孫嫣 范新 王剛 朱韻辰



摘 要 目的:研究靈芝多糖粗提物對雌二醇誘導小鼠胸腺萎縮的改善作用。方法:將60只雌性ICR小鼠隨機分為正常對照組(生理鹽水)、模型組(生理鹽水)和靈芝多糖粗提物高、低劑量組(400、100 mg/kg,以生藥量計),每組15只。除正常對照組外,其余各組小鼠均隔天腹腔注射雌二醇(0.1 mg/只,共6次)建立胸腺萎縮模型。造模結束后次日,小鼠灌胃給藥,每天1次,連續給藥14 d。末次給藥24 h后,測定小鼠臟器(胸腺、脾)指數以及血漿中丙二醛(MDA)含量和谷胱甘肽S-轉移酶(GST)活性,采用蘇木精-伊紅染色法觀察小鼠胸腺、脾組織的病理學變化,采用原位末端標記法檢測小鼠胸腺細胞凋亡情況,并采用流式細胞術檢測其外周血中T細胞亞群分類。結果:與正常對照組比較,模型組小鼠胸腺指數和外周血中CD3+CD4+T細胞比例、CD4+/CD8+T比值均顯著降低(P<0.01),脾指數、血漿中MDA含量、胸腺細胞凋亡水平以及外周血中CD3+CD8+T細胞比例均顯著升高(P<0.05或P<0.01);小鼠胸腺皮質和髓質分界模糊、細胞間隙增大、皮質出現部分細胞損傷凋亡,脾組織未見明顯病理學變化。與模型組比較,靈芝多糖粗提物高劑量組小鼠胸腺指數、血漿中GST活性以及外周血中CD3+CD4+T細胞比例、CD4+/CD8+比值均顯著升高(P<0.05或P<0.01),血漿中MDA含量、胸腺細胞凋亡水平顯著降低(P<0.05或P<0.01),且胸腺組織病理學變化明顯改善;靈芝多糖粗提物低劑量組小鼠僅血漿中MDA含量顯著降低(P<0.01),其余指標/病理學變化均不明顯。結論:高劑量(400 mg/kg)靈芝多糖粗提物對雌二醇誘導的小鼠胸腺萎縮具有一定的改善作用。
關鍵詞 靈芝多糖粗提取;雌二醇;胸腺萎縮;免疫調節;小鼠
ABSTRACT OBJECTIVE: To study the improvement effects of Ganoderma lucidum polysaccharides crude extract on estradiol-induced thymus atrophy in mice. METHODS: Totally 60 female ICR mice were randomly divided into normal control group (normal saline), model group (normal saline), G. lucidum polysaccharides crude extract high-dose and low-dose groups (400, 100 mg/kg, by crude drug), with 15 mice in each group. Except for normal control group, other groups were given estradiol intraperitoneally (0.1 mg/mice, 6 times) every other day to establish thymic atrophy model. The next day after modeling finished, they were given relevant medicine intragastrically, once a day, for consecutive 14 d. Twenty-four hours after last medication, organ (thymus, spleen) index, MDA content and GST activity in plasma were determined. HE staining was adopted to observe the pathological changes of thymus and spleen tissue in mice. The thymus cell apoptosis was examined by TUNEL assay, and the T cell subsets in peripheral blood were detected by flow cytometry. RESULTS: Compared with normal control group, the thymus index, proportion of CD3+CD4+T cell in peripheral blood and CD4+/CD8+ ratio were decreased significantly in model group (P<0.01); spleen index, MDA content in plasma and thymocyte apoptosis level as well as the proportion of CD3+CD8+T cell in peripheral blood were all increased significantly (P<0.05 or P<0.01). Thymic cortex and medullary boundary of mice was blurred; the intercellular space was enlarged; some cells were damaged and apoptotic in cortex; no pathological changes were found in the spleen. Compared with model group, thymus index and GST activity in plasma as well as proportion of CD3+CD4+T cell in peripheral blood and CD4+/CD8+ ratio were all increased significantly in G. lucidum polysaccharides crude extract high-dose group (P<0.05 or P<0.01); while MDA content in plasma, the apoptosis level of thymocytes were all decreased significantly (P<0.01 or P<0.05); and the pathological changes of thymus were improved significantly. MDA content in plasma was decreased significantly in G. lucidum polysaccharides crude extract low-dose group (P<0.01), and other indexes/pathological changes were not obvious. CONCLUSIONS: High dose (400 mg/kg) of G. lucidum polysaccharides crude extract can improve the thymus atrophy induced by estradiol in mice.
