馮曉曉,許燎原,周小軍,鄭永利
(1.浙江大學(xué) 農(nóng)業(yè)試驗(yàn)站,浙江 杭州 310058;2.寧波市農(nóng)業(yè)技術(shù)推廣總站,浙江 寧波 315012;3.金華市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院,浙江 金華 321017;4.浙江省農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全中心,浙江 杭州 310003)
甘薯(IpomoeabatatasL.)是旋花科甘薯屬的一個(gè)栽培種,又稱為番薯、白薯、紅薯、地瓜、山芋等,是我國的主要旱糧作物之一,也是重要的鮮食作物。隨著城鄉(xiāng)居民生活水平的提高,為適應(yīng)多元的消費(fèi)需求,高淀粉、高花青素、高胡蘿卜素、高蛋白等加工型和鮮食型甘薯品種廣泛種植。目前浙江省種植較廣的甘薯品種,如有加工粉絲性能佳的中晚熟品種浙薯13、早熟迷你型鮮食品種心香、加工和鮮食兼用型的甘薯品種浙薯77、高產(chǎn)品種浙薯38等。甘薯基腐病在1913年被Harter首次報(bào)道[1],2016年蓋云鵬等[2]報(bào)道了浙江省三門縣的甘薯基腐病,2018年余繼華報(bào)道了浙江省臺州市的甘薯基腐病[3]。2018—2019年,作者在浙江省寧海縣的病害調(diào)查中發(fā)現(xiàn),收獲前期甘薯上有大量莖基部干腐褐化的病株,對甘薯產(chǎn)量造成毀滅性的影響。現(xiàn)將甘薯基腐病病原菌分離鑒定及對甘薯品種的致病性測定結(jié)果總結(jié)如下。
2017年8月1日在浙江省寧海縣進(jìn)行甘薯基腐樣品采集,樣品具有典型的莖基部黑褐色干腐、褐化干枯的發(fā)病植株。用鏟子從土壤中挖取帶有10 cm土壤和根系的病株,置于樣品袋中,于4 ℃保存。
參考方中達(dá)《植病研究方法》[4]。挑取發(fā)病部位的黑色子實(shí)體(分生孢子器)置于無菌水中,將分生孢子洗下配成分生孢子懸液,將分生孢子懸液在含有50 mg·L-1氯霉素的PDA培養(yǎng)基平板劃線,于25 ℃下培養(yǎng),挑取單菌落轉(zhuǎn)移至新的PDA培養(yǎng)基上進(jìn)行純化,獲得純培養(yǎng)菌株。
挑取病組織上的子實(shí)體,在顯微鏡下觀察分生孢子的形態(tài);將純培養(yǎng)菌株ZJUP0002在PDA培養(yǎng)基上25 ℃恒溫培養(yǎng)7~30 d,觀察菌落形態(tài)。
1.4.1 基因組DNA提取
挖取PDA培養(yǎng)基上生長旺盛的純培養(yǎng)菌株ZJUP0002菌塊,置于2 mL離心管中,加入適量石英砂和DNA提取緩沖液,組織研磨儀60 Hz破碎120 s,9 000 r·min-1離心10 min,上清轉(zhuǎn)移至新的離心管,加入300 μL異丙醇沉淀DNA,上下顛倒數(shù)次,12 000 r·min-1離心10 min,去上清,加入0.8 mL 70%乙醇洗滌,12 000 r·min-1離心2 min,去上清,37 ℃溫育15 min,加入50 μL dd H2O,溶解基因組DNA。
1.4.2 PCR擴(kuò)增和測序
用引物ITS1和ITS4擴(kuò)增ITS序列,PCR體系25 μL。PCR擴(kuò)增條件為95 ℃預(yù)變性2 min,95 ℃ 15 s、55 ℃ 30 s、72 ℃ 30 s,共35個(gè)循環(huán),最后72 ℃延伸10 min。PCR產(chǎn)物送至杭州擎科梓熙生物技術(shù)有限公司測序。
1.4.3 序列比對及分子生物學(xué)分析
將測序結(jié)果在NCBI GenBank 數(shù)據(jù)庫進(jìn)行序列同源性比對,從數(shù)據(jù)庫下載相似度高的相應(yīng)序列,采用MEGA 6.0進(jìn)行多序列聯(lián)配,并采用IQTREE以最大似然法(maximum likelihood, ML)進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育分析,利用自展法(bootstrap)檢驗(yàn)各分支的支持率。
純培養(yǎng)菌株ZJUP0002在PDB培養(yǎng)基中培養(yǎng)5 d,過濾菌絲體,并用無菌水將菌絲體沖洗數(shù)次,重新懸浮在無菌水中,并將菌絲體打碎制備菌絲懸浮液。選取心香、浙薯13和浙薯77等3個(gè)甘薯品種的盆栽苗,將菌絲懸浮液接種至已培養(yǎng)30 d的健康甘薯莖基部土壤中,每盆接種10 mL,以清水為對照,觀察和記錄不同甘薯品種發(fā)病情況。發(fā)病后的植株再次用上述方法分離病原菌并進(jìn)行菌株鑒定。
挑取發(fā)病部位的病原菌分生孢子器進(jìn)行鏡檢。由圖1可見,分生孢子單細(xì)胞,無色透明,橢圓形,兩端各有一個(gè)油球,大小6~9 μm×3~4 μm。純培養(yǎng)菌株ZJUP0002在PDA培養(yǎng)基上菌落呈不規(guī)則形,初白色,后變成灰白色至淺褐色,菌絲稀疏平鋪在培養(yǎng)基上,在PDA培養(yǎng)基上培養(yǎng)30 d未見分生孢子器產(chǎn)生。在掃描電子顯微鏡下可見,菌絲束狀、有隔、多纏繞。

