沙棘酵素發酵過程中代謝產物及抗氧化活性研究

張浩然,范昊安,顧逸菲,王珍珍,沙如意,*,毛建衛,4,*

(1.浙江科技學院生物與化學工程學院,浙江杭州 310023;2.浙江省農產品化學與生物加工技術重點實驗室,浙江杭州 310023;3.浙江省農業生物資源生化制造協同創新中心,浙江杭州 310023;4.浙江工業職業技術學院,浙江紹興 312006)

沙棘(HippophaerhamnoidesLinn.)是一種落葉性灌木[1],具有耐旱、抗風沙、可以在鹽堿化土地上生存的特性,因此被廣泛用于水土保持,特別是在中國西北部地區,由于沙漠綠化的需要,種植有大量沙棘[2-3]。沙棘為藥食同源植物,其果實含有豐富的營養物質和生物活性物質,包括人體所需要的各種氨基酸、脂肪酸、維生素、亞油酸、超氧化物歧化酶等活性物質,以及異鼠李素、槲皮素等7種黃酮類物質和多種微量元素,具有增強免疫力、延緩衰老、保護肝臟、保護胃腸道、加快細胞的造血、抗輻射、抗突變、抗腫瘤等作用[4-8]。

沙棘在食品、醫藥、輕工、農牧漁業等國民經濟的許多領域都有很好的應用前景[2,9]。市面上比較流行的沙棘產品有沙棘果汁、沙棘茶、沙棘鈣片、沙棘膠囊、沙棘果油、沙棘籽油等[3]。沙棘的一個新的研究方向是通過發酵來制備沙棘酵素,目前,關于沙棘酵素的研究較少。食用植物酵素(Edible plant source Jiaosu)是以一種或多種新鮮蔬菜、水果和谷豆類、海藻類、藥食兩用本草類等為原料,加(或不加)糖類物質,經多種有益菌通過較長時間發酵而生產的功能性微生物發酵產品,擁有豐富的次生代謝產物、植物本身營養成分和益生菌等功能成分,特別是富有小分子功能成分,研究表明該類產品具有抗衰老、抗菌消炎、凈化血液、增強機體免疫能力及解毒抗癌等多種保健功能[10-13]。開發沙棘酵素,加強對于沙棘酵素的研究有利于促進沙棘產業向深層次發展。

本文以野生沙棘果實為原料,研究沙棘酵素在發酵過程中總糖、總酸、琥珀酸、蘋果酸、酒石酸、抗壞血酸、醋酸、總酚等活性成分含量、抗氧化活性(羥基自由基清除能力、ABTS自由基清除能力和還原力)變化以及微生物菌落總數變化規律,同時利用相關性分析和主成分分析對各評價指標進行分析,為沙棘的綜合開發利用提供基礎數據。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

野生沙棘果實 采自山西呂梁山,2018年2月采樣;低聚異麥芽糖 由浙江省農產品化學與生物加工技術重點實驗室提供;雙氧水(H2O2)、福林酚(10%)、鐵氰化鉀、三氯化鐵、蒽酮、甲醇、碳酸鈣、氯化鈉(分析純) 國藥集團化學試劑有限公司;乙醇、抗壞血酸(VC)、三氯乙酸、2,2-聯氮基-雙-二胺鹽(ABTS)(分析純)、磷酸二氫鉀(HPLC級) 上海阿拉丁試劑有限公司;甲醇 HPLC級,美國天地有限公司;葡萄糖、胰蛋白胨、瓊脂粉、酵母浸粉 北京奧博星生物技術有限公司;馬鈴薯葡萄糖瓊脂 杭州百思生物科技有限公司;草酸、富馬酸、馬來酸、蘋果酸、檸檬酸標準品 國家食品藥品檢測中心;酒石酸 Sigma公司;抗壞血酸、莽草酸、沒食子酸、醋酸、乳酸標準品 上海阿拉丁生化科技股份有限公司。

PTX-FA210型電子天平 福州華志科學儀器有限公司;Allegra X-12R離心機 貝克曼庫爾特有限公司;PHS-3C型精密酸度計 杭州齊威儀器有限公司;KQ-300E型超聲波清洗器 昆山市超聲儀器有限公司;UV-5500PC型紫外分光光度計 上海市元析儀器有限公司;XMTD-204型數顯式電熱恒溫水浴鍋 常州諾基儀器有限公司;Waters e2695型高效液相色譜(配備Waters 2998二極管陣列紫外檢測器) Waters公司;MB-150CL型恒溫恒濕培養箱 青島明博環保科技有限公司;20L不銹鋼發酵罐 浙江省農產品化學與生物加工技術重點實驗室研制。

