成冬,郭磊,姜天龍,周仁義,劉文博,羅鵬,梅潤宏,楊旭浩
(中國醫科大學附屬第一醫院骨科,沈陽 110001)
線粒體自噬是一種選擇性自噬,通過自噬體—溶酶體系統去除損傷和功能障礙的線粒體,確保細胞內線粒體功能穩定和細胞存活。軟骨細胞是關節軟骨的唯一細胞類型,線粒體功能影響軟骨細胞存活,因此線粒體自噬與骨性關節炎 (osteoarthritis,OA) 的發病緊密相關[1]。最近發現17 β-雌二醇不僅與氧化應激、炎癥反應和細胞凋亡有關,還與自噬相關。已有研究[2]證明,在Raw 264.7細胞中17 β-雌二醇可以通過激活PI3K/Akt信號轉導通路降低氧化應激和炎癥反應。17 β-雌二醇可以通過ER-ERK-mTOR途徑促進成骨細胞自噬,保護成骨細胞免受無血清誘導的細胞凋亡[3]。G蛋白耦聯雌激素受體30 (G-protein coupled estrogen receptor-30,GPR30) 是一種7次跨膜G蛋白耦聯雌激素受體,能介導快速的細胞反應。細胞自噬中,新合成的微管相關蛋白1輕鏈3 (microtubule-associated protein 1 light chain 3,LC3) 經剪切修飾變成胞漿蛋白LC3-Ⅰ,之后轉變為LC3-Ⅱ,定位于前自噬泡和自噬泡膜表面,參與自噬體的伸展擴張。TOM20是線粒體外膜復合體轉位亞基,參與線粒體前體蛋白轉運,被認為是線粒體自噬的潛在標志物[4]。熱休克蛋白60 (heat shock protein 60,Hsp60) 主要定位于線粒體內,可通過催化過氧化氫還原成水,保護線粒體免于活性氧 (reactive oxygen species,ROS) 誘導的損傷。新的證據表明,雌激素可通過GPR30對脊髓損傷進行保護;可通過改變PI3K/Akt-mTOR信號通路調節細胞自噬,從而降低脊髓損傷后的損傷程度[5]。本研究擬探討17 β-雌二醇是否通過抑制線粒體自噬保護ATDC5軟骨細胞,以及17 β-雌二醇是否通過GPR30/PI3K/Akt途徑調節線粒體自噬。
17 β-雌二醇購自美國Sigma-Aldrich公司。含有L-谷氨酰胺和HEPES以及胎牛血清的DMEM/F12購自美國Logan公司。選擇性GPR30拮抗劑 (G15) 購自美國Tocris Bioscience公司。P38抑制劑、JNK抑制劑、PI3K抑制劑、抗-GPR30 (sc-48525-R,多克隆,WB 1∶200,IF 1∶50) 、抗Lamp2 (sc-8100,多克隆,IF 1∶50) 、抗TOM20 (sc-11415,多克隆,WB 1∶200,IF 1∶50) 、抗-LC3 (sc-376404,單克隆,WB 1∶100) 和抗Hsp60 (sc-1052,多克隆,WB 1∶200) 均購自美國Santa Cruz Biotechnology公 司。Anti-Total/phosphor-Akt購自美國Abcam公司。具有alexa fluor 555標記的驢抗兔IgG (P0179) 的免疫熒光染色試劑盒購自中國江蘇Beyotime Biotechnology公司。IFKine?綠色結合驢抗山羊IgG (A24231) 購自美國Abbkine公司。
1.2.1 細胞培養:購買小鼠軟骨原代細胞系ATDC5(中國南京Kebai公司) 。用含有5%胎牛血清的DMEM/F12培養基培養ATDC5細胞。將細胞在37 ℃含有5%CO2的濕化培養箱中培養。每2 d更換1次培養基。在無血清培養基中培養24 h后,將細胞用不同濃度的17 β-雌二醇( 0 mol/L,10-9mol/L,10-8mol/L和10-7mol/L,含或不含15 μ mol/L的G15或20 μ mol/L的LY294002) 處理24 h。
