程 紅, 王 玲
(華中科技大學(xué)分析測試中心,武漢 430074)
Ⅰ型膠原蛋白是皮膚、肌腱、骨骼和其他結(jié)締組織的主要結(jié)構(gòu)成分,在生物醫(yī)學(xué)中得到了廣泛的應(yīng)用。近年來,膠原蛋白已被用于止血海綿、真皮等效物、軟組織增強(qiáng)注射材料、細(xì)胞制品基質(zhì)和藥物輸送載體[1]。此外,膠原蛋白涉及許多病理學(xué),其中成骨不全癥、先天性結(jié)締組織發(fā)育不全綜合征和纖維化是最嚴(yán)重的。在所有這些疾病中,膠原蛋白構(gòu)象的變化從展開到最終形成和纖顫是主要問題[2]。通過實(shí)驗(yàn)測定蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu),從而預(yù)測蛋白質(zhì)構(gòu)象可為理解其功能提供重要線索[3]。
研究蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)的常用實(shí)驗(yàn)方法是X-射線衍射和核磁共振波譜。這些技術(shù)的數(shù)據(jù)需要通過計算轉(zhuǎn)換成原子結(jié)構(gòu),但如果蛋白質(zhì)很難分離或結(jié)晶,則實(shí)驗(yàn)常常需要在電子結(jié)構(gòu)預(yù)測中得到補(bǔ)充[4]。通常α-螺旋、β-折疊和非周期構(gòu)象中的肽鍵部分可以通過高靈敏度的光學(xué)測量來估計,例如圓二色(CD)、紅外(IR)和拉曼(Raman)光譜[5-7]。使用光譜測量來分析二級結(jié)構(gòu),是評估蛋白質(zhì)聚集性和穩(wěn)定性的一個有價值的工具。對于分子生物學(xué)中的許多重要問題,如蛋白質(zhì)折疊、蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用和蛋白質(zhì)-核酸相互作用,二級結(jié)構(gòu)的定量測量提供了生物功能結(jié)構(gòu)特征的重要線索[3]。光譜技術(shù)的優(yōu)勢是測試非常迅速,所需材料很少,而且可以很方便地考察溫度變化帶來的影響。CD是一種古老的光譜技術(shù),在球形蛋白中研究的比較透徹,但在纖維狀的膠原蛋白中二級結(jié)構(gòu)呈現(xiàn)出一些特殊的特征,如PPII(P2)結(jié)構(gòu),還需要更全面地理解。IR和Raman同屬于分子振動光譜,兩者相比,后者不易受水峰干擾,可以更容易地檢測出,主要反映在脂質(zhì)、酰胺、脯氨酸和羥基脯氨酸區(qū)的任何構(gòu)象變化[5],因此更適合膠原蛋白的二級結(jié)構(gòu)研究[8]。本文采用CD和Raman兩種光譜技術(shù)分別對同一種Ⅰ型膠原蛋白的溶液態(tài)和固態(tài)進(jìn)行二級結(jié)構(gòu)分析,并觀察隨溫度變化,二級結(jié)構(gòu)發(fā)生的改變(即熱變性),旨在為膠原蛋白相關(guān)研究提供二級結(jié)構(gòu)分析的實(shí)驗(yàn)參考和技術(shù)支撐。
日本Jasco公司J-810型圓二色光譜儀(配有Julabo F12水浴變溫裝置);Horiba Jobin Yvon公司HR-800型激光共焦拉曼光譜儀(配有Linkam 600型冷熱臺)。所有試劑均為分析純;實(shí)驗(yàn)用水為超純水(電阻率為18 MΩ·cm)。
固態(tài)Ⅰ型膠原蛋白:由武漢某生物材料有限公司提供的膠原蛋白海綿,批號:YF19070001,使用前未做任何處理。
溶液態(tài)Ⅰ型膠原蛋白:準(zhǔn)確稱取一定量的固態(tài)膠原蛋白溶于0.01 mol/L乙酸水溶液,配置成濃度為0.1 mg/ml的溶液,于4℃冰箱中放置2 d,使肽段充分折疊。
2.1.1 分析原理
基于對CD光譜的經(jīng)驗(yàn)分析,有許多解卷積算法可用于測定蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)含量。這些方法都是利用已知晶體結(jié)構(gòu)的蛋白質(zhì)的CD譜數(shù)據(jù)集的信息,從CD譜中計算出感興趣的蛋白質(zhì)(查詢蛋白)的結(jié)構(gòu)。它們基于這樣的假設(shè):參考蛋白質(zhì)(reference proteins)的結(jié)構(gòu)在晶體狀態(tài)和溶液中相同,并且單個二級結(jié)構(gòu)對CD光譜的貢獻(xiàn)是相加的,如下式[9]:

