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鴨坦布蘇病毒E蛋白的原核表達

2018-08-24 08:57:10顧玲玲朱善元王安平
浙江農業科學 2018年8期

顧玲玲,朱善元,王安平

(江蘇農牧科技職業學院 江蘇省獸用生物制藥高技術研究重點實驗室,江蘇 泰州 225300)

自2010年4月以來,我國大部分養鴨地區包括浙江、廣東、廣西、江蘇、河北、福建、山東等爆發了一種以蛋鴨產蛋嚴重下降為特征的急性傳染病。該病的傳播相當迅速,給我國養鴨業帶來了巨大威脅。經分離鑒定,該病由一種新病毒引起,該病毒屬于黃病毒科黃病毒屬,命名為鴨坦布蘇病毒(duck tembusu virus,DTMUV)[1-4]。

鴨坦布蘇病毒粒子的大小為45~50 nm,基因組為單股正鏈RNA,全長約11 kb,只編碼1個多聚蛋白,即僅含有一個開放閱讀框(ORF)。此多聚蛋白經蛋白酶剪切形成3種結構蛋白(C、PrM、E)和7種非結構蛋白(NS1、NS2A、NS2B、NS3、NS4A、NS4B和NS5)[5-6]。其中,E基因編碼的囊膜蛋白E是病毒最大的結構蛋白和主要的包膜蛋白,在介導病毒與宿主受體蛋白結合、侵入及病毒與細胞膜的融合等方面發揮了關鍵性的作用。病毒特異性中和抗體位點主要是在E蛋白上,該位點能夠誘導機體產生保護性中和抗體[7]。此外,E蛋白既含有群特異性抗原表位又含有型特異性抗原表位,還含有與中和抗體反應的抗原決定簇[8]。鑒于此,利用大腸桿菌系統表達DTMUV的E基因,以期表達出具有免疫原性的E重組蛋白,為DTMUV E蛋白結構功能研究及基因工程亞單位疫苗的研發奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 毒株、菌株和載體

DTMUV奉賢株由中國上海獸醫研究所惠贈;原核表達載體pET-30a由本實驗室保存;E.coliDH5α和BL21(DE3)感受態細胞均購自康為世紀生物科技有限公司。

1.2 主要試劑

高保真Pfu酶、T4 DNA連接酶、預染蛋白質Maker、1 kb DNA Maker、限制性核酸內切酶SacI、BamH I均購自Thermo公司;RT-PCR試劑盒購自Invitrogen公司;DNA膠回收試劑盒、質粒提取試劑盒均購自AxyPrep公司;丙基硫代-β-D-半乳糖苷(IPTG)、SDS-PAGE凝膠制備試劑盒、DAB顯色試劑盒及抗His標簽鼠單克隆抗體均購自康為世紀生物科技有限公司;HRP標記的羊抗鼠IgG購自Southern Biotech公司。

1.3 引物的設計與合成

參考NCBI GenBank收錄的DTMUV 奉賢株E基因序列,設計1對特異性引物,分別在上、下游引物的5′端引入SacI和BamH I酶切位點。引物序列F為5′-TTAGGATCCTTCAGCTGTCTGGGGATG-3′(下劃線為BamHⅠ酶切位點),R為5′-TGAGA GCTCGGCATTGACATTTACTGC-3′(下劃線為SacⅠ酶切位點)。預期擴增片段大小約1 500 bp。引物由上海英濰捷基生物技術有限公司合成。

1.4 DTMUV的增殖與病毒RNA的提取

取10倍稀釋的鴨坦布蘇原代病毒0.2 mL,經尿囊腔途徑接種9日齡SPF雞胚,于37 ℃孵化箱孵化。棄去24 h內死亡的雞胚,收獲24 h后死亡胚的尿囊液。按Trizol法抽提尿囊液總RNA,具體操作步驟參照說明書。

1.5 E基因的擴增

以提取的總RNA為模板,Oligo dT為引物,利用Invitrogen公司的RT-PCR試劑盒,將RNA反轉錄成cDNA。20 μL反應體系為RNA 4 μL、DEPC 7 μL、Oligo dT 1 μL、5×RTase Buffer 4 μL、RNA抑制劑1 μL、dNTP 2 μL、RTase 1 μL。反應程序設定為25 ℃ 10 min,42 ℃ 90 min,70 ℃ 10 min。以擴增的cDNA為模板,高保真PCR擴增目的E基因。50 μL反應體系為DNA 1 μL,10×Buffer 5 μL,上下游引物各2 μL,dNTP 5 μL,高保真Pfu酶1 μL,ddH2O 34 μL。反應程序設定為94 ℃ 預變性3 min;94 ℃變性30 s,56 ℃退火30 s,72 ℃延伸3 min,進行30個循環;最后72 ℃延伸10 min。PCR產物經0.8%瓊脂糖凝膠電泳分析。