1.2.2 免疫熒光染色( immunofluorescence staining,IF) 分析:將ATDC5軟骨細胞在24孔板中培養孵化后,用4%多聚甲醛固定并加入0.1 mol/L磷酸鹽( pH7.3) 緩沖30 min。標本固定后,用PBS洗滌10 min。用0.1%TritonX-100處理細胞30 min以透化細胞膜,再用PBS洗滌10 min。用含有5%牛血清白蛋白的TBST封閉30 min,加入特異性一抗Lamp2抗體( 1∶50),TOM20抗體( 1∶50) 或GPR30抗體( 1∶50),4 ℃過夜。用PBS洗滌細胞10 min,并加入二抗IgG( A24231,1∶1 000) 和IgG( P0179,1∶1 000) 反應30 min。DAPI染色5 min后,PBS洗滌15 min。通過Olympus FV1000共焦激光掃描顯微鏡觀察,峰值發射波長在518 nm( 綠色) 和565 nm( 紅色) 。
1.2.3 Western blotting:用PBS洗滌ATDC5軟骨細胞,通過加入蛋白酶抑制劑苯甲基磺酰氟( 中國Beyotime公司) 和磷酸酶抑制劑( 中國KeyGen公司) 的放射性免疫沉淀測定緩沖液( 中國Beyotime公司) 獲得總蛋白質;用BCA蛋白質測定試劑盒( 中國Beyotime公司)測定其濃度。采用SDS-PAGE分離樣品,轉移蛋白至PVDF,70 V處理1.5 h。為了阻斷非特異性結合,室溫下將PVDF膜在脫水脫脂牛乳中處理120 min,用含Tween 20的TBS洗滌3次,持續30 min。加入一抗,在4℃下孵育過夜。TBST洗滌30 min,與辣根過氧化物酶綴合的抗物二抗體室溫下孵育2 h。TBST洗膜3次共30 min,采用BeyoECL plus試劑盒使蛋白質顯像。
1.2.4 細胞活力和增殖檢測:將ATDC5軟骨細胞接種于96孔板( 2×103/孔),培養24 h。將細胞轉移至不含血清的DMEM/F12培養基中( 含有1 7β-雌二醇10-7mol/L),37 ℃孵育24 h后,加入10 μ L MTT試劑( 5 mg/mL),37 ℃孵育4 h。除去培養基,用100 μ L二甲基亞砜溶去甲臜晶體。所有實驗均重復3次。參考570 nm波長,使用酶標儀( 光譜最大加384微板讀數器,德國Ismaning公司) 測量光密度。
Western blotting分析 (圖1A、1B) 和IF染色 (圖1C) 結果顯示,GPR30在ATDC5中有表達。用不同濃度的17 β-雌二醇 (0,10-9,10-8和10-7mol/L,含或不含15 μ mol/L的G15) 處理ATDC5軟骨細胞24 h,結果顯示17 β-雌二醇以劑量依賴性方式提高GPR30的表達水平,濃度為10-7mol/L時GPR30表達水平最高 (P <0.05) (圖1A、1B) 。此外,Western blotting結果還顯示GPR30表達水平以時間依賴性方式遞增 (圖1A) 。IF染色顯示,17 β-雌二醇提高了GPR30在細胞膜和細胞質中的表達 (P < 0.05) (圖1C) 。

圖1 17 β-雌二醇增強ATDC5軟骨細胞內GPR30的表達Fig.1 17 β-estradiol can stimulate the activation of GPR30 expression in ATDC5 chondrocytes