KEYWORDS Ganoderma lucidum polysaccharide crude extract; Estradiol; Thymus atrophy; Immunomodulation; Mice
靈芝多糖(Ganoderma lucidum polysaccharides)為名貴中藥材靈芝的主要藥效成分之一,其種類繁多,結構復雜,分子量從幾百到幾十萬不等,到目前為止,被人們發現的靈芝多糖已經超過200種[1]。靈芝多糖主要來源為靈芝子實體多糖、發酵液多糖以及液體發酵產生的菌絲體多糖[2]。靈芝多糖作為一種有效免疫調節劑,能夠全面且有效地影響免疫細胞(包括T淋巴細胞、巨噬細胞、B淋巴細胞等)的功能,同時釋放趨化因子、生長因子,從而調節機體的適應性免疫[3],其調節機體免疫力的功效已成為研究熱點[4]。胸腺作為免疫系統重要的中樞器官,與機體的健康息息相關。但自然衰老、病毒感染、藥物誘導以及外傷等均可能會誘導胸腺萎縮,從而導致免疫力下降,加速衰老與疾病的發生[5]。在前期的研究中,筆者發現靈芝孢子粉對胸腺萎縮有一定的改善作用,而靈芝多糖是其主要藥效成分之一,故本研究擬探索靈芝多糖對雌二醇誘導小鼠胸腺萎縮的影響,明確靈芝多糖調節免疫的藥效作用,為靈芝藥用成分的深入開發提供參考。
1 材料
1.1 儀器
ME204E型萬分之一分析天平、DM4000型生物顯微鏡(德國Leica公司);CS120FNX型微量超速冷凍離心機(日本Hitachi公司);M200Pro型酶標儀(瑞士Tecan公司);NovoCyte型流式細胞儀(美國ACEA Biosciences公司)。
1.2 藥品與試劑
靈芝菌粉(浙江方格藥業有限公司,批號:10141-3-160517);苯甲酸雌二醇注射液[上海全宇生物科技(駐馬店)動物藥業有限公司,批號:190504,規格:4 mg ∶ 2 mL];丙二醛(MDA)含量檢測試劑盒、谷胱甘肽-S-轉移酶(GST)活性檢測試劑盒(北京索萊寶科技有限公司,批號:20200218、20200316);原位末端標記法(TUNEL)凋亡檢測試劑盒(上海碧云天生物技術有限公司,批號:080919190826);CD3-別藻藍蛋白(APC)、CD4-藻紅蛋白(PE)、CD8-異硫氰酸(FITC)抗體(美國Biogems公司,批號:80E041705122、60E271706122、50M281710- 112);其余試劑均為分析純,水為實驗室自制三蒸水。
1.3 動物
健康ICR小鼠60只,雌性,體質量18~20 g,購自浙江省醫學科學院實驗動物中心,實驗動物生產許可證號:SCXK(浙)2019-0002,質量合格證號:1912180039。動物飼養于屏障級動物房,環境溫度為18~26 ℃、相對濕度為40%~70%、光照明暗交替(各12 h)、每小時通風22次。實驗方案符合《浙江省實驗動物管理辦法》對動物倫理的要求。
2 方法
2.1 靈芝多糖粗提物的制備
取靈芝菌粉80 g,加1 600 mL水,超聲(功率:300 W,頻率:40 kHz)提取2次(第1次提取1 h、第2次提取0.5 h),過濾,合并2次濾液。將濾液60 ℃減壓濃縮至1 g/mL(以生藥量計)的藥液,加入95%乙醇400 mL調溶液的醇體積分數為80%,混勻,4 ℃下靜置24 h,然后以4 000 r/min離心20 min,棄去上清液。取沉淀,冷凍干燥即得靈芝多糖粗提物,得率為5%。用硫酸蒽酮法[6]測得其多糖含量為15%。
2.2 分組、造模與給藥
將60只小鼠根據體質量按隨機分組表分為4組,每組15只,分別為正常對照組(生理鹽水)、模型組(生理鹽水)和靈芝多糖粗提物高、低劑量組(400、100 mg/kg,以生藥量計)[7]。模型組和靈芝多糖粗提物高、低劑量組小鼠隔天腹腔注射苯甲酸雌二醇注射液(0.1 mg/只)1次,共注射6次(造模用時11 d);正常對照組小鼠不作任何實驗操作。于造模完成后次日開始給藥,每天給藥1次,連續給藥14 d。
2.3 取材與樣本處理
