郭艷飛
(瓦房店市疾病預防控制中心,遼寧 大連 116300)
腹瀉是臨床公認的常見病和多發病,也是引起死亡的主要因素。現階段已證實,諾如病毒是引起嬰幼兒腹瀉的發病原因,主要以糞-口途徑進行感染,通過人與人之間傳播而引起更多人的感染,這不僅僅對食品衛生、人民健康造成較大威脅,也帶來較大的經濟損失[1]。諾如病毒是屬于杯狀病毒科,是導致非細菌性的急性胃腸炎重要病原體。據統計,世界范圍內約一半的暴發型胃腸炎由諾如病毒引起,其中GⅠ、GⅡ型是世界范圍內最常見的諾如病毒基因型,有全球流行的歷史[2]。在我國,感染諾如病毒也主要為GⅠ、GⅡ型。近幾年,由諾如病毒感染所致的胃腸炎疫情報道越來越多,成為重要的公共衛生難題。所以,快速、準確、特異的檢測方法對疾病的預防和控制具有重大意義。現階段還不能在體外進行諾如病毒培養,也缺少相關動物模型,其變異類型較多,檢測比較困難,也不容易進行鑒別,傳統的免疫學和血清學檢測方法受到較大限制[3]。分子生物學技術的推廣應用,給諾如病毒的檢測帶來較大福音。PCR技術是臨床上檢測基因的重要方式,也具有較大的優勢[4]。因此,本研究旨在比較常規RT-PCR與熒光定量RT-PCR檢測GⅠ、GⅡ型諾如病毒的效果,報道如下。
1.1 一般資料 選取2019年7月至2020年7月我院210例腹瀉患者糞便為研究對象,男性110例,女性100例,年齡3個月~13歲,平均年齡為(2.50±0.40)歲。
1.2 方法
1.2.1 標本采集 收集入選者新鮮糞便,應用PBS制備成10%糞便混懸液,將其保持于-70 ℃低溫環境中待測。
1.2.2 引物與探針 引物和探針序列見表1。
1.2.3 病毒RNA提取盒cDNA合成 采用TIANamp Virus RNA Kit來提取病毒RNA,嚴格根據試劑盒說明進行操作,然后應用PrimeScriptTMRT-Reagent Kit對提取的病毒RNA進行逆轉錄,操作過程同樣嚴格按照試劑盒說明進行。
1.2.4 常規RT-PCR方法 應用正交設計優化最佳的PCR反應,選取最佳的退火溫度。優化以后的PCR體系為25 μL,組分主要有:2.5 μL10×PCR Buffer,0.5 U Taq酶,上下游的引物各自為1.25 μL,3.0 μLdNTP,3.0 μL cDNA,應用滅菌注射用水將其補足至25 μL。94 ℃預變性3 min,94 ℃條件變性30 s,54 ℃條件退火30 s,72 ℃條件延伸30 s,總共進行40循環,72 ℃條件最終延伸10 min。應用分光光度計來定量陽性GⅠ、GⅡ型諾如病毒RNA,應用建立RT-PCR檢測100~105copies/μL的病毒,分析病毒的最低檢測下限,同時對札幌病毒、星狀病毒、輪狀病毒等進行檢測,檢驗其特異性。
1.2.5 熒光定量RT-PCR方法 應用矩陣法來優選最優的熒光定量PCR體系。優化以后的PCR體系為20 μL,組分有:10 μL2×Premix Ex Taq,0.4 μL 50×R0x Reference Dye Ⅱ,上下游的引物各1.6 μL,其探針為0.8 μL,模板2.0 μL cDNA,應用滅菌注射用水將其補足至20 μL,反應的條件為:50 ℃條件2 min,95 ℃條件預變性30 s,95 ℃條件變性5 s,60 ℃條件退火34 s,總共進行40循環,在60 ℃條件下進行熒光信號收集。

表1 常規RT-PCR與熒光定量RT-PCR引物和探針
1.2.6 病毒標準曲線制作 用來制作標準曲線的標準品,是含GⅠ、GⅡ型諾如病毒的擴增片段,紫光分光光度計來測定其濃度,并依據質粒的分子量換算為拷貝數。將質粒倍比8個梯度,為101~108copies/μL,每個梯度均應用熒光PCR進行檢測,結束反應以后,通過收集的熒光信號值來繪制相應標準曲線。
1.2.7 臨床樣品檢測 應用建立的兩種PCR方法對采集的臨床樣品檢測,并且比較其檢測結果,檢測出陽性結果進行測序來驗證諾如病毒檢測的準確性。
