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三七總皂苷對過氧化氫所致內(nèi)皮細胞損傷的保護作用

2020-09-29 08:54:28劉金海耿勝男張萌萌張會麗
亞太傳統(tǒng)醫(yī)藥 2020年9期
關(guān)鍵詞:實驗

謝 鵬,劉金海,耿勝男,張萌萌,張會麗

(鄭州工業(yè)應(yīng)用技術(shù)學(xué)院 藥學(xué)與化學(xué)工程學(xué)院,河南 鄭州 450000)

動脈粥樣硬化(AS)是一種血管內(nèi)毒素堆積導(dǎo)致的非炎癥性病變,具體病因目前仍未闡明[1-4]。研究表明,影響動脈粥樣硬化的重要因素是氧化應(yīng)激所產(chǎn)生的活性氧(ROS)[5-6]。內(nèi)皮細胞數(shù)量穩(wěn)定和血管功能正常的動態(tài)平衡是通過內(nèi)皮細胞損傷與增殖來實現(xiàn)的[7-8]。因此,有效地控制內(nèi)皮細胞受損、保護內(nèi)皮細胞的氧化應(yīng)激性對AS具有積極的作用[9-11]。PNS是從三七中提取分離得到,研究發(fā)現(xiàn),其含有皂苷活性物質(zhì)、微量元素、豐富的維生素等[12]。PNS能減少機體氧的消耗量,增強機體對氧的耐受力,還可以使腦血管擴張,血流量增加,具有抗血栓和抗凝血的功能,具有改善動脈粥樣硬化程度等廣泛的藥理作用[13-17]。H2O2是一種主要的活性氧,能誘導(dǎo)內(nèi)皮細胞的保護能力。本實驗研究不同濃度的PNS對HUVECs損傷的影響。

1 材料

1.1 實驗細胞

人臍靜脈血管內(nèi)皮細胞(中國科學(xué)院細胞庫)。

1.2 實驗儀器與試劑

二氧化碳培養(yǎng)箱(Thermos);低溫離心機(Eppendorf);電子天平(Sartorius);高壓蒸汽滅菌鍋(施都凱儀器設(shè)備有限公司);酶標儀(美國伯騰儀器有限公司);電泳儀(上海天能有限公司);細胞粉碎機(Eppendorf);顯微鏡(上海測維光電技術(shù)有限公司);PCR儀(杭州郎基科學(xué)儀器有限公司);凝膠成像系統(tǒng)(上海天能科技有限公司)。

三羥甲基氨基甲烷、甘氨酸、十二烷基硫酸鈉、丙烯酰胺(sigma試劑有限公司);吐溫-20(國藥集團化學(xué)試劑有限公司);BSA蛋白濃度試劑盒(碧云天生物技術(shù)公司);FDA染色劑(阿拉丁試劑有限公司);預(yù)染marker(上海雅酶生物科技有限公司);細胞裂解液(碧云天生物技術(shù)公司);氯仿、乙醇、異丙醇(成都市科龍化工試劑廠);三七總皂苷、MTT(Sigma-Aldrich);MDA、SOD、LDH、GSH、GAPDH抗體(Cell Signaling公司)。

2 方法

2.1 細胞復(fù)蘇和傳代

37 ℃解凍細胞,轉(zhuǎn)移至離心管,加10%完全培養(yǎng)基,1 000 rpm離心5 min,倒掉上清液。將細胞懸液繼續(xù)培養(yǎng),實時更換培養(yǎng)液。

將原代細胞培養(yǎng)24 h后,觀察細胞密度是否達到80%~90%,再進行傳代。取出HUVECs,將2 mL無菌PBS緩沖液輕輕沖洗細胞培養(yǎng)瓶壁2次。適量胰酶消化,加入10%完全培養(yǎng)液2 mL。緩慢吹打瓶壁,使細胞完全脫離。轉(zhuǎn)移至離心管中1 000 rpm離心5 min。根據(jù)細胞數(shù)量和生長狀況,將細胞轉(zhuǎn)移到新培養(yǎng)瓶中,標記好細胞傳代時間和次數(shù)等信息。觀察細胞密度和狀態(tài),繼續(xù)培養(yǎng),選擇形狀相對穩(wěn)定的第3~5代的胞用于實驗研究。對細胞進行計數(shù)。將細胞懸液以每孔1×104的密度接種至96孔板,以每孔6×104的密度接種培養(yǎng)皿,繼續(xù)培養(yǎng)至完全貼壁。

