樊雨梅 汝文文 張建嶺 解曉 廖峰



摘要 采用蛋白質傳統分離技術結合基質輔助激光解吸電離飛行時間質譜(MALDI-TOF/TOF/MS)揭示驢胎盤蛋白質的性質和組成,結果表明,驢胎盤蛋白含量為(15.62±1.04)%,等電點均勻分布酸性和堿性區域,分子量主要集中在7~19、36~78 kD 2個區域。通過與馬科蛋白圖庫進行對比,檢索出3 865種可識別的蛋白,進一步對驢胎盤蛋白進行生物信息學分析,發現驢胎盤蛋白主要參與了內質網蛋白質加工、ECM-受體相互作用、內質網應激反應等生物學過程,為驢胎盤藥理活性成分的篩選提供了理論基礎。
關鍵詞 驢胎盤;基本特性;蛋白質組分;生物信息學
中圖分類號 S-822文獻標識碼 A文章編號 0517-6611(2021)11-0168-05
doi:10.3969/j.issn.0517-6611.2021.11.046
開放科學(資源服務)標識碼(OSID):
Analysis of the Composition in Protein from Donkey Placenta
FAN Yu-mei1,2, RU Wen-wen1,2, ZHANG Jian-ling1,2 et al
(1. National Engineering Research Center for Gelatin-based Traditional Chinese Medicine, Donge,Shandong 252201;2. Dong-E-E-Jiao Co., Ltd., Donge, Shandong 252201)
Abstract SDS-PAGE gel electrophoresis and MALDI-TOF/TOF/MS were used to reveal the properties and composition of protein in donkey placenta.The results showed that the protein content of the donkey placenta was (15.62±1.04)%, the isoelectric point was evenly distributed in the acidic and basic regions, and the molecular weight was mainly concentrated in the two regions of 7-19 and 36-78 kD. By comparing with the equine protein library, 3 865 identifiable proteins were retrieved, and further analysis of donkey placental proteins was performed. It was found that donkey placental proteins were mainly involved in biological processes such as protein processing in endoplasmic reticulum, ECM-receptor interaction and response to endoplasmic reticulum stress. It provided a theoretical basis for the screening of donkey placenta pharmacologically active ingredients.
Key words Donkey placenta;Basic properties;Protein fraction;Bioinformatics
動物來源藥材是我國傳統藥物的重要組成部分,胎盤作為傳統中藥,經過長期的實踐經驗和現代科學研究證明,胎盤及其提取物具有抗氧化[1]、抗疲勞[2-3]、延緩衰老[4]、傷口愈合[5]、調節皮膚炎癥[6]、調節免疫[7]和改善肝損傷[8-10]等作用。胎盤的生物活性與其所含有的化學成分密切相關[11-13]。目前研究表明,胎盤富含多種生物成分,包括免疫球蛋白、膠原蛋白、激素、生長因子、細胞因子、氨基酸、酶及微量元素等[12,14]。Togashi等[12,15]研究發現,人胎盤提取物的抗氧化活性與其所含的尿嘧啶、酪氨酸、苯丙氨酸有關。也有研究表明,胎盤蛋白及多肽是胎盤發揮抗氧化、傷口愈合、抗衰老、抗疲勞、免疫調節等作用的物質基礎[12-14,16-17]。