2.1 兩種檢測方法特異性 這兩種檢測方法特異性均較強,與輪狀病毒、札幌病毒、星狀病毒之間無交叉反應,相同體系GⅠ、GⅡ型諾如病毒之間無干擾。
2.2 兩種檢測方法下限比較 常規RT-PCR的最低檢測下限是103copies/μL,熒光定量RT-PCR的最低檢測下限是102copies/μL。
2.3 兩種檢測方法檢測率和符合率比較 常規RT-PCR的檢測率為5.71%(12/210),符合率為66.67%(12/18),熒光定量RT-PCR的檢測率為8.57%(18/210),符合率為100.00%(18/18);對18例陽性樣本進行測序分析,均證實為諾如病毒。
病毒性腹瀉是非細菌性常見的常見病,腹瀉患者排泄物中含有大量致病病毒,容易引起腹瀉的大流行,嚴重威脅公眾的健康[5]。諾如病毒是引起病毒性腹瀉的常見病原體,該病原體主要經口傳播,也可以通過接觸傳播,具有較強的侵染力,其感染的劑量甚至可低至10~100個病毒粒子,傳播比較迅速,較容易導致暴發[6]。因此其檢測成為公共衛生檢測的重點之一。現階段,檢測諾如病毒的主要方法為電鏡法、免疫法以及分子生物法等,其中電鏡法為最早檢測方法,但是其靈敏度較低,樣品的處理過程比較復雜,要求具有較高的技術,不利于推廣應用[7];免疫法多采用酶聯免疫吸附,檢測比較迅速,操作也相對簡單,但是其假陽性率比較高,檢出率也相對較低,也不是最佳的篩選方法;RT-PCR是分子生物學方法,該方法具有監測準確、迅速、靈敏度和特異性均較高的優勢,被首推為檢測的生物學方法。諾如病毒較容易出現變異,存在的類型也較多,GⅠ、GⅡ型是較常見的可以引起人類感染的類型,這兩種類型也存在14和17種基因亞型,因此對檢測提出較高要求,而引物設計也成為RT-PCR檢測的關鍵技術。
常規RT-PCR檢測方法每個反應只能擴增1個模板,并且需將擴增產物進行電泳分析,所以較容易產生PCR氣溶膠污染,導致結果出現假陽性[8]。近年來,熒光定量RT-PCR技術逐漸發展,該方法利用熒光信號探針和實時定量檢測相結合,是一種比較成熟的新技術,利用制備好的各個梯度陽性質量來控制樣品的擴增Ct值,結合起始模板對數繪制曲線,對反應體系中起始模板進行定量[9]。該方法可以有效避免常規RT-PCR方法中電泳帶來的污染。國內外研究發現,針對諾如病毒的引物和探針序列,以GI-SKF/GI-SKR、GII-SKF/GII-SKR為最佳引物,針對諾病毒的ORF1-ORF2連接處存在高度保守區基因設計引物(COGIF、COGIR、RINGI-TP、COG2F、COG2R、RINGII-TP),尤其對陽性的檢測樣品,該引物檢測的高達99%的靈敏度,是現階段靈敏度比較高的引物[7]。本研究通過觀察常規RT-PCR和熒光定量RT-PCR法檢測諾如病毒,研究發現建立的兩種方法檢測諾如病毒均具有較高的特異性。常規RT-PCR的最低檢測下限是103copies/μL,熒光定量RT-PCR的最低檢測下限是102copies/μL。熒光定量RT-PCR的最低檢測下限為常規RT-PCR的10倍,提示熒光定量RT-PCR檢測效果更佳,即使較低的病毒載量,也能有效檢測出來。通過比較兩種檢測方法檢測率和符合率發現,常規RT-PCR的檢測率為5.71%(12/210),符合率為66.67%(12/18),熒光定量RT-PCR的檢測率為8.57%(18/210),符合率為100.00%(18/18),充分說明熒光定量RT-PCR具有較高的符合率,可以較好的篩查出諾如病毒,有效避免遺漏,通過對檢出的陽性結果進行測序分析,結果發現均為諾如病毒。提示這兩種檢測方式均可以準確篩查出諾如病毒,未出現假陽性情況。但是,熒光定量RT-PCR具有更高的檢測效率,敏感性更高,若進行諾如病毒檢測,建議選取熒光定量RT-PCR。
綜上所述,常規RT-PCR和熒光定量RT-PCR檢測諾如病毒均具有較好的特異性,熒光定量RT-PCR不僅能定性檢測諾如病毒,還能進行定量分析,對病毒的致病劑量和風險進行評估,且檢測的符合率也較高,為避免遺漏,建議選取熒光定量RT-PCR。