SIRT2對白細胞介素-1β誘導的兔關節軟骨細胞凋亡的影響

范忠誠 王琮仁 李 楊

(中南大學湘雅醫學院附屬海口醫院骨科，海南 海口 570208)

骨關節炎作為一種退行性疾病，以軟骨細胞異常減少、基質降解增多為主要特性，軟骨細胞占軟骨組織的5%左右，具有維持軟骨組織內環境穩定、保持軟骨組織完整性的作用，其凋亡增多是骨關節炎發生的機制之一〔1〕。氧化應激、物理因素、炎癥因子等都可以誘導軟骨細胞凋亡，正常情況下，軟骨組織中存在少量的白(IL)-1β，而在關節炎患者的軟骨組織中存在大量IL-1β，IL-1β是誘導軟骨細胞凋亡的重要因子〔2，3〕。沉默信息調節因子(SIRT)2是一種組蛋白去乙酰酶，依賴于煙酰胺腺嘌呤二核苷酸，能夠調控細胞能量代謝、增殖、凋亡等過程，其與關節炎的發生有關，在關節炎小鼠的軟骨組織中發現SIRT2 mRNA和蛋白水平均下調〔4～6〕。本實驗以兔膝關節軟骨細胞為對象，研究SIRT2在IL-1β誘導的關節軟骨細胞凋亡中的作用。

1 材料與方法

1.1材料 新西蘭大白兔6只，雌雄不限，2月齡，購自長沙市開福區東創動物科技服務部。SIRT2過表達慢病毒由北京合生基因構建；0.25%胰蛋白酶購自美國Gibco；Ⅱ型膠原酶、MTT、IL-1β購自美國Sigma；DMEM/F12購自美國Thermo；細胞色素(Cytochrome)C抗體購自美國CTS；Annexin V-FITC/PI凋亡檢測試劑盒購自美國BD；Realtime PCR試劑盒、RNA提取試劑盒、cDNA合成試劑盒購自大連寶生物；SIRT2抗體購自美國Abcam；胞質蛋白提取試劑盒、線粒體蛋白提取試劑盒購自上海生工。

1.2兔膝關節軟骨細胞分離培養 步驟如下〔7〕：2月齡的新西蘭大白兔，共6只，雌雄不限，購自長沙市開福區東創動物科技服務部。耳緣靜脈注入空氣將大白兔處死，無菌條件下取出膝關節，于超凈臺內用尖刀刮取膝關節軟骨組織，剪成1 mm3的小塊，加入5 ml 0.25%胰蛋白酶，于37℃恒溫水浴箱內消化40 min，離心，棄掉上清，加入5 ml DMEM/F12培養基(含有0.2% Ⅱ型膠原酶)，于37℃恒溫水浴振蕩器150RPM消化6 h，100 μm的無菌濾篩將殘渣除去，計數，等體積在培養瓶分裝，倒置相差顯微鏡下觀察細胞的生長情況，觀察到細胞貼壁后，每2天換液1次，細胞達80%～90%生長融合時進行傳代。選擇第3代細胞進行實驗研究。

1.3細胞分組 取第3代兔膝關節軟骨細胞，分為：Control組、IL-1β組、NC+IL-1β組、SIRT2+IL-1β組共4組，IL-1β組、NC+IL-1β組、SIRT2+IL-1β組細胞在實驗開始時在細胞培養液中添加10 ng/ml IL-1β，SIRT2+IL-1β組、NC+IL-1β組細胞分別為感染SIRT2過表達慢病毒和對照慢病毒的兔膝關節軟骨細胞。Control組、IL-1β組細胞在培養24 h以后，用于后續實驗。慢病毒感染方法簡述如下：取第3代兔膝關節軟骨細胞，接種到6孔細胞培養板內，細胞培養密度為50%時，加入慢病毒液，MOI=10，培養3 d后，將細胞培養板置于熒光顯微鏡下，觀察GFP綠色熒光表達情況，細胞感染效率高于95%，篩選穩定感染的細胞株，給予IL-1β刺激后，用Realtime PCR和Western印跡方法檢測SIRT2表達。

1.4Realtime PCR檢測SIRT2表達 Control組、IL-1β組細胞按照上述方法培養以后，以RNA提取試劑盒提取細胞中的總RNA，RNA用DEPC水溶解以后，取1 μl的RNA，稀釋200倍，用紫外分光光度計檢測OD260nm/OD280 nm的比值。以RNA作為模板，用cDNA合成試劑盒合成cDNA。取1 μl的cDNA，進行Realtime PCR，步驟同Realtime PCR試劑盒，PCR體系為：12.5 μl的2×SYBR Green qPCR混合物，1 μl的上下游引物(5 μmol/L)，1 μl的cDNA模板，添加9.5 μl的ddH2O。引物為：SIRT2正義鏈5′-CAACCTGGAGAAATACCGTCTT-3′，反義鏈5′-CAGTCCTTTTTCCTTCAGCAG-3′。β-actin正義鏈5′-AGTGCGACGTGGACATCCG-3′，反義鏈5′-TGGCTCTAACAGTCCGCCTAG-3′。