近年來,關于胎盤的研究國內外學者主要集中在胎盤成分的檢測、動物胎盤功效成分的制備及其功效研究,但蛋白類成分的組成、鑒定研究較少。因此,筆者以驢胎盤為研究對象,采用十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)、二維電泳、圓二色譜和基質輔助激光解吸電離飛行時間質譜(matrix assisted laser desorption ionization-time of fight-mass spectrometry,MALDI-TOF/TOF/MS)等技術手段揭示驢胎盤蛋白質的分子量分布、等電點、二級結構與組成,為驢胎盤的深層次開發提供依據。
1 材料與方法
1.1 材料與試劑
驢胎盤,山東天龍驢產業研究院;乙腈、甲酸、甲醇,均為質譜純, 百靈威科技有限公司;牛血清白蛋白、尿素、二硫蘇糖醇,北京索萊寶科技有限公司;Tris-base,阿拉丁;PMSF,碧云天;Bio-Lyte 3-10 buffer、Ready Strip IPG Strips、Modified Trypsin(Sequencing Grade,Promega)、SDS-PAGE電泳Maker、CGE電泳Maker,美國Bio-Rad公司。
1.2 儀器與設備
全自動凱氏定氮儀(UDK159),意大利VELP公司;SDS-PAGE電泳儀(Mini Protean 3 Cell)、CGE電泳儀(P/ACETM MDQ)、2-DE電泳儀(Protean IEF cell),美國Bio-Rad公司;圓二色譜儀(MOS 450),法國Bio logic公司;MALDI-TOF/TOF-MS(Orbitrap Fusion Lumos Tribrid)、多功能酶標儀(MULTISKAN GO),美國Thermos公司。
1.3 方法
1.3.1 樣品前處理。
取新鮮驢胎盤樣品,用生理鹽水沖洗干凈,并用手術器械去除筋膜和臍帶。生理鹽水浸泡并緩慢攪拌5 min,重復數次,直至去除淤血。瀝干水分后用液氮速凍,并打成粉末。
準確稱取2份5 g胎盤粉末,對于分析用樣品加入50 mL 含1 mmol/L PMSF 的Western和IP 細胞裂解液,對于純化蛋白的樣品加入50 mL pH 8.0 含100 mmol/L氯化鈉的50 mmol/L Tris-HCl 緩沖液,使用高速勻漿機在低溫下勻漿,勻漿程序為勻漿30 s,間隔15 s。勻漿后離心去除沉淀,上清液即為驢胎盤粗提液。
1.3.2 蛋白質特性的測定。
1.3.2.1 蛋白質含量測定。
采用GB 5009.5—2016中凱氏定氮法[18] 測定驢胎盤中蛋白質的含量。
1.3.2.2 SDS-PAGE電泳測定蛋白質分子量。
方法參考文獻[19]。驢胎盤粗提液按體積1∶1加入含二硫蘇糖醇的2 × Loading Buffer緩沖液,沸水浴5 min后取出。上樣量為10 μL,濃縮膠質量分數為5%,分離膠12%。將凝膠掃描電子圖譜保存,電泳所用的marker分子量在7~207 kD。
1.3.2.3 毛細管凝膠電泳(CGE)分析蛋白質相對豐度。
根據田蘭等[20]的方法稍作修改。毛細管規格為內徑100 μm,總長31 cm,有效長度20 cm,柱體溫度40 ℃,電動進樣,進樣電壓-10 kV,進樣時間1 s,分離電壓-12.4 kV,紫外檢測波長280 nm,樣品儲存溫度30 ℃。
1.3.2.4 二維電泳(2-DE)分析蛋白質等電點。
根據Wawrzykowski等[21]的方法,稍作修改。200 μL 驢胎盤粗提液與800 μL的水化液混勻,取200 μL加載到電泳池,準備完畢后,進行等點聚焦程序(表1)。
等電聚焦后立即進行膠條平衡。平衡分兩步,每次15 min,分別使用5 mL含1% DTT平衡液1和5 mL含2.5% IAM 平衡液2。平衡結束后進行第二向SDS-PAGE電泳。凝膠用考馬斯亮藍染色后,以脫色液脫去背景顏色,使用凝膠成像設備掃描成電子圖片保存。
1.3.3 圓二色譜法檢測蛋白質的二級結構。