為了解17 β-雌二醇對線粒體自噬蛋白質活性的影響,本研究檢測了LC3、TOM20和Hsp60的表達。與對照組相比,用17 β-雌二醇處理的細胞LC3-Ⅱ的表達水平顯著降低;而17 β-雌二醇和G15或PI3K抑制劑對細胞內LC3-Ⅱ的表達沒有影響 (圖2) 。與對照組相比,用17 β-雌二醇處理的細胞內TO M20和Hsp60的表達水平更高;而G15或PI3K抑制劑對TOM20和Hsp60的表達沒有影響 (圖3) 。

圖2 17 β-雌二醇通過ATDC5細胞中GPR30/PI3K/Akt通路調控LC3、TOM20和Hsp60的表達Fig.2 17 β-estradiol regulates the expression of LC3,TOM20,and Hsp60 in mitophagy through the GPR30/PI3K/Akt pathway in ATDC5 cells

圖3 17 β-雌二醇通過ATDC5細胞中GPR30/PI3K/Akt通路調節線粒體自噬。Fig.3 17 β-estradiol regulates mitophagy through the GPR30/PI3K/Akt pathway in ATDC5 cells
Western blotting結果顯示,用17 β-雌二醇處理的細胞Akt磷酸化水平升高,總Akt表達水平保持不變。當用G15 (15 μ mol/L) 或PI3K抑制劑 (20 μ mol/L) 處理細胞時結果相反 (圖2),表明ATDC5細胞中17 β-雌二醇 (10-7mol/L) 可以通過GPR30激活PI3K/Akt途徑。此外,mTOR磷酸化 (p-mTOR) 的抑制程度可作為自噬途徑活化的指標。結果顯示,17 β-雌二醇 (10-7mol/L) 可提高ATDC5細胞內p-mTOR的水平,而在用G15或mTORi (10-7mol/L) 處理的細胞中則結果相反(圖3),表明ATDC5細胞中17 β-雌二醇可通過GPR30激活p-mTOR,抑制線粒體自噬。
此外,17 β-雌二醇對ATDC5細胞的作用可以被GPR30抑制劑、PI3K抑制劑或mTORi消除 (圖2、3),表明17 β-雌二醇通過GPR30/PI3K/Akt途徑抑制線粒體自噬。
為了確定雌二醇是否通過GPR30/JNK或GPR30/P38途徑保護ATDC5軟骨細胞,用添加或不添加JNK抑制劑 (10 μ mol/L) 、P38抑制劑 (10 μ mol/L)或G15 (15 μ mol/L) 或混合2種抑制劑的17 β-雌二醇(10-7mol/L) 處理無血清培養的ATDC5細胞24 h。結果表明,用17 β-雌二醇處理的ATDC5細胞中,P38和JNK沒有磷酸化改變;用G15、P38抑制劑或JNK抑制劑處理細胞,也未觀察到相反的結果 (圖3) 。MTT結果顯示,17 β-雌二醇處理的ATDC5軟骨細胞的增殖和活力顯著高于對照組 (P < 0.05),且ATDC5軟骨細胞的增殖和活力可被G15和PI3K抑制劑減弱 (圖4) 。提示17 β-雌二醇可通過GPR30/PI3K/Akt途徑促進無血清培養的ATDC5軟骨細胞的增殖和活力。

圖4 17 β-雌二醇通過GPR30 PI3K/Akt通路調節ATDC5軟骨細胞增殖與活力Fig.4 17 β-estradiol can protect ATDC5 chondrocytes via the GPR30/PI3K/Akt pathway