末次給藥24 h后,稱定小鼠體質量并從眼內眥取血(約0.5 mL),將血樣置于乙二胺四乙酸二鉀(EDTA-2K)抗凝管中,渦旋搖勻,備用。取血后將小鼠脫頸椎處死,取出胸腺和脾,稱質量,將胸腺和脾組織置于福爾馬林溶液中固定,用于后續病理學檢測。
2.4 小鼠臟器指數測定
根據“2.3”項下測定的末次給藥24 h后小鼠體質量和臟器(胸腺、脾)質量計算其臟器指數:臟器指數=臟器(胸腺、脾)質量(mg)/末次給藥24 h后體質量(g)。
2.5 小鼠血漿中MDA含量和GST活性檢測
取適量抗凝血,以3 000 r/min離心15 min,然后取上層血漿,根據相應試劑盒說明書操作,檢測血漿中MDA含量和GST活性。
2.6 小鼠胸腺、脾組織的病理學變化觀察
將小鼠胸腺、脾組織置于福爾馬林溶液中固定1周后取出,常規制作石蠟切片(厚度5 μm),行蘇木精-伊紅(HE)染色,然后于顯微鏡下觀察胸腺和脾組織的病理學變化。
2.7 小鼠胸腺細胞凋亡檢測
采用TUNEL法進行檢測。取“2.6”項下各組小鼠胸腺組織石蠟切片(每組選3個組織樣本),置于防脫載玻片上,55 ℃下烤片2 h,然后按照TUNEL凋亡檢測試劑盒(顯色法)說明書進行操作,檢測胸腺組織中胸腺細胞的凋亡情況(鏡下可見凋亡細胞被染色成棕褐色)。使用Image J 1.52a軟件根據陽性染色面積進行半定量分析。每個組織隨機選取2個面積相同的視野并計算選擇視野下陽性染色面積的相對面積百分比(即陽性染色面積占總面積的百分比),用來表示細胞凋亡水平。
2.8 小鼠外周血中T細胞分類檢測
取100 μL小鼠抗凝血(每組取10個樣本進行測定),加入CD3-APC、CD4-PE、CD8-FITC熒光抗體,充分混勻,室溫下避光孵育15 min。孵育結束后,加入1 mL紅細胞裂解液,混勻,室溫下避光處理15 min,然后以500×g離心5 min,棄去上清液;加入1 mL常溫無菌磷酸鹽緩沖液(PBS)清洗后,再次以500×g離心5 min,棄去上清液;加入0.5 mL常溫無菌PBS重懸后,采用流式細胞儀進行檢測,分析外周血中T細胞亞群比例。
2.9 統計學方法
采用SPSS 20.0軟件進行數據分析。計量資料以x±s表示,多樣本均數間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗。P<0.05為差異具有統計學意義。
3 結果
3.1 小鼠臟器質量和臟器指數測定結果
與正常對照組比較,模型組小鼠胸腺質量、胸腺指數均顯著降低(P<0.01),脾質量和脾指數均顯著升高(P<0.05)。與模型組比較,靈芝多糖粗提物高劑量組小鼠胸腺質量、胸腺指數顯著升高(P<0.01)。各組小鼠胸腺、脾質量及其臟器指數測定結果見表1。
3.2 小鼠血漿中MDA含量和GST活性檢測結果
與正常對照組,模型組小鼠血漿中MDA含量顯著升高(P<0.01)。與模型組比較,靈芝多糖粗提物高、低劑量組小鼠血漿中MDA含量均顯著降低(P<0.01),且靈芝多糖粗提物高劑量組小鼠血漿中GST活性顯著升高(P<0.05)。各組小鼠血漿中MDA含量與GST活性檢測結果見表2。
3.3 小鼠胸腺和脾組織病理學變化觀察結果
3.3.1 胸腺組織 正常對照組小鼠胸腺組織皮質髓質分界明顯,皮質區淋巴細胞排列整齊,髓質區可見胸腺小體。模型組小鼠胸腺組織皮質變薄,其中胸腺細胞數明顯減少、結構疏松,細胞間隙增大,可見大量網狀上皮細胞,皮質分界較為模糊。靈芝多糖粗提物高劑量組小鼠胸腺組織皮質與髓質分界較為清晰,細胞排列規整。靈芝多糖粗提物低劑量組小鼠胸腺組織病理學變化雖較模型組有一定改善,但皮質髓質分界仍不夠清晰,細胞間隙仍較大。各組小鼠胸腺組織病理學顯微圖見圖1。
3.3.2 脾組織 各組別小鼠的脾組織被膜均完整,白髓、紅髓組織均清晰,淋巴小結分布均無顯著變化,HE染色結果顯示各組間未見明顯差異。各組小鼠脾組織病理學顯微圖見圖2。
3.4 小鼠胸腺細胞凋亡檢測結果
