PHC1基因敲降對小鼠胚胎干細胞多能干性的影響

(1.南華大學，湖南 衡陽 421001；2.湘潭市中心醫院，湖南 湘潭 411100)

胚胎干細胞(embryonic stem cells，ESCs)來自于哺乳動物囊胚的內細胞團(ICM)并且具有在體外無限復制、自我更新和向各譜系細胞分化的潛能[1]。PHC1蛋白(也稱rae28)是哺乳動物和果蠅多梳家族蛋白(Polycomb Group protein，PcG)PRC1復合物的重要一員，蛋白結構本身含有SAM(sterile alpha motif)結構域和鋅指(zinc finger)結構，其中SAM結構域介導PHC1與其它蛋白的相互作用使其發生寡聚化，而鋅指結構域能夠和核酸結合，兩者對于cPRC1介導的基因沉默都發揮重要作用[2-3]。

有研究表明，胚胎干細胞體內發育和體外分化伴隨著由表觀遺傳學機制介導的mESCs多能干性基因的逐漸關閉以及分化相關基因逐漸開啟過程[1，4]。故PHC1可不完全通過cPRC1介導的表觀遺傳學機制介導靶基因的沉默參與多能干性的維持[5]。因此，本研究擬通過慢病毒介導沉默mESCs中PHC1基因的表達，初步探討沉默PHC1基因后對mESCs的多能干性的影響及其可能的機制。

1 材料與方法

1.1 材料

Empty vector 為PLKO克隆載體，購自addgene；shRNA PHC1質粒、PGL-3nanog 4.8 reporter、PHC1、nanog、sox2、oct4質粒均前期構建完成，保存于-80 ℃冰箱；胎牛血清FBS購自Gibco，高糖購自Corning，0.1% geltin明膠、PHC1、nanog、oct4、sox2抗體均購自abcam；actin抗體、RIPA裂解液購自碧云天；轉染試劑盒購自百恩維生物，Lipo2000購自sigma；shRNA序列合成及測序為擎科生物；ECL顯色液購自Thermo；Brilliant SYBR Green qRT-PCR Master Mix購自Takara；Luciferase Assay Kit 購自sigma。

1.2 PHC1-shRNA細胞系構建

將shRNA PHC1和PLKO空載質粒分別與包裝質粒PSPAX，PMD共轉染293T細胞，48 h后收病毒，濃縮、離心并感染mESC細胞，感染mESCs 后24 h添加polybrene加強感染效率，48 h后加puro篩選3～5天得到穩定的PHC1敲降mESC細胞系，并進行后續實驗。本實驗RNA干擾設計圖見圖1。shRNA:5′-CCGGCACCTGAACCAACCTCTAAACCTC GAGGTTTAGAGGTTGGTTCAGGTGTTTTTG-3′。

圖1 RNA干擾設計圖

1.3 Western blot檢測PHC1蛋白表達

待測mESCs棄培養基，PBS清洗待測細胞3遍，置于冰上，加入RIPA和蛋白酶抑制劑使細胞裂解，吹打裂解細胞并收集至2 mL EP管中，超聲破碎后離心收集蛋白，BCA法蛋白定量，10%濃度的SDS-PAGE凝膠分離蛋白，將分離的蛋白轉至PVDF膜上，按100 V恒壓電泳，轉膜時間約120 min，5%的脫脂奶粉室溫封閉1 h，剪膜，加入待測一抗，4 ℃搖床過夜孵育，PBST洗膜3次，10 min/次，二抗室溫孵育1 h，洗膜同前。ECL顯影曝光條帶并分析結果。

1.4 細胞培養

37 ℃水浴鍋內復蘇mESCs，隨后加入適量完全培養基離心、重懸并輕輕吹打，轉移至提前0.1% geltin明膠包被培養皿中，37 ℃、5%CO2飽和濕度培養。mESCs培養基濃度與成份配比，50 mL為例：FBS 7.5mL、Glutamax 500 μL、P/S 500 μL、NEAA 500 μL、β-巰基乙醇 3.5 μL、LIF 5 μL、高糖H-DMEM補足50 mL。293T細胞培養基濃度和成份配比，50 mL為例：FBS 5 mL、Glutamax 500 μL、P/S 500 μL、NEAA 500 μL、高糖H-DMEM補足50 mL。