1.2 實驗方法

1.2.1 培養基的配制 PCA培養基:酵母粉2.5 g,蛋白胨5 g,葡萄糖1 g,瓊脂15 g,蒸餾水1000 mL,121 ℃濕熱滅菌15 min。

YEPD培養基:酵母粉10 g,蛋白胨20 g,葡萄糖20 g,瓊脂20 g,蒸餾水1000 mL,121 ℃濕熱滅菌15 min。

GYCA培養基:酵母粉5 g,蛋白胨3 g,葡萄糖30 g,碳酸鈣10 g,瓊脂20 g,蒸餾水1000 mL,121 ℃濕熱滅菌15 min。

1.2.2 沙棘酵素的制備 取滅菌、冷卻后的無菌水輕輕沖洗沙棘表面,自然瀝干、打漿,按沙棘∶低聚異麥芽糖∶水的質量比3∶3∶1,加入滅菌過的發酵罐,密閉、室溫發酵,每隔10 d取一定量發酵液,8000 r/min條件下離心10 min,保留上層清液備用。

1.2.3 總酚含量測定 采用福林酚法[14]測定樣品中總酚含量。取30 μL沙棘酵素離心上清液,加水至0.5 mL,加入10%福林酚溶液(v/v)2.5 mL,常溫靜置反應3 min,加入7.5% Na2CO3溶液(w/v)2 mL,混勻,于25 ℃反應1 h,以去離子水為空白,在765 nm下測定吸光度。并以沒食子酸為標品,繪制標準曲線。

1.2.4 pH測定 參照GB 10468-1989《水果和蔬菜產品pH的測定方法》[15],使用精密pH計測定樣品pH。

1.2.5 總酸含量測定 參照GB/T 12456-2008《食品中總酸的測定方法》[16],取樣品0.5 mL,加水定容至50 mL,取10 mL稀釋液于錐形瓶中,以1%酚酞試劑為指示劑,記錄消耗0.01 mol/L的氫氧化鈉溶液滴定體積,計算總酸含量(以蘋果酸計)。

1.2.6 有機酸種類及含量測定 樣品配制:用流動相將樣品稀釋5倍,經0.22 μm微孔濾膜過濾,采用HPLC檢測有機酸含量。

混合標準品配制:配制草酸、L-酒石酸、蘋果酸、莽草酸、抗壞血酸、乳酸、醋酸、馬來酸、檸檬酸、琥珀酸、富馬酸、沒食子酸的混合標準溶液,其質量濃度分別為0.1、0.1、0.5、0.01、0.1、1、1、0.01、1、0.01、1、0.01 mg/mL。

色譜條件:色譜柱為Atiantis? T3 C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相為甲醇:磷酸二氫鉀緩沖液(pH2.7)=2∶98 (v/v);流速為1.0 mL/min;柱溫為20 ℃;檢測波長為210 nm；檢測器:二極管陣列檢測器。

1.2.7 總糖含量測定 采用蒽酮-硫酸法[17]測定樣品中總糖含量。分別配制20、40、60、80、120、160 μg/mL的標準葡萄糖溶液,各標準溶液1 mL,加入4 mL 2 mg/mL蒽酮-硫酸溶液,混合均勻后置于沸水浴中反應10 min,冰浴中冷卻至室溫后,在620 nm處測定其吸光度,繪制得葡萄糖的標準曲線。沙棘酵素發酵液樣品經適當稀釋后,采用上述方法測定總糖含量。

1.2.8 羥基自由基清除能力的測定 取50 μL樣品,加去離子水補至2 mL,加入1.4 mL 6 mmol/L H2O2溶液,0.6 mL 20 mmol/L水楊酸鈉和2 mL 1.5 mmol/L硫酸亞鐵,混勻,37 ℃下恒溫水浴1 h。在510 nm下,以去離子水為空白,檢測樣品吸光度。羥基自由基清除能力計算見式(1)[18-19]。

式(1)