2.2 分組及給藥

將完全貼壁的細胞取出,并對其進行分組。空白組細胞不施加任何干預(yù)因素;過氧化氫組細胞加入過氧化氫,終濃度為500 μmol/L;PNS-H組細胞加入PNS,終濃度為60 μmol/L,30 min后再加入H2O2作用;PNS-L組細胞加入PNS,終濃度為30 μmol/L,30 min后再加入H2O2作用。繼續(xù)培養(yǎng)24 h。

2.3 蛋白免疫印跡檢測蛋白

按照實驗需求對細胞進行實驗處理,在收集的細胞中加入適量預(yù)冷的含有PMSF及磷酸酶抑制劑的裂解液(1 mL的裂解液加入100 μL的PMSF),4 ℃裂解30 min,12 000 r/min低溫離心10 min,轉(zhuǎn)移上清液。備用。

2.3.1 考馬斯亮藍法測蛋白濃度 本實驗中所使用的蛋白標準品(BSA)的濃度為0.5 mg/mL,依據(jù)表1進行添加,上樣,記錄。加100 μL考馬斯亮藍染色液,靜置觀察。用酶標儀在562 nm的波長下測定。

表 1 蛋白濃度梯度

2.3.2 電泳樣本的制備 在制好的蛋白樣品中加200 μL 5X上樣緩沖液(5X倍,1∶4=緩沖液∶樣本)。用沸水加熱15 min使其充分變相。

2.3.3 Western blot檢測蛋白的表達 本實驗分離膠為12%的分離膠和5%的壓縮膠配制而成。根據(jù)考馬斯亮藍法所測定的蛋白樣品濃度計算所需上樣量,然后加入1/4蛋白體積的5X上樣緩沖液,混勻后在沸水中煮15 min,制得蛋白樣品。在1.5 mm玻璃板中加入7~8 mL的分離膠,加入2~3 mL異丙醇封壓,排出氣泡,凝結(jié)后,棄異丙醇,加壓縮膠,加梳子,制得膠。將電泳套件置于電泳槽中,加入新鮮電泳液浸泡。垂直拔下梳子,用上樣針吸取所需的蛋白樣品加到凝膠加樣孔內(nèi),加雙色預(yù)染蛋白Maker。電壓設(shè)為低電壓80 V,待Marker基本分離后加大電壓,直至電泳結(jié)束。設(shè)定轉(zhuǎn)膜電壓為110 V,時間75 min。切取PVDF膜,活化,倒入轉(zhuǎn)膜液,加冰轉(zhuǎn)膜。將蛋白膜放在5%脫脂牛奶封閉液中,37 ℃封閉1 h。加入按照1∶25 000稀釋(1X TBS-T稀釋)的一抗,4 ℃孵育過夜。1X TBST漂洗 PVDF膜4~5次,每次10 min。加入按照1∶25 000稀釋好的二抗,37 ℃孵育1 h。洗膜,將PVDF膜放在顯影儀上,撒上發(fā)光液,運行軟件,選擇化學(xué)發(fā)光,設(shè)置曝光時間,進行5 s、10 s拍照。

2.4 PCR檢測相關(guān)基因

2.4.1 總RNA的抽提 按照實驗要求對樣本進行處理,將裂解的細胞勻漿,加入0.2 mL氯仿,渦旋,室溫放置15 min。對不同細胞進行編號。2~8 ℃,10 000 r離心15 min,用移液器將上層水相轉(zhuǎn)移至新Ep管中,加入500 μL的異丙醇,渦旋混勻,室溫放置10 min,2~8 ℃,10 000 r離心10 min,倒掉上清。加入75%的乙醇,渦旋10 s,2~8 ℃,7 500 r離心5 min,棄上清。放置在吸水紙上,進行RNA沉淀干燥處理,加入50 μL水,混勻。

2.4.2 RNA逆轉(zhuǎn)錄 第一鏈進行cDNA的合成,去基因組DNA反應(yīng),按照說明進行溶液配置,42 ℃孵育5 min,4 ℃保存。將下表液體渦旋混勻后,進行逆轉(zhuǎn)錄,50 ℃孵育30 min,75 ℃孵育5 min,終止反應(yīng)。得到含有cDNA的混合液體,每個樣本需進行4個目的基因的PCR實驗,重復(fù)3次測試,把逆轉(zhuǎn)錄的4個含cDNA的樣本均稀釋3倍。然后再進行PCR實驗,剩余cDNA凍存。