與正常對照組比較,模型組小鼠胸腺細胞凋亡水平顯著升高(P<0.01),皮質、髓質均出現了細胞凋亡。與模型組比較,靈芝多糖粗提物高劑量組小鼠胸腺細胞凋亡水平顯著降低(P<0.05)。各組小鼠胸腺組織細胞凋亡顯微圖見圖3,細胞凋亡水平測定結果見圖4。
3.5 小鼠外周血中T細胞分類檢測結果
與正常對照組比較,模型組小鼠外周血中CD3+CD4+T細胞比例和CD4+/CD8+比值均顯著降低(P<0.01),CD3+CD8+T細胞比例顯著升高(P<0.05)。與模型組比較,靈芝多糖粗提物高劑量組小鼠外周血中CD3+CD4+T細胞比例和CD4+/CD8+比值均顯著升高(P<0.01)。各組小鼠外周血流式細胞儀分析結果見圖5,T細胞亞群檢測結果見表3。
4 討論
在本研究中,模型組小鼠胸腺質量及胸腺指數顯著降低,而脾質量及脾指數顯著升高。在小鼠受到雌二醇刺激出現胸腺萎縮后,機體免疫力隨之下降,故筆者認為,此時脾臟增大是機體為了提高自身免疫水平而出現的代償性增長,故脾臟HE染色結果中也未發現組織出現病變。MDA含量是反映機體抗氧化潛在能力的重要指標,可反映血液系統中氧自由基的水平[8]。GST是體內解毒系統的組成部分,該指標可用于評價藥物干預后,是否可以增強機體的解毒水平[8]。本研究結果顯示,高劑量靈芝多糖粗提物可以明顯降低血漿中MDA含量,從而減輕氧化作用;并且其還可顯著提高血漿中GST活性,從而提升機體的解毒能力。根據胸腺組織的病理學觀察結果以及胸腺細胞凋亡檢測結果來看,高劑量靈芝多糖粗提物可一定程度地減輕模型小鼠胸腺細胞的損傷,改善其胸腺組織的萎縮,但對小鼠脾指數并無顯著改善,這說明靈芝多糖粗提物對該模型小鼠脾臟無明顯影響。
胸腺作為哺乳動物T細胞分化、發育和成熟的主要場所,為T細胞的發育提供了一個完善而復雜的微環境,可有序地調控T細胞的成熟和遷移[5]。胸腺作為機體免疫系統的關鍵器官之一,在青少年時期發育達到頂峰,隨著年齡的增長,胸腺每年約以3%的體積逐漸萎縮,中老年后胸腺逐漸脂肪化,功能也隨之減弱,這也是老年人免疫力低下、更容易患病的原因之一[9-10]。同時,外界因素如病毒感染、疾病、藥物以及激素水平變化等都是造成胸腺萎縮的誘因,胸腺的萎縮將會造成機體抵抗力的進一步下降[11-12]。若以抑制胸腺萎縮作為藥物研究的方向,將會對疾病的治療以及維持機體的健康起到積極的作用。
T細胞亞群間的比值是反映機體細胞免疫功能的重要指標,在分析發病機制、觀察療效及監測預后中具有重要意義[13]。T細胞亞群主管細胞免疫,具有抵抗病毒和調節免疫系統功能的作用,其細胞功能取決于T細胞總值(CD3+)及其亞群(CD4+、CD8+)的相對組成。正常情況下,T細胞亞群間互相拮抗達到平衡;當免疫失衡時,T細胞亞群的比值變化紊亂,則易引發疾病[14]。CD4+是誘導與輔助的T細胞,是調控免疫反應的樞紐細胞;CD8+是抑制與毒殺的T細胞,是免疫反應直接殺傷性細胞。CD4+/CD8+比值可反映機體免疫功能的情況,當該比值下降時則表明機體免疫處于被抑制的狀態[15]。本研究結果顯示,模型組小鼠外周血中CD3+CD4+T細胞比例較正常對照組顯著下降,CD3+CD8+T細胞比例較正常對照組顯著上升。這說明在雌二醇作用下,起誘導與輔助作用的CD3+CD4+T細胞受到了抑制,導致CD4+/CD8+比值降低,機體免疫力下降。靈芝多糖粗提物高劑量組小鼠給藥后外周血中CD3+CD4+T細胞比例和CD4+/CD8+比值較模型組顯著升高,這說明靈芝多糖粗提物可提高CD3+CD4+T細胞的轉化,從而調控機體免疫力;而靈芝多糖粗提物低劑量的調控效果相對不明顯。
綜上所述,本文研究了靈芝多糖粗提物對雌二醇誘導的小鼠胸腺萎縮的影響,發現高劑量(400 mg/kg)靈芝多糖粗提物對該模型小鼠的胸腺萎縮具有一定的改善作用。由于臨床上并無針對胸腺萎縮癥狀的藥物,故本研究未設置陽性藥物組。此外,本研究所用的靈芝多糖為粗提物,在后期研究中,筆者將會通過優化工藝,對更高純度靈芝多糖的藥效及其改善胸腺萎縮作用的可能機制開展進一步研究。
參考文獻