式中:Cλ指蛋白質(zhì)的CD光譜,為波長的函數(shù);fi是給定類型的二級結(jié)構(gòu)的分?jǐn)?shù);Biλ是每種二級結(jié)構(gòu)類型(螺旋、折疊、轉(zhuǎn)角、無序等)在每個波長下的橢圓度;noise項(xiàng)中包括芳香族側(cè)鏈的貢獻(xiàn)。
隨著計算機(jī)技術(shù)的發(fā)展,有一些算法的軟件語言已經(jīng)變得晦澀難懂,現(xiàn)在仍然可以下載或在線使用的算法包括SELCON3和CDSSTR,它們是基于奇異值分解(Singular Value Decomposition,SVD)方法和變量選擇方法的算法,CONTINLL是使用脊回歸和變量選擇的修改版本,以及神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)。所有這些算法都對光譜的大小敏感,因此精確的二級結(jié)構(gòu)分析取決于有良好的校準(zhǔn)數(shù)據(jù)、光譜中的寬波長覆蓋,以及具有與查詢蛋白類似的蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)特征的參考數(shù)據(jù)集[9]。
2.1.2 儀器的校準(zhǔn)
單色儀的失調(diào)會使波長產(chǎn)生微小的偏移,表現(xiàn)為CD峰位的偏移,并對二級結(jié)構(gòu)分析產(chǎn)生重大影響。本文使用有證書的氧化鈥玻璃對波長進(jìn)行校準(zhǔn)。
此外,使用6 mg/mL的d-10-樟腦磺酸銨溶液對光譜強(qiáng)度進(jìn)行校準(zhǔn),保證圓二色光譜儀處于良好的工作狀態(tài)。
2.1.3 光譜的采集
CD測量是在相對稀釋的蛋白質(zhì)溶液(0.01~0.2 mg/mL)上進(jìn)行,樣品在感興趣波長范圍內(nèi)的最大吸光度不得超過2[3]。稀溶液的優(yōu)點(diǎn)是使樣品的濃度依賴性聚集最小化。本次實(shí)驗(yàn)溶液樣品濃度為0.1 mg/mL,使用同一個池長為0.1 cm的石英比色皿(Type:31/B/Q/1,Starna Scientific Ltd.Hainault,Essex IG6 3UT,United Kingdom)分別裝載背景溶液和樣品溶液進(jìn)行測試。
為了防止光譜變形,儀器參數(shù)的設(shè)置也有推薦的經(jīng)驗(yàn)選擇[9],掃描速度×響應(yīng)時間<帶寬<光譜特征寬度/10。如要解析特征寬度為10 nm的光譜,需要小于1 nm的帶寬;如果使用1 s響應(yīng)時間,則掃描速度不應(yīng)超過10 nm/min。
本文采用的測試參數(shù)為:掃描速度100 nm/min,響應(yīng)時間0.5 s,帶寬1 nm,累積次數(shù)3次。分別采集20、30、40、50、60、70℃下的樣品溶液CD光譜圖。得到的譜圖經(jīng)過扣除背景、平滑處理后見圖1。
2.1.4 二級結(jié)構(gòu)分析