對人臍靜脈內(nèi)皮細胞SOD、CAT、MDA、LDH、GSH這5個基因的ID進行查詢與設(shè)計,再進行基因序列的合成。

引物合成后離心處理,稀釋,使所有引物的終濃度達到所需終濃度。PCR測試采用MonAmpTMChemoHS Qpcr Mix(None Rox)試劑,并按照該試劑說明書進行。進行30次循環(huán),檢測完畢后,導(dǎo)出PCR數(shù)據(jù)。

表2 引物名稱及序列

2.5 MTT法檢測細胞活力

量取6 mLPBS溶液,稱取0.03 g的MTT粉末,溶解,混勻,0.22 μm微孔濾膜過濾,4 ℃避光保存。取出HUVECs的96孔板,每孔加入20 μL的MTT溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,吸取孔內(nèi)的上清液,加入0.2 mL的DMSO,孵育3~5 min,用酶標儀在493 nm處測定吸光度,計算HUVECs存活率。細胞活力(%)=(實驗組-空白組)/(對照組-空白組)×100%。

2.6 FDA染色

取0.01 g的FDA粉末溶于1 mL的丙酮中,配成終濃度為10 mg/mL的母液,放于4 ℃冰箱,使用時按1∶1 000進行稀釋,取出HUVECs的6孔板,棄去培養(yǎng)液,加入稀釋過的FDA溶液0.1 mL,孵育20 min,棄去液體,用PBS沖洗2次,放置于488 nm的熒光顯微鏡下進行拍照。

3 結(jié)果

3.1 MTT檢測

由表3的實驗數(shù)據(jù)顯示,H2O2組和各PNS組與空白組進行對比,當PNS濃度為60 μmol/L,內(nèi)皮細胞活性顯著增高(P<0.01),表明此濃度對細胞損傷有保護作用。當PNS為30 μmol/L,細胞活力沒有明顯增高,藥物作用不明顯,但隨著劑量的增加,細胞存活率有所上升。

表3 不同濃度的PNS對H2O2損傷HUVECs活力的影響

3.2 FDA染色

由圖1可以看出,與H2O2組相比,當PNS濃度在60 μmol/L時,細胞的密度最大,存活率最高。當PNS濃度為30 μmol/L時,熒光效果不太明顯,細胞存活率不高,因此當PNS濃度為60 μmol/L時對細胞有很好的保護作用。

3.3 PCR檢測

由表4可以得出,不同濃度的PNS都會對SOD、MDA、LDH、GSH產(chǎn)生影響,空白組與H2O2組進行對比,SOD、MDA的水平升高(P<0.01),LDH、GS的水平降低(P<0.01)。不同濃度的PNS組與H2O2組對比,PNS濃度在60 μmol/L時,SOD、MDA的顯著上升(P<0.01),LDH、GSH下降(P<0.01)。因此PNS濃度為60 μmol/L時對HUVECs的保護作用最為明顯。

圖1 FDA染色圖

圖2 不同組別SOD、GSH、MDA、LDH蛋白表達水平

表4 不同組別SOD、GSH、MDA、LDH mRNA表達

由圖2可以看出,與H2O2組相比,SOD、MDA增加(P<0.01),空白組減少(P<0.01)。與H2O2組相比,LDH、GSH在H2O2組中顯著減少(P<0.01),而在空白組中表達量最多(P<0.05)。當PNS濃度為60 μmol/L時,對受損內(nèi)皮細胞的修復(fù)能力最高。

4 結(jié)論

本實驗利用H2O2能透過細胞膜和核膜進入細胞內(nèi)引起膜脂質(zhì)過氧化反應(yīng)[18],導(dǎo)致內(nèi)皮細胞嚴重損傷,從而引起疾病的發(fā)生,對人體造成不可預(yù)知的危害,建立細胞損傷模型。通過Western blot和PCR檢測發(fā)現(xiàn)PNS可抑制LDH、GSH的表達,并提高SOD、MDA的含量,說明PNS對受損內(nèi)皮細胞的凋亡基因表達水平起到調(diào)控作用,且PNS高劑量組效果明顯,呈劑量依賴性。PNS在一定濃度可有效地保護血管內(nèi)皮細胞免受H2O2的損害,對預(yù)防和治療動脈粥樣硬化有重要意義。

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