式中,A0是空白對照液的吸光度,A1為樣品測定管的吸光度,A2為樣品本底管的吸光度。

1.2.9 ABTS自由基清除能力的測定 用5 mmol/L pH7.4的PBS緩沖液將ABTS稀釋到7 mmol/L,加入過硫酸鉀溶液,得到最終濃度為2.45 mmol/L ABTS溶液,在暗處室溫放置12～16 h。使用前,在波長734 nm處,用PBS緩沖液將ABTS溶液稀釋,使其吸光度為0.70±0.02。

取7.5 μL樣品,用上述PBS溶液補足至300 μL,加入5 mL上述ABTS自由基稀釋液,30 ℃下反應1 h,734 nm下測吸光度。ABTS自由基清除能力計算見式(2)[20]。

式(2)

式中,A0是空白對照液的吸光度,A1為樣品測定管的吸光度,A2為樣品本底管的吸光度。

1.2.10 還原力的測定 取50 μL樣品,加入0.2 mol/L磷酸緩沖液(pH6.6)補足至2.5 mL,加入1%(w/v)鐵氰化鉀水溶液2.5 mL,混合均勻,于50 ℃恒溫反應30 min,加入10%(w/v)三氯乙酸水溶液2.5 mL,混勻,避光靜置10 min,取2.5 mL上清液,加入2.5 mL去離子水和0.5 mL 0.1%(w/v)三氯化鐵水溶液,混勻,在700 nm下,以去離子水為空白,檢測樣品吸光度[21]。

1.2.11 菌落總數的測定 參照GB 4789.2-2016 《食品微生物學檢驗菌落總數測定》[22]的方法,用10倍稀釋法,將體積分數分別為10-2～10-5稀釋菌液涂布于PCA培養基上,28 ℃培養48 h后計數。

1.2.12 酵母菌菌落數的測定 參照GB 4789.15-2016 《食品微生物學檢驗霉菌和酵母計數》[23]的方法,用10倍稀釋法,將體積分數分別為10-2～10-5稀釋菌液涂布于YEPD培養基上,28 ℃培養48 h后計數。

1.2.13 醋酸菌菌落數的測定 參照王玉冰[2]的方法,用10倍稀釋法,將體積分數分別為10-2～10-5稀釋菌液涂布于GYCA培養基上,28 ℃培養48 h后計數。

1.3 數據處理

每組實驗均重復三次,采用Origin 8.6進行繪圖,結果以平均值±標準差表示。

2 結果與分析

2.1 沙棘酵素發酵過程中總酚含量的變化

總酚的標準曲線如圖1所示,y=0.0104x-0.0253,R2=0.9998。沙棘酵素發酵過程中總酚含量變化如圖2所示。隨著發酵時間的延長,總酚含量呈先快速上升然后再趨于動態平衡的趨勢。發酵到第40 d,總酚含量達到最高,為1.29 mg/mL。發酵前40 d,總酚含量快速上升,可能主要與此階段沙棘中多酚類物質在高滲透壓作用下逐漸溶出以及微生物代謝有關。

圖2 發酵過程中總酚含量的變化Fig.2 Changes of total phenolic content during fermentation

2.2 沙棘酵素發酵過程中總酸含量與pH的變化

總酸在一定程度上可反映酵素發酵中微生物生長代謝情況,而pH通常可以作為判定微生物生長正常與否的重要指標。沙棘酵素發酵過程中總酸與pH含量變化趨勢如圖3所示,發酵過程中pH呈先降低再動態平衡的趨勢,總酸含量整體上呈先快速增加再動態平衡的趨勢。

圖3 發酵過程中總酸和pH的變化Fig.3 Changes in total acid and pH during fermentation

在發酵的前20 d,pH迅速下降,總酸含量明顯提高,這可能是由于原料中有機酸的大量溶出及醋酸菌等大量微生物代謝產生了醋酸等有機酸[24-26]。20 d后,pH基本穩定,總酸含量呈現緩慢上升的趨勢,發酵到第100 d,總酸含量達到最高為80.80 mg/mL。沙棘酵素在發酵過程中的總酸含量和pH變化趨勢與火龍果酵素、蘋果酵素基本一致,只是趨于穩定的時間有所區別(火龍果酵素是40 d,蘋果酵素是14 d),這可能與原料的品種特性以及參與自然發酵的微生物種類不同有關[2,27]。