1.5Western印跡檢測SIRT2表達 Control組、IL-1β組細胞按照上述方法培養以后，在細胞中添加含有1 mmol/L的PMSF的細胞裂解液，將細胞裂解以后，轉移到EP管中，12 000 r/min離心10 min，吸取上清溶液，保存在-20℃。用BCA法對蛋白進行定量檢測。取蛋白樣品，進行SDS-PAGE蛋白電泳，在上層膠中電壓為80 V，在下層膠中電壓為120 V，每個上樣孔添加30 μg蛋白樣品。取出蛋白凝膠，以150 V的電壓轉膜1 h以后，蛋白轉移到NC膜上。用5%的牛血清白蛋白將非特異性的位點封閉以后，再把NC膜放在1/500的一抗中，4℃過夜，NC膜再與1/3 000的二抗室溫中孵育2 h以后，按照ECL顯色試劑盒顯色后，用Band Scan分析條帶的灰度值，計算SIRT2灰度值/β-actin的灰度值。

1.6MTT檢測細胞增殖 取感染慢病毒后的兔膝關節軟骨細胞，接種到96孔板內，細胞接種的密度為5×104個/ml，按照Control組、IL-1β組、NC+IL-1β組、SIRT2+IL-1β組分組處理后，分別在24、48、72、96 h時取出培養板，在每個孔內加入MTT溶液約10 μl，置于37℃孵育4 h以后，把上清溶液吸棄，再加入150 μl的DMSO溶液，置于低速搖床上孵育10 min，置于酶標儀上檢測490 nm的OD值。

1.7流式細胞術檢測細胞凋亡 取感染慢病毒后的兔膝關節軟骨細胞，按照Control組、IL-1β組、NC+IL-1β組、SIRT2+IL-1β組分組處理24 h以后，以胰蛋白酶消化，2 000 r/min離心10 min，把上清吸棄以后，添加上樣緩沖液混合后，此時細胞濃度為1×106個/ml，轉移到流式管中，添加5 μl的PI及Annexin V-FITC，置于室溫中孵育25 min后，用流式細胞儀檢測。

1.8Western印跡檢測胞質和線粒體中CytochromeC蛋白水平 取感染慢病毒后的兔膝關節軟骨細胞，按照Control組、IL-1β組、NC+IL-1β組、SIRT2+IL-1β組分組處理24 h以后，按照試劑盒提取細胞線粒體和胞質中的蛋白，以Western印跡方法檢測CytochromeC蛋白水平，具體步驟同上，胞質蛋白以β-actin為參照，線粒體蛋白以Porin為內參。

1.9統計學方法 采用SPSS21.0軟件進行t檢驗，單因素方差分析及SNK-q檢驗。

2 結 果

2.1IL-1β誘導后SIRT2表達水平降低 關節軟骨細胞經過IL-1β誘導處理以后，細胞中的SIRT2 mRNA和蛋白水平下降，提示IL-1β減少關節軟骨細胞中SIRT2的表達，見圖1，表1。

圖1 IL-1β減少關節軟骨細胞中SIRT2蛋白表達

2.2慢病毒感染促進IL-1β條件下關節軟骨細胞中SIRT2的表達 經過IL-1β誘導處理以后，細胞中的SIRT2水平升高，提示成功構建了上調 SIRT2的關節軟骨細胞，見圖2，表2。

2.3SIRT2提高IL-1β條件下關節軟骨細胞增殖活性 IL-1β處理后的關節軟骨細胞的OD值明顯降低，而過表達SIRT2后的關節軟骨細胞經IL-1β誘導處理以后，細胞的OD值有所升高。過表達SIRT2拮抗IL-1β對關節軟骨細胞增殖的抑制作用，見表3。

表1 IL-1β處理后關節軟骨細胞中SIRT2水平

圖2 慢病毒感染上調IL-1β作用后的關節軟骨細胞中SIRT2的表達

表2 各組SIRT2 mRNA及蛋白水平比較

與IL-1β組比較：1)P<0.05

2.4SIRT2抑制IL-1β條件下關節軟骨細胞凋亡 IL-1β處理后的關節軟骨細胞的凋亡率〔(26.14±2.87)%〕明顯高于Control組〔(6.25±0.47)%〕，而過表達SIRT2后的關節軟骨細胞經IL-1β誘導處理以后，細胞凋亡率〔(15.28±1.65)%〕較NC+IL-1β組〔(27.42±2.49)%〕明顯降低，過表達SIRT2減少IL-1β誘導的關節軟骨細胞凋亡。

