèi)動態(tài)遷移模擬實驗, 利用DLVO理論與膠體過濾理論, 定量分析地下水不同酸堿環(huán)境條件下模式病毒膠體的遷移行為, 為地下水體中病原微生物的遷移機制與控制技術(shù)研究提供科學(xué)依據(jù).
主要儀器: 紫外可見分光光度計(UV1800型, 上海尤尼柯儀器有限公司); 激光粒度儀(Nano ZS型, 英國馬爾文公司); 自動部分取樣器(BSZ-100型, 上海滬西分析儀器廠); 恒溫培養(yǎng)箱(WPX-9052BC型, 北京永光明醫(yī)療儀器有限公司)等. 介質(zhì)材料: vB_EcoM-ep3大腸桿菌病毒來源于地表湖庫水體; 地下水巖性介質(zhì)材料為直徑為0.45 mm的玻璃珠. 主要化學(xué)試劑: KI,HCl,NaOH等無機試劑均為國產(chǎn)分析純.

圖1 實驗裝置Fig.1 Experimental device
采用干法填充玻璃珠以模擬地下水巖性介質(zhì), 腸道病毒膠體溶液的濃度c=104pfu/mL, 其中pfu為噬菌斑形成單位. 分別用稀HCl和NaOH調(diào)節(jié)溶液的pH=5.0,7.4,9.0, 模擬地下水1 m/d的Dacy流速, 使溶液在蠕動泵的作用下, 以0.17 mL/min流速進入有機玻璃柱, 連續(xù)等間隔采樣, 每15 min采樣一次, 待柱內(nèi)釋放水體中病毒未檢出時停止采樣. 對于每組實驗, 在第一階段注入3倍孔隙體積的病毒膠體溶液, 測試病毒膠體在介質(zhì)中的穿透情況; 釋放階段(第二階段)采用5倍孔隙體積的無菌水進行淋濾沖洗. 采用3 mg/L的KI溶液進行示蹤實驗, 獲取柱內(nèi)巖性介質(zhì)孔隙及水體無病毒條件下的遷移規(guī)律, 用于實驗對照. 實驗裝置如圖1所示.
在腸道病毒膠體遷移實驗中, 流出液中病毒膠體的濃度均為隨時間變化的量. 腸道病毒膠體的質(zhì)量回收率(MR)計算公式用歸一化時刻法[7]; 沉積速率常數(shù)(k)用膠體過濾理論計算[8], 并用DLVO理論分析腸道病毒膠體的穩(wěn)定性與沉積釋放情況[9]. 病毒膠體濃度用雙層瓊脂平板法[10]檢測.
采用激光粒度儀測試不同酸堿環(huán)境下腸道病毒膠體的粒徑和電勢變化, 并計算其在遷移過程各階段的質(zhì)量回收率, 結(jié)果列于表1.

表1 不同酸堿條件下病毒的遷移結(jié)果
根據(jù)測試結(jié)果, 以流出液的病毒膠體濃度c與初始濃度c0之比為縱坐標(biāo), 流出液的體積V與柱孔隙體積V0之比為橫坐標(biāo), 繪制腸道病毒膠體的穿透曲線, 結(jié)果如圖2所示. 由圖2可見, 在腸道病毒膠體遷移過程的注入階段(MR1), 當(dāng)?shù)叵滤釅A環(huán)境由酸性(pH=5.0)變?yōu)閴A性(pH=9.0)時, 流出液中病毒膠體的質(zhì)量回收率分別為4.1%,15.2%,28.4%. 根據(jù)膠體過濾理論, 當(dāng)?shù)叵滤伤嵝宰優(yōu)閴A性時, 病毒膠體的沉積速率系數(shù)減小, 分別為4.1×10-4,2.8×10-4,1.0×10-4. 因此, 當(dāng)改變地下水環(huán)境為堿性時, 腸道病毒膠體穿透率增大, 穩(wěn)定性提高, 更利于腸道病毒膠體在地下水中的遷移. 在堿性環(huán)境下, 流出液中的腸道病毒膠體在1.0倍孔隙體積時被檢出, 其峰值濃度比值為0.38. 在酸性環(huán)境下, 流出液中的腸道病毒膠體在1.5倍孔隙體積時被檢出, 峰值濃度比值降至0.02. 在腸道病毒膠體遷移過程的釋放階段(MR2), 當(dāng)?shù)叵滤伤嵝宰優(yōu)閴A性時, 流出液中病毒膠體的質(zhì)量回收率分別為8.4%,13.8%,33.4%. 實驗結(jié)果表明, 在不同的地下水酸堿環(huán)境下, 隨著無菌水的注入, 被吸附的腸道病毒膠體表現(xiàn)出不同程度的釋放現(xiàn)象, 峰值濃度比值分別為0.57(pH=9.0),0.37(pH=7.4),0.20(pH=5.0).