圖1 不同溫度下膠原溶液的圓二色光譜圖
蛋白質(zhì)的二級結(jié)構(gòu)是由一組二面角(φ,ψ)決定的,它定義了肽主鏈的空間方向,以及特殊氫鍵的存在。當(dāng)主鏈二面角有重復(fù)值時,肽形成規(guī)則的二級結(jié)構(gòu)[3]。膠原蛋白結(jié)構(gòu)為3條平行的多肽鏈,以左旋、聚脯氨酸II型(P2)螺旋構(gòu)象相互纏繞,1個殘基交錯形成右手三螺旋[10]。三螺旋結(jié)構(gòu)中緊緊包裹著P2螺旋的要求每隔2個殘基就出現(xiàn)1個Gly,這導(dǎo)致了1個重復(fù)的XaaYaaGly序列,其中膠原的Xaa和Yaa位置的氨基酸通常分別為(2S)-脯氨酸(Pro,28%)和(2S,4R)-4-羥脯氨酸(Hyp,38%)[10]。因此,膠原蛋白的二級結(jié)構(gòu)中除了局部相鄰氨基酸發(fā)生盤曲而形成螺旋、折疊、轉(zhuǎn)角及無規(guī)則卷曲等二級結(jié)構(gòu)以外,還有一個特殊的PPII(P2)螺旋結(jié)構(gòu)。計算時會有一些特殊的要求,比如,按照文獻(xiàn)[11]中介紹的在線計算二級結(jié)構(gòu)的網(wǎng)站,本文選用DichroWeb(http://dichroweb.cryst.bbk.ac.uk/html/home.shtml)網(wǎng)站在線計算二級結(jié)構(gòu),將采集到的光譜數(shù)據(jù)輸入網(wǎng)址進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,網(wǎng)站要求reference的設(shè)置只能是set5,并且數(shù)據(jù)的掃描范圍為178~260 nm。選用CONTIN解卷積算法,按照要求輸入后計算結(jié)果見表1。

表1 不同溫度下膠原溶液的二級結(jié)構(gòu)計算結(jié)果
從表1的數(shù)據(jù)結(jié)合圖1可以看出,在溫度低于40℃時,P2結(jié)構(gòu)隨溫度升高而降低,說明溫度使膠原蛋白的三螺旋發(fā)生解旋,P2結(jié)構(gòu)被逐步破壞;而當(dāng)溫度大于40℃后,α-螺旋結(jié)構(gòu)隨溫度升高逐漸增加,這種構(gòu)象的轉(zhuǎn)變引起膠原功能的改變,造成膠原的變性[13]。
2.2.1 分析原理
拉曼光譜定義為入射光和散射光頻率之間的差異,該頻率差與鍵的類型及其振動類型有關(guān)。特征原子群會產(chǎn)生頻率接近相同的振動帶,而與它們所在的分子無關(guān)。在該范圍內(nèi)的精確波數(shù)取決于分子間和分子內(nèi)的影響,包括肽鍵角度和氫鍵模式。拉曼光譜中酰胺Ⅰ帶和Ⅲ帶通常被用來歸屬蛋白的二級結(jié)構(gòu),參考具有α-螺旋或β-折疊結(jié)構(gòu)的同型多肽和蛋白質(zhì)的光譜、理論計算(正態(tài)模式分析)、合成肽和具有已知三維結(jié)構(gòu)的蛋白質(zhì)來確定特定頻率與二級結(jié)構(gòu)[3]。通過酰胺帶相關(guān)拉曼光譜指標(biāo)的變化,可以觀察到從膠原的有序結(jié)構(gòu)(即三螺旋結(jié)構(gòu))到由于內(nèi)部(如老化和疾病)或外部(如熱變性和機(jī)械變性)影響而導(dǎo)致向較不有序的結(jié)構(gòu)形式的轉(zhuǎn)變[7]。
2.2.2 儀器校準(zhǔn)
由于每天的溫度和濕度會有差別,導(dǎo)致峰位會有些差異,因此最好能在使用儀器前對峰位進(jìn)行校正。峰位校正以單晶硅的一階峰(520.7 cm-1)作為參考峰位進(jìn)行。校正前,確保用于校正的激光器已打開,并且最少預(yù)熱10 min,使激光器達(dá)到穩(wěn)定狀態(tài)。
2.2.3 光譜采集
在拉曼光譜實(shí)驗(yàn)中,為了獲得最佳的拉曼信號,需要考慮每種激光波長的優(yōu)缺點(diǎn)。散射的光子數(shù)與激光波長間接相關(guān),拉曼線的強(qiáng)度與激光頻率的4次方成正比[14]:

式中:l為拉曼線的強(qiáng)度;ν為激光源的頻率。因此,當(dāng)比較532 nm激光器和785 nm激光器時,

式中:c為光速;λ為激光源的波長。
可以看出,非共振條件下,532 nm激光產(chǎn)生的拉曼譜線強(qiáng)度比785 nm激光器產(chǎn)生的拉曼線強(qiáng)度強(qiáng)4.7倍。但是在樣品有較強(qiáng)熒光干擾時,可以使用長波長的激光器如785 nm激光器和1 064 nm激光器來減少干擾。
本文采用生物樣本中常用的Nd-YAG:532 nm激光源,光柵600 gr/mm,×50LWD物鏡,200μm針孔,60 s曝光時間,將樣品置于Linkam變溫臺的比色皿中采集不同溫度下的光譜數(shù)據(jù),得到的譜圖見圖2。
2.2.4 二級結(jié)構(gòu)分析
拉曼光譜中,酰胺I和酰胺III帶的頻率可以檢測二級結(jié)構(gòu)的差異,該區(qū)域與碳?xì)渖炜s振動區(qū)(即脂質(zhì)區(qū),lipids)、脯氨酸和羥脯氨酸區(qū)一起是膠原結(jié)構(gòu)構(gòu)象變化的3個主要區(qū)域[5],如圖3所示(圖示為溫度20℃時固態(tài)膠原蛋白的拉曼光譜圖),正是這些二級結(jié)構(gòu)為膠原蛋白提供穩(wěn)定性和纖維狀結(jié)構(gòu)。酰胺I帶從1 700~1 600 cm-1,是肽鏈振動,主要來源于C=O伸縮振動(~80%)和C—N伸縮振動和N—H彎曲振動(~20%)。它產(chǎn)生一個非常強(qiáng)烈的信號,并且對蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)敏感;酰胺III帶(~1 310~1 175 cm-1)主要與C—N伸縮振動和N—H彎曲振動(各約30%)、C—C伸縮(~20%)和C—H彎曲(~10%)有關(guān)[6]。盡管它的強(qiáng)度很低,大約比酰胺Ⅰ降低80%,但它對蛋白質(zhì)的二級結(jié)構(gòu)也非常敏感,而且不受吸水率的影響[6]。根據(jù)現(xiàn)有的文獻(xiàn),將指紋區(qū)峰值進(jìn)行歸屬,與二級結(jié)構(gòu)的對應(yīng)關(guān)系見表2。