2.5SIRT2減少IL-1β處理后關節軟骨細胞線粒體釋放CytochromeC IL-1β處理后的關節軟骨細胞線粒體中CytochromeC蛋白水平明顯降低，而胞質中CytochromeC蛋白水平明顯升高。過表達SIRT2后的關節軟骨細胞經IL-1β誘導處理以后，細胞線粒體中CytochromeC水平有所升高，胞質中CytochromeC水平有所降低。過表達SIRT2抑制IL-1β誘導的關節軟骨細胞線粒體釋放CytochromeC，見圖3，表4。

1～4：Control組，IL-1β組，NC+IL-1β組，SIRT2+IL-1β組圖3 SIRT2過表達減少IL-1β處理后關節軟骨細胞胞質及線粒體中CytochromeC蛋白水平

表3 SIRT2提高IL-1β條件下關節軟骨細胞增殖活性

與Control組比較：1)P<0.05；與IL-1β比較：2)P<0.05，下表同

表4 SIRT2過表達對IL-1β處理后關節軟骨細胞胞質和線粒體中CytochromeC蛋白水平的影響

3 討 論

骨關節炎的發生以軟骨組織破壞、軟骨變性、關節間隙變窄為主要特性，而作為軟骨組織的唯一組成細胞，軟骨細胞功能紊亂是關節炎發生的關鍵〔8〕。研究表明，骨關節炎發生常常伴隨有軟骨細胞凋亡過度等現象，軟骨細胞受到炎癥因子等的刺激后，細胞凋亡水平升高，細胞損傷加重〔9，10〕。IL-1β作為一種炎癥因子，在骨關節炎患者中的表達水平升高，其可以誘導軟骨細胞凋亡發生〔11〕。本實驗結果表明，IL-1β處理后的關節軟骨細胞的增殖活性降低，細胞凋亡增多，提示成功構建了IL-1β誘導的關節炎軟骨細胞模型。

沉默信息調節因子基因家族(Sir2)是一類組蛋白去乙酰酶，其與哺乳動物Sir2同源的蛋白共同組成Sirtuin蛋白家族，Sirtuin蛋白家族含有7個蛋白成員，在不同的組織和器官中表達水平不同〔12～15〕。SIRT1參與軟骨細胞炎癥，可以提高軟骨細胞抵抗氧化應激能力并減少軟骨細胞炎癥等，SIRT1在骨關節炎中發揮保護作用，目前研究表明，SIRT2和SIRT1一樣，作為Sirtuin蛋白家族的成員，都含有較高的去乙酰化酶的活性，均在骨關節炎軟骨組織中表達下調，SIRT2可能也參與關節炎軟骨細胞損傷發生〔16～19〕。本實驗結果表明，IL-1β誘導后的關節軟骨細胞中的SIRT2表達水平降低，這與上述研究報道結果一致，均表明SIRT2可能參與骨關節炎的發生。

有研究報道表明，IL-1β可以通過激活線粒體途徑誘導關節軟骨細胞的凋亡，IL-1β能夠促進線粒體中CytochromeC的釋放〔20，21〕。線粒體凋亡途徑又稱為內源性凋亡途徑，是細胞凋亡發生的重要分支，在幾乎所有的哺乳動物凋亡中存在，其誘導細胞凋亡發生與CytochromeC有關，CytochromeC是一個重要的凋亡激活因子，正常情況下，CytochromeC多存在于細胞線粒體內，當細胞受到病理因素的刺激以后，線粒體膜通透性轉換孔打開，線粒體內的CytochromeC釋放至細胞質中，激活位于細胞質中的凋亡反應，誘導細胞凋亡發生〔22，23〕。SIRT2具有抗細胞凋亡的作用，沉默其表達后可以減少細胞凋亡的發生，在急性髓系白血病細胞、帕金森病細胞模型等中已經得到證實〔24，25〕。本實驗結果顯示，IL-1β誘導后的關節軟骨細胞線粒體釋放的CytochromeC增多，而過表達SIRT2后的關節軟骨細胞經IL-1β誘導后，細胞凋亡率有所降低，線粒體釋放的CytochromeC減少，細胞增殖活性升高，說明SIRT2可以通過線粒體途徑減少IL-1β誘導的關節軟骨細胞凋亡損傷，SIRT2在軟骨細胞凋亡中發揮保護作用。

總而言之，SIRT2能夠通過減少線粒體釋放CytochromeC抑制IL-1β誘導的關節軟骨細胞凋亡，提高軟骨細胞活性，SIRT2可能具有抗骨關節炎的作用，對于其作用機制還需要在以后進行驗證和探索。