王 文,喬 偉,杜 陳,黃其軍,石全紅,謝延風(fēng),馮愛平

體重為(250±15)g左右的30只雄性SD大鼠作為本文的研究對象。并按照隨機數(shù)字表法分成實驗組、模型組以及對照組3組,每組各10只。本次實驗,采用購于美國Sigma公司的FeCl3溶液;1500IU/0.5mL重組人促紅細(xì)胞生成素(r-HuEPO)注射液購于沈陽三生制藥股份有限公司;美國Proteintech Group公司的caspase-10兔多克隆抗體,Abcam公司的bcl-2兔單克隆抗體;日本TaKaRa公司的逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、Trizol RNA抽提試劑;北京六合華大基因科技公司合成的PCR引物、北京中杉金橋公司β-肌動蛋白(actin)鼠多克隆抗體。

傷后24h,通過腹腔注射水合氯醛的方式,對大鼠進行麻醉,斷頭取腦,然后對左側(cè)大腦皮層注射區(qū)域標(biāo)本進行分離。從構(gòu)成上看,各個標(biāo)本都涉及兩部分內(nèi)容,都需要進行3次沖洗,分別是DEPC水和4℃ PBS緩沖液。沖洗后,將標(biāo)本置于-80℃的環(huán)境下進行保存。
取約80mg腦組織標(biāo)本,參照說明書提取總RNA(Trizol法),微量分光光度計(美國BIO-RAD公司)檢測RNA樣品濃度(A值)及純度(A260/A280值在1.7~2.0)并進行標(biāo)化。逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA為模板,β-actin為內(nèi)參照進行實時定量PCR反應(yīng)(美國BIO-RAD公司的IQ5 RT-PCR儀)。25μL反應(yīng)體系中包含12.5μL SYBR GREEN,10μLPCR水,0.25μL上游引物,0.25μL下游引物和2μL cDNA。引物序列見表1。反應(yīng)條件如下:50℃ 2min,95℃ 5min;95℃ 20s,55℃ 20s,72℃ 30s,40個循環(huán)。PCR結(jié)果采用Ct值比較相對定量法,β-actin為內(nèi)參照。

表1 實時定量PCR引物序列
對總蛋白質(zhì)按照說明書標(biāo)準(zhǔn)進行提取,同樣地,對其濃度情況用BCA法進行檢測。以β-actin為內(nèi)參蛋白,選取一些蛋白樣品進行如下操作,將水煮沸,將已經(jīng)經(jīng)過變性緩沖液沖洗的樣品放入其中,繼續(xù)蒸煮5min;緊接著,再進行5min的10 000r/min離心,并在此基礎(chǔ)上上樣。電泳、轉(zhuǎn)膜后,在4℃封閉環(huán)境中,將經(jīng)過5%脫脂牛奶處理過的硝酸纖維膜放置并過夜;在此基礎(chǔ)上,再加入3類不同的抗體孵育過夜,即抗β-actin抗體、抗caspase-10抗體、抗bcl-2抗體。在實驗中,主要通過Image J來檢測蛋白定量情況。


模型組和實驗組bcl-2的mRNA表達(dá)均較對照組下降,實驗組較模型組增高(P<0.05)。模型組和實驗組caspase-10的mRNA表達(dá)均較對照組增高,實驗組較模型組下降(P<0.05)。見表3。
模型組和實驗組bcl-2的蛋白表達(dá)均較對照組下降(P<0.05),實驗組bcl-2的蛋白表達(dá)較模型組增高(P<0.05)。見表3、圖1。
模型組和實驗組caspase-10的蛋白表達(dá)均較對照組增高,實驗組caspase-10的蛋白表達(dá)較模型組下降(P<0.05)。見表3、圖2。
表2 大鼠癲發(fā)作行為學(xué)表現(xiàn)

表2 大鼠癲發(fā)作行為學(xué)表現(xiàn)
組別n平均發(fā)作次數(shù)(次)平均每次持續(xù)時間(min)模型組108 83±1 472 14±0 57實驗組103 62±1 05?1 24±0 17?
經(jīng)t檢驗,與模型組比較:*P<0.05

表3 大鼠皮層bcl-2、caspase-10 mRNA和蛋白的表達(dá)水平
經(jīng)LSD-t檢驗,與對照組比較:*P<0.05;與模型組比較:#P<0.05

圖1 Western blottin顯示bcl-2蛋白的表達(dá)。
1.對照組;2.模型組;3.實驗組

圖2 Western blottin顯示caspase-10蛋白的表達(dá)。
1.對照組;2.模型組;3.實驗組




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