研究發現,用雌二醇處理的ATDC5細胞中含有較少的自噬體,經雌二醇處理的ATDC細胞中TOM20陽性顆粒與Lamp2[6]減少,表明線粒體自噬在ATDC5細胞中可被17 β-雌二醇抑制。然而,雌激素保護軟骨細胞免受損害的分子機制目前尚未明確。本研究結果顯示,用17 β-雌二醇處理的ATDC5細胞增殖和活力顯著高于對照組,證實了17 β-雌二醇對軟骨細胞的保護作用。
氧化應激可導致線粒體損傷,如果損傷超過線粒體內膜的膜電位,則功能失調的線粒體將通過自噬途徑被去除,也稱線粒體自噬。細胞雖可通過線粒體自噬途徑去除氧化應激損傷的線粒體,保護細胞免于凋亡,但過量的線粒體自噬將導致大量重要細胞成分減少,從而導致細胞死亡[7]。已有研究表明,自噬可能是通過消除生長促進分子和細胞器,如蛋白質p62,降低細胞的生長速率。當p62耗竭或去除時,mTOR不能被激活,導致細胞生長受限[8]。針對過量的自噬,線粒體能夠采用其他機制,如融合/裂變周期以及線粒體解折疊蛋白反應的胞內質控機制,來修復或去除受損的線粒體,以確保線粒體維持其正常功能[9]。細胞還可通過增加線粒體伴侶蛋白 (Hsp60,Hsp70) 和蛋白酶表達激活線粒體解折疊蛋白反應途徑,以保護線粒體免于功能障礙。血清饑餓培養的HeLa細胞可誘導線粒體自噬,隨著LC3-Ⅱ表達的增加可降低TOM20的表達[10]。本研究也發現,LC3-Ⅱ的表達水平下降,而Hsp60和TOM20的表達水平上升。因此,17 β-雌二醇可能通過抑制線粒體自噬來保護ATDC5軟骨細胞,并有助于修復線粒體損傷。
本研究結果發現,17 β-雌二醇可通過GPR30和PI3K/Akt-mTOR信號通路抑制ATDC5細胞線粒體自噬,表明PI3K/Akt-mTOR信號通路可作為治療OA的新途徑。已有研究[11-12]表明,17 β-雌二醇可通過結合心肌細胞和癌細胞內的GPR30受體執行其生理功能。本研究發現,GPR30在ATDC5軟骨細胞中也有表達,17 β-雌二醇 (0,10-9,10-8和10-7mol/L) 以劑量依賴性方式增加GPR30的表達水平,提示17 β-雌二醇可能通過作用于GPR30發揮其生理調節功能。Western blotting結果顯示,17 β-雌二醇對ATDC5軟骨細胞GPR30表達水平的誘導具有時間依賴性,此誘導作用可被GPR30拮抗劑阻斷,導致LC3-Ⅱ高表達,TOM20和Hsp60低表達。提示17 β-雌二醇可能是通過GPR30抑制線粒體自噬。
本研究結果顯示,用17 β-雌二醇培養ATDC5軟骨細胞24 h后,細胞內Akt磷酸化水平增加,總Akt表達水平保持不變。據文獻報道,mTOR受PI3K正調控,是自噬的負調控因子。與對照組相比,用17 β-雌二醇處理的ATDC5細胞中p-mTOR的表達水平顯著升高。17 β-雌二醇對ATDC5細胞的作用可被GPR30抑制劑、PI3K抑制劑或mTORi消除,表明17 β-雌二醇通過GPR30/PI3K/Akt途徑抑制線粒體自噬。已有研究[13]發現,17 β-雌二醇通過PI3K/Akt信號通路抑制腫瘤壞死因子-α誘導人髓核細胞凋亡。17 β-雌二醇還可以通過PI3K/Akt/caspase-3途徑降低大鼠髓核細胞的凋亡發生率[3-5]。此外,PI3K/Akt信號轉導與線粒體氧化應激負相關,而PI3K/Akt信號轉導的激活能減少ROS的產生[14-15]。本研究中,為了驗證17 β-雌二醇是否也可以通過JNK和P38調節線粒體自噬,用P38抑制劑和JNK抑制劑預處理細胞30 min,結果發現處理前后細胞內p-P38和P-JNK的水平無統計學差異。表明17 β-雌二醇不能通過JNK或P38信號傳導途徑調控線粒體自噬。