1.5 實時熒光定量PCR(qRT-PCR)檢測相關基因表達

待測細胞均采用Trizol提取RNA，參照反轉錄試劑盒RT-PCR逆轉錄為cDNA ，然后根據Brilliant SYBR Green qRT-PCR Master Mix試劑說明書程序進行qRT-PCR測定基因表達。qRT-PCR 10 μL反應體系：cDNA 0.3 μL、SYBR 5 μL、F 0.2 μL、R 0.2 μL、ddH2O 4.3 μL。本文中所用的qRT-PCR引物如下：PHC1:F:5′-GAGTCAGACAGAGCACCAGC-3′，R:5′-CTGCACTGCTTGTCGTTCAT-3′;Actin:F:5′-GTGTGACGACGAGGAGAC-3′，R:5′-CGATGGACGGGAAGACAG-3′;nanog:F:5′-TGAGCTATAAGCAGGTTAAGAC-3′，R:5′-CAATGGATGCTGGGATACTC-3′;oct4:F:5′-CACGAGTGGAAAGCAACTCAG-3′,R:5′-CTGGGAAAGGTGTCCCTATAG-3′;sox2:F:5′-CGAGATAAACATGGCAATCAAATG-3′,R:5′-AACG TTTGCCTTAAACAAGACCAC-3。

1.6 免疫熒光染色

PHC1、nanog、sox2、oct4、DAPI免疫熒光染色，具體步驟為：棄培養基，PBS漂洗3遍，4%的多聚甲醛固定樣本，避光15 min，PBS漂洗3遍，加入封閉液0.5 mL/孔，封閉30 min后棄去，4 ℃避光過夜孵育一抗，次日PBST漂洗3次，5 min/次，孵育二抗，室溫避光約2 h后吸走二抗，PBST洗3次，5 min/次，DAPI核染12孔板，0.5 mL/孔，10 min后吸走再用PBST洗3遍，5 min/次封片，激光共聚焦顯微鏡觀察、拍照并保存。

1.7 熒光素酶報告基因技術(Luciferase Reporter)

提前一天24孔板準備dox誘導的nanog過表達細胞系，待細胞密度生長到65%～75% 時，采用Lipo2000共轉PGL-3 nanog 4.8 kb reporter (或PGL-3空載質粒)、TOMATO-PHC1(或TOMATO空載質粒)、Renilla質粒(內參質粒)、sox2、oct4等相關質粒，每組實驗設置3個副孔，轉染12 h后，PBS潤洗細胞3次，隨后加入40 μL Passive Lysis Buffer，于不透光的96孔板中加入100 μL的Luciferase Assay Buffer II,再加入20 μL的細胞裂解液，混勻,檢測firefly luciferase activity，得A值；另加入100 μL Stop & Glo Reagent，混勻，檢測Renilla luciferase activity，得B值(兩次檢測均使用同一臺酶標儀)，計算A/B值，作圖。PGL-3 nanog 4.8 kb reporter 示意圖如圖2。

圖2 PGL-3 nanog 4.8kb Luciferase Reporter示意圖

1.8 統計學分析

2 結 果

2.1 慢病毒介導的PHC1敲降細胞系鑒定

mESCs經慢病毒介導感染shRNA后，電子顯微鏡下觀察mESCs細胞形態，對照組mESCs呈圓形，核大質少，邊界清楚(control和Empty vector組)，而實驗組(shPHC1組)mESCs邊緣變的銳利，形態變的不規則，細胞出現明顯的分化現象(圖3)，qRT-PCR 、Western blot灰度掃描結果均顯示PHC1在RNA和蛋白水平表達均明顯下調(P<0.05)(圖4)[6]，shRNA沉默PHC1蛋白效果理想。

圖3 慢病毒介導的PHC1敲降細胞系(400×)實驗組mESCs中沉默PHC1蛋白后，各組細胞形態；Scale Bar=100 μm

圖4 qRT-PCR及Western-Blot檢測PHC1表達A:qRT-PCR檢測PHC1的mRNA表達量；與control組比較，*P<0.05；與Empty vector組比較，#P<0.05；B:Western blot檢測PHC1蛋白；與control組比較，*P<0.05；與Empty vector組比較，#P<0.05