實驗結(jié)束后, 在酸性、 中性和堿性環(huán)境下, 腸道病毒膠體的滯留量分別為87.5%,13.9%,33.4%. 文獻[11-12]選用MS2病毒和φX174病毒, 其形狀為顆粒, 粒徑為24~27 nm, 吸附能力相對較弱, 穿透率約為100%; 病毒遷移能力的差異性主要與不同種類病毒的性狀及環(huán)境介質(zhì)表面性質(zhì)有關(guān).
DLVO理論中勢能變化可反映膠體的穩(wěn)定性, 膠體依靠動能越過勢壘會發(fā)生沉積, 膠體的沉積和聚集動力學(xué)取決于能壘高度[13]. 為解釋病毒膠體在遷移過程中的沉積和釋放行為, 計算腸道病毒膠體在不同地下水酸堿環(huán)境下的DLVO勢能, 結(jié)果如圖3所示, 其中橫坐標(biāo)表示腸道病毒膠體與固相介質(zhì)之間的距離, 縱坐標(biāo)表示膠體之間的相互作用能. 由圖3可見: 當(dāng)pH=7.4時, 病毒膠體的勢壘為3.4 kT, 病毒較易突破勢壘吸附于初級勢阱中; 當(dāng)pH=9.0時, 病毒膠體的勢壘最大, 為55.1 kT, 病毒極難突破勢壘; 當(dāng)pH=5.0時, 病毒膠體的Zeta電勢約為0, 勢壘消失.

圖2 不同酸堿環(huán)境中腸道病毒的遷移規(guī)律Fig.2 Migration regularity of enterovirus under different acid-base environments

圖3 不同酸堿環(huán)境下病毒的DLVO勢能Fig.3 DLVO potential energies of viruses under different acid-base environments
地下水酸堿環(huán)境在影響腸道病毒膠體電勢點位和粒徑變化的同時, 會導(dǎo)致其勢壘發(fā)生明顯變化, 從而影響膠體的穩(wěn)定性. 根據(jù)對腸道病毒膠體粒徑測試可知, 粒徑大小受酸堿環(huán)境的影響. 在堿性環(huán)境下, 腸道病毒膠體的粒徑(162.2 nm)明顯小于酸性(386.4 nm)和中性(321.8 nm)環(huán)境下的粒徑, 且粒徑分布單一, 不存在團聚的大顆粒. 由Zeta電勢測試結(jié)果可知, 腸道病毒膠體的電勢為-30~30 mV, 均處于不穩(wěn)定狀態(tài), 當(dāng)?shù)叵滤伤嵝?pH=5.0)變?yōu)閴A性(pH=9.0)時, 負電性增強, 病毒膠體與介質(zhì)間的靜電斥力增大, 導(dǎo)致地下水巖性介質(zhì)對腸道病毒膠體的吸附量降低. 因此在堿性環(huán)境下, 腸道病毒膠體不易沉積到介質(zhì)表面, 且該沉積過程多為可逆過程. 由DLVO勢能曲線可見, 在堿性環(huán)境下, 隨著無菌水的注入, 病毒膠體的Zeta電勢升高, DLVO勢壘降低, 初級勢阱變淺, 病毒膠體更易釋放; 在酸性環(huán)境下, 隨著無菌水的注入, 病毒膠體的Zeta電勢降低, DLVO勢壘升高, 病毒膠體更難釋放. 可見在酸性環(huán)境下的遷移實驗中, 受勢壘較低的影響, 腸道病毒膠體被吸附于初級勢阱中, 該過程不可逆, 導(dǎo)致釋放量小.