[ 1 ] 解修超,賈少杰,彭浩,等.靈芝多糖液體發酵調控及藥理作用研究進展[J].陜西理工大學學報(自然科學版),2018,34(6):65-70.
[ 2 ] 王穎,魏佳韻,吳思佳,等.靈芝多糖結構特征及藥理作用的研究進展[J].中成藥,2019,41(3):627-635.
[ 3 ] 謝怡瓊,王琪瑞,孫思雅,等.靈芝的藥理作用和臨床應用研究進展[J].臨床醫學研究與實踐,2020,5(10):191- 193.
[ 4 ] 陳文華,程顯好,譚會穎,等.靈芝多糖的藥理作用及其機制研究進展[J].中國藥房,2018,29(24):3446-3450.
[ 5 ] 曾艷,宋銀宏.年齡依賴性胸腺萎縮的相關因素[J].中國免疫學雜志,2019,35(23):2932-2935.
[ 6 ] 國家藥典委員會.中華人民共和國藥典:一部[S]. 2015年版.北京:中國醫藥科技出版社,2015:188-189.
[ 7 ] 李建軍.靈芝多糖免疫調節作用與抗腫瘤作用的關系及作用機制的研究[D].廣州:第一軍醫大學,2007.
[ 8 ] YANG ZW,WANG J,LI JG,et al. Antihyperlipidemic and hepatoprotective activities of polysaccharide fraction from Cyclocarya paliurus in high-fat emulsion-induced hyperlipidaemic mice[J]. Carbohyd? Polym,2017. DOI:10. 1016/j.carbpol.2017.11.033.
[ 9 ] MAJUMDAR S,NANDI D. Thymic atrophy:experimental studies and therapeutic interventions[J]. Scand? J? Immunol,2018,87(1):4-14.
[10] ASPINALL R,MITCHELL W. Reversal of age-associated thymic atrophy:treatments,delivery,and side effects[J]. Exp Gerontol,2008,43(7):700-705.
[11] XAVIER AM,ANUNCIATO AKO,ROSENSTOCK TR,et al. Gene expression control by glucocorticoid receptors during innate immune responses[J]. Front Endocrinol:Lausanne,2016. DOI:10.3389/fendo.2016.00031.
[12] PALMER S,ALBERGANTE L,BLACKBURN CC,et al. Thymic involution and rising disease incidence with age[J]. PNAS,2018,115(8):1883-1888.
[13] 馬錫慧,肖漓.淋巴細胞亞群成員研究進展[J].中華細胞與干細胞雜志,2017,7(3):168-172.
[14] AMUNULLA A,VENKATESAN R,RAMAKRISHNAN H,et al. Lymphocyte subpopulation in healthy and di-? seased gingival tissue[J]. J Indian Soc Periodontol,2008,12(2):45-50.
[15] ZHANG HP,WU T. CD4+T,CD8+T counts and severe COVID-19:a meta-analysis[J]. J? Infect,2020. DOI:10. 1016/j.jinf.2020.06.036.
(收稿日期:2020-05-12 修回日期:2020-07-12)
(編輯:林 靜)