a為PDA培養(yǎng)30 d的菌落形態(tài);b為病組織上的分生孢子;c為掃描電鏡下的菌絲。
甘薯基腐病在田間自然發(fā)病如圖2所示。以扦插法培育心香、浙薯13和浙薯77盆栽苗,在盆栽基質(zhì)接種病原菌菌絲懸浮液,每盆接種10 mL,以清水為對照,觀察和記錄不同甘薯品種發(fā)病情況。約14 d在莖基部出現(xiàn)褐化病斑,甘薯塊根變褐色,如圖2中c所示,上部分為發(fā)病的3個(gè)品種的塊根,下部分為對照的3個(gè)品種的塊根。發(fā)病植株生長緩慢并枯死(圖2中 d),從左到右為心香、浙薯13和浙薯77,尤其是心香和浙薯13,基本全株死亡,相對而言,浙薯77抗性較好;而對照組依然生長正常。發(fā)病后的植株再次用上述方法分離病原菌,分離到的病原菌標(biāo)記為ZJUP0133,并進(jìn)行菌株鑒定。

a為田間自然發(fā)病,b為接種ZJUP0002的莖部組織出現(xiàn)褐色病斑,c為心香、浙薯13和浙薯77接種和對照的甘薯塊根對比圖,d為心香、浙薯13和浙薯77接種和對照的甘薯植株對比圖。
對分離的菌株ZJUP0002和回接后分離的菌株ZJUP0133進(jìn)行ITS rDNA序列測定,序列用BLAST進(jìn)行同源性比對。基于ITS rDNA,利用MEGA 6.0對菌株ZJUP0002、ZJUP0133及GenBank已知的甘薯干腐病病原菌Diaporthebatatas代表性菌株進(jìn)行序列比對,以DiaporthellacorylinaCBS 121124為外群,IQTREE構(gòu)建ML系統(tǒng)發(fā)育樹(圖3),從構(gòu)建的ML系統(tǒng)發(fā)育樹可以發(fā)現(xiàn),病原菌ZJUP0002和回接后分離菌株ZJUP0133與Diaporthedestruens代表性菌株位于同一分支上,自舉支持率92%。因此,將ZJUP0002鑒定為甘薯基腐病菌Diaporthedestruens。

圖3 基于ITS的甘薯基腐病病原菌Diaporthe destruens ML系統(tǒng)發(fā)育樹
甘薯基腐病是制約甘薯產(chǎn)業(yè)發(fā)展的因素之一,該病易發(fā)生在甘薯收獲前夕,極大打擊了種植戶的信心,嚴(yán)重影響農(nóng)民的經(jīng)濟(jì)收入。在生產(chǎn)上,甘薯基腐病在品種之間存在抗病性差異。林飛榮等[5]于2017年對浙江省臺州市黃巖區(qū)上鄭鄉(xiāng)的30個(gè)甘薯品種發(fā)病情況進(jìn)行調(diào)查發(fā)現(xiàn),基腐病發(fā)病嚴(yán)重的品種病株率達(dá)90%,浙薯38等個(gè)別品種未發(fā)現(xiàn)病株,表現(xiàn)出較強(qiáng)的抗病性,可見品種之間抗病性差異極為顯著。作者在浙江省金華市調(diào)查發(fā)現(xiàn),全市甘薯種植面積約5 333 hm2,甘薯基腐病從2013年開始陸續(xù)發(fā)生,至2020年發(fā)病面積約1 333 hm2,尤以婺城區(qū)塔石鄉(xiāng)發(fā)病較重,70%以上田塊有發(fā)病,減產(chǎn)30%~40%,嚴(yán)重地塊甚至絕收。大部分品種感病,浙薯38和浙薯255發(fā)病較輕。
本文通過分離甘薯基腐病病原菌,將病原菌接種至浙江省3個(gè)種植較廣的甘薯品種浙薯77、浙薯13和心香,3個(gè)甘薯品種均發(fā)生基腐癥狀。其中,浙薯13和心香發(fā)病較重,浙薯77具有較好的抗性,由此證明,不同品種甘薯對基腐病的抗性具有差異。因此,有必要對浙江省現(xiàn)有栽培的甘薯品種以及今后在品種選育中進(jìn)行甘薯基腐病的抗性鑒定,明確不同甘薯品種對基腐病的抗性。
甘薯基腐病的來源是種苗,可借助傷口侵染莖和塊根。在發(fā)病田塊,農(nóng)民常因甘薯無收成而任其在田間腐爛,病原菌在病殘?bào)w上飛快繁殖,在來年的種植中引發(fā)更重的病害。因此,在田間管理上,清園和避免連作顯得尤為重要。另外,林飛榮等[5]提出,采用無病種苗、土壤消毒和甘薯生長期噴藥預(yù)防對控制病害有顯著效果。噴藥與推遲扦插可延遲發(fā)病時(shí)間,選擇相對抗性較好的品種種植,是避免大面積發(fā)生甘薯基腐病的有效方法之一。