2.3 沙棘酵素發酵過程中有機酸含量的變化

各有機酸的標準曲線如表1所示。沙棘酵素不同發酵時間點的樣品中的有機酸種類及含量變化見表2。由表2可知,沙棘酵素發酵過程中檢測到草酸、酒石酸、蘋果酸、莽草酸、抗壞血酸、醋酸、馬來酸、檸檬酸、富馬酸、琥珀酸和沒食子酸,其中蘋果酸、酒石酸、抗壞血酸的含量較高,呈先明顯升高再緩慢降低的趨勢。吳紫潔等[28]研究了12個沙棘品種果實中的有機酸組分,發現沙棘果實的有機酸有草酸、奎尼酸、蘋果酸、抗壞血酸和檸檬酸;戴達勇等[29]研究表明沙棘果粉中蘋果酸含量最高。由表2可知,醋酸和琥珀酸含量呈現不斷增加的趨勢,其余幾種有機酸的含量較低且變化不明顯;發酵過程中未檢測到乳酸;沙棘酵素中醋酸的含量明顯增加,經過100 d的發酵,從0.19203 mg/mL增加到1.31003 mg/mL,這可能是由于在發酵過程中,醋酸菌代謝旺盛,利用糖生成醋酸。發酵過程中新檢測到的有機酸有馬來酸、琥珀酸和沒食子酸,其中琥珀酸含量增加較為顯著,從第20 d開始檢測到琥珀酸,發酵100 d時,其含量為0.73932 mg/mL。Tsuji等[30]研究表明酵母菌等微生物發酵形成琥珀酸的路徑有三條:TCA循環的還原性分支,其主要在完全厭氧條件下活化;TCA循環的氧化分支,其主要在有氧條件下活化;以及乙醛酸支路。本實驗中琥珀酸含量的增加可能是酵母菌在代謝過程中大量繁殖造成的。

表1 有機酸標準曲線Table 1 Standard curves of organic acids

表2 發酵過程中12種有機酸變化Table 2 Changes of twelve organic acids during fermentation

沙棘果實經過微生物發酵后,含量最高的仍為蘋果酸,同時形成了新的有機酸,包括馬來酸、琥珀酸和沒食子酸,醋酸含量也明顯增加,這對其發揮生物學活性具有重要作用和意義。

2.4 沙棘酵素發酵過程中總糖含量的變化

總糖的標準曲線如圖4所示,y=0.00274x-0.00368,R2=0.9992。糖作為酵素發酵過程中微生物利用的主要碳源,其含量變化可以作為微生物代謝的核心指標之一。沙棘酵素發酵過程中的總糖含量變化如圖5所示。發酵的前30 d,總糖含量快速下降,在這個時間段內,一方面沙棘果原料中的水分在高糖滲透壓條件下,逐漸滲出,稀釋發酵液中的糖,使得發酵液中糖含量降低;另一方面,糖被酵母菌、醋酸菌等微生物作為碳源利用,用于合成和分解代謝[31]。楊小幸等[27]研究表明蘋果酵素中的蔗糖在21 d內被分解為葡萄糖和果糖,二者又被酵母菌和醋酸等微生物利用生成乙醇和醋酸等代謝產物。發酵至第50 d,總糖含量降低至初始總糖含量的49.94%,為0.42 g/mL;之后,總糖含量有緩慢增加的趨勢并逐漸趨于穩定,發酵至第100 d,總糖濃度相比最低點上升5.78%,這可能是由于微生物的生長繁殖和代謝導致發酵液中的總糖濃度下降與含糖代謝產物的產生共同影響造成的。

圖4 葡萄糖標準曲線Fig.4 The standard curve of glucose

圖5 發酵過程中總糖含量變化Fig.5 Changes in concentration oftotal sugar during fermentation

2.5 沙棘酵素發酵過程中抗氧化性能評價

2.5.1 羥基自由基清除能力的變化 羥基自由基是人體內一種常見的自由基,同時也是一種毒性最強的活性氧自由基,能夠殺死紅細胞,引起細胞膜、DNA等結構的氧化損傷[32]。沙棘酵素發酵過程中羥基自由基清除能力變化情況如圖6所示,隨著發酵時間的延長,沙棘酵素對羥基自由基清除能力明顯提高,發酵至40 d清除率達到最高為64.44%,隨后清除率趨于穩定。Li等[33]研究發現沙棘原料的抗氧化能力較低,而本文中沙棘經過發酵后,沙棘酵素的抗氧化能力提高非常明顯。沙棘酵素具有較強的羥基自由基清除能力,可能與其含有的酚類物質含量較高有關,Seyda等[34]研究表明酚類物質可以提供大量氫離子,經過共振雜化會變得穩定,從而促進了自由基清除能力的提高。