2.2 免疫熒光染色分析

PHC1與nanog、sox2、oct4的免疫熒光染色分析示PHC1基因敲降的mESCs，nanog、sox2、oct4蛋白的表達同時下調，且與PHC1具有下調共定位現象(圖5A白色箭頭所指)，對其進行統計學分析，nanog下調最為顯著(nanog約60%，sox2約32%,oct4約26%)(圖5B)。同時qRT-PCR檢測多能干性基因nanog、sox2、oct4表達，與control、Empty vector相比，均出現明顯下調，且nanog下調最顯著(圖6)。

2.3 PHC1與nanog的Luciferase Reporter分析

Luciferase Reporter結果證明nanog、sox2、oct4三者共存時，其luciferase熒光值最高，nanog單獨存在時次之，sox2、oct4二者存在時較低(圖7A)；而當PHC1與nanog共存時，其luciferase熒光值強于nanog自身，低于nanog、sox2、oct4共存時，PHC1單獨存在時，PHC1并未激活PGL-3 nanog 4.8 kb reporter的熒光值(圖7B)。

圖5 PHC1、nanog、sox2、oct4免疫熒光染色A:免疫熒光染色，白色箭頭示PHC1敲降的細胞同時下調nanog、sox2、oct4的表達。Scale Bar為20 μm，100×B:PHC1與nanog、sox2、oct4下調共定位結果與nanog組比較，*P<0.05；與sox2組比較，#P<0.05

圖6 qRT-PCR檢測多能干性基因與control組比較，*P<0.05；與Empty vector組比較，#P<0.05

圖7 PHC1與nanog的轉錄調控檢測A：nanog、sox2、oct4的轉錄活性檢測與小組b比較，*P<0.05；與小組c比較，#P<0.05；B:PHC1、nanog的轉錄活性檢測與小組b比較，*P<0.05； +表示轉染該質粒

3 討 論

在以往的研究已經表明PcG都能作用于大量的調節細胞命運相關的基因，激活基因轉錄，這些基因的活化會促進細胞進入分化狀態[1，7-8]。另外，PcG的結合部位富集有編碼一些信號傳導通路的基因TGF、BMP、Wnt和FGF，這些通路在分化譜系過程以及各組織干細胞中具有重要作用[4]，也有研究證實沉默RING1A/B能夠引起mESCs的分化[9]，基于以上研究，本實驗設計了在mESCs中沉默PHC1蛋白，并探討其與多能干性基因nanog的轉錄調控機制。

本實驗顯示，敲降PHC1基因后，mESCs呈現分化狀態，初步證明PHC1基因在維持mESCs多能干性方面具有重要作用。同時nanog、sox2、oct4的RNA及蛋白表達下調，并存在下調共定位現象，且nanog的下調最顯著。推測敲降PHC1蛋白后可能是通過參與影響nanog的轉錄調控，進一步影響nanog、oct4、sox2的核心轉錄調控，前期有研究證實，在mESCs中，細胞的多能干性很大程度上是由nanog、sox2、oct4(“鐵三角”)調控[10-12]，既能相互調控，同時也能調控其自身表達[13]，其中oct4和sox2能形成異源二聚體轉錄復合物，且這三種轉錄因子共同結合到基因的啟動子區，激活調控維持ESC多能干性狀態基因的表達[14]，抑制胚層相關基因的表達；于是進一步完善nanog Luciferase Reporter實驗，提示PHC1與nanog之間可能會形成某種復合物參與nanog的轉錄調控。結果證實，敲降PHC1蛋白后可能是因為影響了nanog的轉錄調控，從而參與了核心轉錄因子nanog、sox2、oct4之間的相互轉錄機制，而細胞內nanog、oct4與sox2蛋白量的微小變化改變了轉錄因子在細胞內的比例，從而影響它們對互作蛋白選擇的偏好性，改變了細胞內基因整體的表達譜，使胚胎干細胞出現分化，參與mESCs多能干性維持。

綜上所述，本實驗結果初步表明，敲降PHC1基因后可能是通過影響nanog的轉錄調控，從而參與了核心轉錄調控“鐵三角”(nanog、oct4、sox2)之間的相互轉錄調控機制，導致mESCs的分化，參與mESCs多能干性的維持。