圖2 固態(tài)膠原蛋白的變溫拉曼光譜圖

圖3 反映構(gòu)象變化的主峰所在3個主要光譜區(qū)域

表2 固態(tài)膠原蛋白的拉曼光譜指紋區(qū)的主要譜峰歸屬及其與二級結(jié)構(gòu)的對應(yīng)關(guān)系
結(jié)合圖2和表2可以看出,蛋白質(zhì)主鏈的C—C伸縮振動峰936 cm-1譜峰的強(qiáng)度隨著溫度升高而降低,至200℃時完全消失,這可能是因?yàn)殡S著溫度的升高,分子和原子之間的距離也會增加,從而削弱氫鍵和范德華力,導(dǎo)致三螺旋結(jié)構(gòu)的破壞[13]。根據(jù)反應(yīng)二級結(jié)構(gòu)中有序和無序結(jié)構(gòu)對應(yīng)譜峰的比例關(guān)系,可以判斷膠原蛋白的變性與否,比如I1 670/1 640,I1 245/1 270,I1 245/1 454,其中I1 245/1 454逐漸減小,I1 670/1 640,I1 245/1 270逐漸升高,這些峰值強(qiáng)度比可以作為新的光譜生物標(biāo)志物來評估膠原蛋白的質(zhì)量和完整性[16-17]。變性過程中這些比值的變化可能反映出膠原二級結(jié)構(gòu)的變化,特別是從有序結(jié)構(gòu)到低有序結(jié)構(gòu)的轉(zhuǎn)變[17]。根據(jù)圖2的數(shù)據(jù),以最高峰的峰高為基峰進(jìn)行歸一化處理,得到這些光譜生物標(biāo)志物隨溫度變化的值,列于表3。

表3 本次實(shí)驗(yàn)中拉曼光譜生物標(biāo)志物的強(qiáng)度比
從表3可以看出,固態(tài)膠原蛋白的三螺旋結(jié)構(gòu)在200℃以內(nèi)保持穩(wěn)定,超過200℃后發(fā)生變性。肉眼可見白色的膠原蛋白海綿在200℃變性溫度下開始發(fā)黃。該結(jié)果與差熱分析(DSC,測試條件:在氮?dú)鈿夥障拢?℃/min的升溫速率從30℃升至250℃,所得譜圖見圖4,在80℃和220℃左右有吸收峰,第1個峰面積和寬度較大,是膠原蛋白海綿失水放熱峰;第2個峰面積較小,是膠原蛋白海綿在熱收縮過程中結(jié)構(gòu)破壞所對應(yīng)的晶區(qū)熔融峰)對應(yīng)發(fā)生熱變性的溫度范圍的結(jié)果基本吻合,說明使用拉曼光譜生物標(biāo)志物來判斷變性是科學(xué)可行的。

圖4 固體膠原蛋白的DSC圖
CD是一種廣泛應(yīng)用的分析蛋白二級結(jié)構(gòu)的光譜技術(shù),該技術(shù)可用于區(qū)分無序和有序結(jié)構(gòu)。在球形蛋白,如牛血清白蛋白、溶菌酶和α-糜蛋白酶等蛋白中研究的比較透徹,而在纖維狀的膠原蛋白中二級結(jié)構(gòu)呈現(xiàn)出一些特殊的特征,還需要更全面的理解。Raman光譜分析膠原蛋白可以提供很多信息,并且隨著理解的加深,它可以識別由于疾病或老化過程而導(dǎo)致膠原蛋白變化的化學(xué)途徑,人們將了解到膠原是如何隨著年齡、疾病和創(chuàng)傷而改變的。目前,拉曼光譜的潛力還沒有被完全挖掘,雖然數(shù)據(jù)采集速度很快,但數(shù)據(jù)分析需要相當(dāng)?shù)募寄芎蜁r間。因此,基于這兩種光譜技術(shù),本文對溶液態(tài)和固態(tài)的Ⅰ型膠原蛋白的二級結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析,詳細(xì)敘述了實(shí)驗(yàn)原理及實(shí)驗(yàn)過程,考察溫度對于二級結(jié)構(gòu)的影響,該工作可作為膠原蛋白相關(guān)研究的實(shí)驗(yàn)引導(dǎo)和示范。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,Ⅰ型膠原蛋白溶液態(tài)的變性溫度約為40℃,固態(tài)(又稱膠原蛋白海綿)的變性溫度約為200℃,固態(tài)比液態(tài)穩(wěn)定,尤其是在室溫范圍內(nèi)不會變性,這有利于其在臨床上的推廣應(yīng)用。