圖6 發酵過程中羥基自由基清除能力變化Fig.6 Changes in hydroxyl free radicalscavenging ability during the fermentation

2.5.2 ABTS自由基清除能力的變化 ABTS自由基常被用作親水性和親脂性物質的抗氧化能力的評價。沙棘酵素發酵過程中ABTS自由基清除能力變化情況如圖7所示,發酵的前40 d,ABTS自由基的清除能力明顯增強,發酵至第40 d時清除率達到47.45%,40 d之后清除率有明顯上下浮動。Floegel等[35]研究表明與DPPH自由基清除能力相比較,ABTS自由基的抗氧化活性效果更好,特別是對于色素含量較高和親水性原料。Erel等[36]研究表明酚類物質與ABTS自由基的清除能力具有顯著的正相關性,其中酚類物質的分子質量、羥基取代基的性質和芳香環的數量起到了關鍵作用。

圖7 發酵過程中對ABTS自由基清除能力變化Fig.7 Changes in ABTS free radicalscavenging ability during the fermentation

2.5.3 還原力的變化 還原力是反映抗氧化能力的另一指標,與多種抗氧化機制有關,包括還原能、結合自由基的清除、過氧化物的降解等,樣品的還原能力與吸光度呈正相關[37-38],通過測定反應液在700 nm處的吸光度來評價還原力的大小。沙棘酵素發酵過程中還原力的變化情況如圖8所示,隨著發酵時間的延長,還原力明顯提高,至40 d達到0.55,隨后還原力又緩慢上升并趨于穩定的趨勢,整體呈現“先快后慢”的趨勢。

圖8 發酵過程中還原力的變化Fig.8 Changes in reducing power during fermentation

2.6 沙棘酵素抗氧化活性與代謝產物的相關性分析

沙棘酵素在不同發酵時間的樣品具有明顯的羥基自由基清除能力、ABTS自由基清除能力和較高的還原力,這可能與沙棘酵素中含有的總酚、總酸、酒石酸、蘋果酸、抗壞血酸、醋酸、琥珀酸、總糖等代謝產物有關。沙棘酵素的抗氧化活性影響指標眾多,眾多指標之間可能會存在著部分信息的冗余,因而可以利用相關性分析來排除眾多相關變量的影響,對數據進行標準化處理,標準化后的數據進行相關性分析的結果如表3所示。

表3 經標準化處理后各參數的相關性分析Table 3 Correlation analysis of parameters after normalization

表5 旋轉前因子載荷矩陣Table 5 Rotated component matrix

由表3可知,在沙棘酵素發酵過程中,羥基自由基、ABTS自由基的清除能力和還原力這3個抗氧化指標之間呈現極顯著的正相關性(P<0.01),總酚、總酸和琥珀酸與3個抗氧化能力指標之間具有極顯著的正相關性(P<0.01),醋酸與3個抗氧化能力指標之間具有良好的正相關性(P<0.05),可見沙棘酵素所含的酚類物質和有機酸等物質具有一定的抗氧化作用。總糖含量與抗氧化活性具有極顯著負相關(P<0.01),說明發酵過程中微生物利用糖類物質代謝產生酚類等活性物質,從而提高了沙棘酵素的抗氧化活性。潘梓源等[39]研究表明桂圓酵素經過微生物發酵總酚含量是原桂圓水提液的5.05倍,其中新生成的酚類物質至少有16種,是多種微生物代謝產生的結果。

2.7 主成分分析

2.7.1 主成分分析的特征值 為了進一步明確沙棘酵素中各變量之間的相互關系,通過主成分分析對各變量進行降維處理。

沙棘酵素主成分的特征值、貢獻率和累積貢獻率如表4所示。以特征值1.0為納入標準,提取出2個主成分。其中第1主成分的貢獻率為69.166%,第2主成分的貢獻率為22.305%,二者累積方差貢獻率高達91.471%,即二者能夠反映原始變量91.471%的信息,可以用于描述大部分變量的信息。其中,第一主成分反映了總糖、羥基自由基清除率、還原力、總酚、ABTS自由基清除率、琥珀酸、總酸、pH和醋酸的變異信息,第二主成分反映了蘋果酸、抗壞血酸和酒石酸的變異信息。因此,對原先的12種變量指標進行降維處理后獲得2個新的變量,2個新變量分別用F1、F2表示,它們之間的線性關系為:

表4 主成分的特征值、貢獻率和累積貢獻率Table 4 The eigenvalue,contribution rate and thecumulative contribution rate of principal components

F1=-0.343×ZTS+0.341×ZHR+0.338×ZRP+0.338×ZTPC+0.337×ZABTS+0.333×ZSUA+0.329×ZAC-0.314×ZpH+0.251×ZACA-0.014×ZMAA-0.103×ZVC+0.179×ZTAA

F2=0.019×ZTS+0.007×ZHR-0.094×ZRP-0.043×ZTPC+0.064×ZABTS-0.150×ZSUA+0.091×ZAC-0.166×ZpH-0.097×ZACA+0.607×ZMAA+0.560×ZVC+0.485×ZTAA

2.7.2 主成分分析法構建抗氧化能力綜合評價指標 通過主成分分析法構建不同發酵時間樣品的綜合評價指標(Comprehensive evaluation index,CEI),即以每個主成分所對應的特征值占所提取主成分的特征值之和的比例,再進行線性加權求和得到綜合評價指標。

式(3)

不同發酵時間沙棘酵素的綜合評價指標如圖9所示。發酵前40 d的CEI值明顯升高,發酵40 d之后上升趨勢明顯減緩并趨于平穩。參考CEI值的變化,結果表明,發酵至40 d,各種代謝指標已基本穩定。

圖9 沙棘酵素綜合評價指標圖Fig.9 Comprehensive evaluation index of seabuckthorn jiaosu

2.8 沙棘酵素發酵過程中微生物菌群的變化

對沙棘酵素發酵過程中菌落總數、酵母菌、醋酸菌等菌落數量變化進行研究,如圖10所示。從酵母菌和醋酸菌菌落數的變化趨勢可以明顯看到遲緩期、對數期、穩定期、衰退期[40]。在發酵初期,由于菌種對生長環境需要適應,使得10～20 d的酵母菌和醋酸菌菌種數量增加緩慢,即二者需要經歷遲緩期來適應環境,所以菌落數增加較少;隨后20～30 d的酵母菌和20～40 d的醋酸菌分別進入對數生長期,二者適應環境之后數量快速增加;隨后菌種的繁殖達到動態平衡,酵母菌和醋酸菌分別在30～60 d和40～80 d進入穩定期;最后當外部的環境不再適合菌種生長時,即菌種的分解代謝超過了合成代謝,導致酵母菌在最后的60～100 d開始進入衰退期。

圖10 發酵過程中微生物菌群的變化Fig.10 Changes in the microbialcommunity during fermentation注:A:菌落總數;B:酵母菌;C:醋酸菌。

菌落數與總酚和總酸的變化趨勢基本一致,醋酸菌數量的增加驗證了發酵過程中醋酸含量不斷增加的原因,酵母菌含量的增加可能是導致發酵過程中琥珀酸含量增加的原因。葉陵等[41]研究表明剁辣椒在短期自然發酵過程中菌落總數和酵母菌菌落數呈現先增加再趨于平衡的趨勢,發酵初期的養分充足,微生物快速生長,但隨著發酵時間的延長,微生物代謝產生的醋酸等物質具有抗菌活性,從而使菌株生長放緩,這與本研究結果相一致。

3 結論

總酚與總酸含量、抗氧化能力(羥基自由基清除能力、ABTS自由基清除能力、還原力)呈先快速上升再動態平衡的趨勢;pH、總糖含量呈先快速降低再動態平衡的趨勢;沙棘酵素中的有機酸主要以酒石酸、蘋果酸、抗壞血酸為主,發酵過程中新檢測到的有機酸有馬來酸、琥珀酸和沒食子酸,醋酸和琥珀酸呈現不斷增加的趨勢。綜合評價指標分析結果表明:發酵前40 d的CEI呈逐漸上升趨勢,40 d之后上升趨勢明顯減緩并趨于平穩,說明發酵至40 d,各種代謝指標已基本穩定。對沙棘酵素發酵過程中的菌落總數、酵母菌和醋酸菌數量進行研究,發現沙棘酵素發酵過程中醋酸菌呈先快速上升再動態平衡的趨勢,酵母菌呈先快速上升再動態平衡最后緩慢下降的趨勢,從微生物的角度反映了沙棘酵素的代謝過程。