1.6 重組表達載體pET-E的構建

利用AxyPrep凝膠回收試劑盒回收E基因PCR產物,將回收的E基因PCR產物和原核表達載體pET-30 a分別用SacI和BamH I雙酶切后回收,T4 DNA連接酶連接,連接產物轉化至E.coliDH5α感受態細胞,37 ℃培養15 h。隨機挑取單菌落,接種于含卡那青霉素(50 μg·mL-1)的LB液體培養基中培養過夜。以過夜菌為模板進行PCR擴增,將PCR初步鑒定為陽性的菌株提取質粒,用SacI和BamH I雙酶切鑒定,鑒定正確的菌株送上海英濰捷基生物技術有限公司測序。

1.7 重組菌的誘導表達及SDS-PAGE分析

將測序正確的重組質粒pET-E及載體質粒pET-30a分別轉化至E.coliBL21(DE3),挑取單菌落接種于含卡那青霉素(50 μg·mL-1)的LB液體培養基中,37 ℃振蕩培養過夜。次日按1∶100的比例轉接至含卡那青霉素(50 μg·mL-1)的5 mL LB液體培養基中,37 ℃、200 r·min-1振蕩培養,當菌液D600值達 0.4~1.0之間時,加入IPTG至終濃度1.0 mmol·L-1,37 ℃誘導3~5 h,離心收集菌體,溶于適量PBS中,超聲波裂解菌體,取裂解后的菌液與5×loading buffer混勻,煮沸5 min,進行SDS-PAGE凝膠電泳分析。

1.8 重組蛋白的Western blot鑒定

將誘導樣品pET-E和pET-30a進行SDS-PAGE電泳后轉印至聚偏二氟乙烯(PVDF)膜,以抗His標簽鼠單克隆抗體作為一抗,HRP標記的羊抗鼠IgG為二抗,經DAB顯色后觀察結果。

2 結果與分析

2.1 E基因的擴增

將E基因 PCR產物進行0.8%的瓊脂糖凝膠電泳檢測,得到一條約1 500 bp的條帶(圖1),與預期目的條帶大小一致。

M為Marker;1為PCR擴增產物

2.2 重組質粒pET-E的鑒定

將回收的目的基因E與載體pET-30a連接,轉化至E.coliDH5α感受態細胞,經PCR篩選獲得重組轉化子。SacI和BamHⅠ雙酶切鑒定后產生與預期條帶大小一致的2條條帶,分別為1 500和5 400 bp(圖2),表明E基因已成功克隆入載體pET-30a中。

M為Marker;1為pET-E的Sac I和BamH I酶切產物

2.3 SDS-PAGE分析

將測序正確的重組表達載體pET-E及載體質粒pET-30a分別轉化至E.coliBL21(DE3)感受態細胞,經IPTG誘導,重組蛋白獲得較高水平表達,SDS-PAGE分析結果(圖3)顯示,在約63 ku處出現一條明顯的特異性蛋白條帶,與預期的6His-E融和蛋白大小一致,且均以包涵體形式存在。

M為Marker;1為pET-30a誘導菌裂解沉淀;2為pET-E誘導菌裂解沉淀

2.4 Western blot分析

以抗His標簽的鼠單抗為一抗對表達的重組蛋白進行Western blot分析,結果顯示,在分子質量約63 ku處出現了特異性條帶,與預期條帶大小一致,表明表達的重組蛋白具備良好的反應原性。

M為Marker;1為pET-30a誘導菌裂解沉淀;2為pET-E誘導菌裂解沉淀

3 討論

2010年,鴨坦布蘇病毒病席卷了我國整個養鴨密集地區。此后,該病每年均有爆發,已成為困擾我國養鴨業的主要疾病之一。該病目前無有效的治療藥物,因此,研制預防本病的疫苗顯得尤其重要。

E蛋白是構成鴨坦布蘇病毒的主要毒力抗原,具有較好的免疫原性,機體產生的病毒中和抗體主要就是由E蛋白誘導生成的[7]。對黃病毒屬多數成員的研究表明,病毒感染的宿主范圍、毒力大小、保護性免疫、膜融合以及組織嗜性等大多與E蛋白有著極其重要的關系。因此,進行E蛋白的克隆表達,對E蛋白結構功能研究及基因工程亞單位疫苗的研制具有重要意義。

本研究利用RT-PCR技術擴增出鴨坦布蘇病毒E蛋白完整基因片段,采用pET表達系統成功構建了E蛋白的原核表達載體。對原核表達產物進行可溶性分析,結果表明,表達的E蛋白主要以包涵體的形式存在于裂解后的菌體沉淀中。表達產物進行Western blot分析,結果表明,表達的E蛋白能夠與抗His標簽的鼠單克隆抗體發生反應,且大小與預期一致,表明其具有較好的反應原性。下一步有必要將重組蛋白進行純化并免疫小鼠,制備針對重組蛋白的多抗血清,以便進一步用于DTMUV E抗原的檢測及功能研究。

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