綜上, 本文可得如下結(jié)論:
1) 地下水酸堿環(huán)境對腸道病毒膠體遷移規(guī)律的影響程度不同. 當(dāng)?shù)叵滤h(huán)境由酸性(pH=5.0)變?yōu)閴A性(pH=9.0)時, 腸道病毒膠體的粒徑減小, Zeta電勢降低, 質(zhì)量回收率增大.
2) 當(dāng)?shù)叵滤伤嵝宰優(yōu)閴A性時, 腸道病毒膠體沉積速率系數(shù)減小, 沉積在巖性介質(zhì)表面的能力減弱.
3) 在酸性環(huán)境下, 腸道病毒膠體的DLVO勢壘較低, 相對不穩(wěn)定; 在堿性環(huán)境下, 腸道病毒膠體的勢壘較高, 穩(wěn)定性相對較好.
[1] Anderson B J. Manufactured Nanoparticles: Assessing the Mobility of a Future Class of Contanminant in Groundwaters [D]. Birmingham: University of Birmingham, 2014.
[2] Cronin A A, Taylor R G, Powell K L, et al. Temporal Variations in the Depth-Specific Hydrochemistry and Sewage-Related Microbiology of an Urban Sandstone Aquifer, Nottingham, United Kingdom [J]. Hydrogeology Journal, 2003, 11(2): 205-216.
[3] Schijven J F, Hassanizadeh S M, Husman A M D R. Vulnerability of Unconfined Aquifers to Virus Contamination [J]. Water Research, 2010, 44(4): 1170-1181.
[4] Kokkinos P, Syngouna V I, Tselepi M A, et al. Transport of Human Adenoviruses in Water Saturated Laboratory Columns [J]. Food and Environmental Virology, 2015, 7(2): 122-131.
[5] 趙炳梓, 張佳寶. 病毒在土壤中的遷移行為 [J]. 土壤學(xué)報, 2006, 43(2): 306-313. (ZHAO Bingzi, ZHANG Jiabao. Transport of Viruses in the Soil: An Overiew [J]. Acta Pedologica Sinica, 2006, 43(2): 306-313.)
[6] 肖波, 趙允格. 病毒在土壤和地下水中遷移研究綜述 [J]. 土壤通報, 2006, 37(1): 177-183. (XIAO Bo, ZHAO Yunge. Review of Virus Transport in Soil and Groundwater [J]. Chinese Journal of Soil Science, 2006, 37(1): 177-183.)
[7] James S C, Chrysikopoulos C V. Monodisperse and Polydisperse Colloid Transport in Water-Saturated Fractures with Various Prientations: Gravity Effects [J]. Advances in Water Resources, 2011, 34(10): 1249-1255.
[8] Tufenkji N, Elimelech M. Correlation Equation for Predicting Single-Collector Efficiency in Physicochemical Filtration in Saturated Porous Media [J]. Environmental Science & Technology, 2004, 38(2): 529-536.
[9] 張文靜, 周晶晶, 劉丹, 等. 膠體在地下水中的環(huán)境行為特征及其研究方法探討 [J]. 水科學(xué)進展, 2016, 27(4): 629-638. (ZHANG Wenjing, ZHOU Jingjing, LIU Dan, et al. A Review: Research Methods That Describe the Environmental Behavior of Colloids in Groundwater [J]. Advances in Water Science, 2016, 27(4): 629-638.)
[10] Cormier J, Janes M. A Double Layer Plaque Assay Using Spread Plate Technique for Enumeration of Bacteriophage MS2 [J]. Journal of Virological Methods, 2014, 196(1): 86-92.
[11] Walshe G E, PANG Liping, Flury M, et al. Effects of pH, Ionic Strength, Dissolved Organic Matter, and Flow Rate on the Co-transport of MS2 Bacteriophages with Kaolinite in Gravel Aquifer Media [J]. Water Research, 2010, 44(4): 1255-1269.
[12] Syngouna V I, Chrysikopoulos C V. Cotransport of Clay Colloids and Viruses in Water Saturated Porous Media [J]. Colloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects, 2013, 416: 56-65.
[13] Elimelech M, Gregory J, Jia X, et al. Particle Deposition and Aggregation: Measurement, Modelling and Simulation [J]. Chemical Engineering Journal & the Biochemical Engineering Journal, 1998, 64(3): 363.