采用參考文獻[22]中的方法,略有改動。驢胎盤蛋白經 0.45 μm 微孔濾膜處理后在190~250 nm遠紫外區進行掃描,超純水作為空白。測定條件:0.1 cm 石英比色杯,溫度 25 ℃,光徑 0.1 cm,帶寬 1 nm,掃描速度 0.5 nm/s,用平均殘基摩爾橢圓率[θ]表示 CD 光譜數據,單位 deg·cm2/dmol,并使用 SELCON3 程序估算蛋白質的二級結構(http://dichroweb.cryst.bbk.ac.uk/html/home.shtml),匹配方式為Closest matching solution with all proteins。
1.3.4 蛋白質組成分析。
驢胎盤經SDS-PAGE分離后,條帶平均切成6份,移至 EP 管中。蛋白質的脫色酶切方法參考文獻[21],采用MALDI-TOF/TOF-MS 分析。利用Mascot軟件的SwissPort數據庫進行搜索。檢索分類(Taxonomy)為Equus caballus,Mascot檢索P< 0.05和Mascot得分>41分的結果被認為鑒定成功。
1.4 數據分析
每組數據均重復3次,用±SD表示。
2 結果與分析
2.1 蛋白質的基本性質
2.1.1 蛋白質含量分析。
用凱氏定氮法測定驢胎盤蛋白質含量為15.62%±1.04%,與唐文林[23]報道的豬胎盤蛋白質含量為14.67%結果相似。
2.1.2 蛋白質分子量分布。
驢胎盤蛋白電泳條帶清晰(圖1),分子量均勻分布(7~207 kD),與人胎盤[24]、豬胎盤[14,23,25]、鹿胎盤[26]、馬胎盤[27]、羊胎盤[28]、牛胎盤[29]提取物的電泳圖模式類似。由圖1可知,驢胎盤蛋白中主要含有8條條帶,主要分布于7~19和36~78 kD。
2.1.3 不同分子量蛋白質豐度。
胎盤蛋白分子量由低至高均勻分布(圖2),且出峰位置非常多,說明胎盤蛋白質種類較多,與前面SDS-PAGE結果一致。由圖2可知,驢胎盤蛋白主要分布在35~50 kD。
2.1.4 蛋白質等電點。
驢胎盤蛋白的2-DE電泳結果如圖3所示,水平方向為第一向固相pH梯度等點聚焦,垂直向為第二向垂直板SDS-PAGE電泳。驢胎盤蛋白等電點范圍分布較廣,在酸性和堿性范圍內均有相應的等電點蛋白。
2.2 蛋白質二級結構分析
采用圓二色譜法分析驢胎盤蛋白質組分中的α-螺旋、β-折疊、β-轉角和無規則卷曲比例,結果發現,驢胎盤蛋白α-螺旋、β-折疊、β-轉角和無規則卷曲的比例分別為9.7%、41.2%、21.7%和32.1%,可見驢胎盤蛋白質的二級結構以無規則卷曲和β-折疊為主,推測驢胎盤蛋白富含纈氨酸和異亮氨酸。
2.3 蛋白質組成分析
利用SDS-PAGE結合MALDI-TOF/TOF-MS的方法,總共鑒定出3 865種蛋白質,其中有301種蛋白為未命名蛋白。鑒定的驢胎盤蛋白種類低于Ner-Kluza等[29]報道的4 000多種牛胎盤蛋白,高于Miao等[30]報道的1 198種人胎盤蛋白和Lee等[31]報道的945種豬胎盤蛋白。鑒別出來的驢胎盤蛋白等電點和分子量的分布見圖4,這與上面GCE揭示的驢胎盤蛋白分子量分布一致,主要分布在30~50 kD。
通過基因本體論(gene ontology,GO)法對驢胎盤蛋白質分別以其分子功能(molecular function,MF)、生物學過程(biological process,BP)和細胞組成(cell component,CC)3種方式進行歸類,揭示驢胎盤蛋白生物學功能,結果見圖5。驢胎
盤蛋白參與的生物過程主要是三羧酸循環、翻譯、小GTP酶介導的信號轉導、糖酵解、ATP水解耦合質子傳輸、核小體組裝、細胞氧化還原穩態、毒素轉運、蛋白折疊、內質網應激反應等。驢胎盤蛋白參與形成的細胞組成過程有細胞外泌體、黏著斑、髓鞘、細胞膜、溶酶體膜、內質網、線粒體內膜、內質網膜、線粒體及中間絲的構建等。驢胎盤蛋白參與蛋白質種類最豐富的分子功能為GTP結合、GTPase活性、結構分子活性、聚(A)RNA結合、細胞骨架的結構成分、ATP結合、核糖體的結構成分、GDP結合、NAD結合、鈣轉運ATP酶活性等。
對驢胎盤蛋白進行KEGG通路分析,尋找驢胎盤蛋白集中的生物學信號通路,以期了解驢胎盤蛋白主要參與的生物信號通路,為后續驢胎盤蛋白功效研究提供依據。驢胎盤蛋白參與的KEGG信號通路主要有抗生素生物合成、碳代謝、吞噬體、糖酵解/糖異生、黏著斑、代謝途徑、胞吞作用、TCA循環、內質網蛋白質加工、ECM受體相互作用、肌動蛋白細胞骨架調控、白細胞穿越內皮遷移、氧化磷酸化等。驢胎盤蛋白信號通路的富集結果為進一步深入了解驢胎盤蛋白可能的生物學意義,闡明驢胎盤提取物發揮傷口愈合、延緩衰老、抗皺和改善肝損傷等藥理活性的機制提供新的途徑和線索。
驢胎盤參與ECM受體相互作用信號通路的相關基因為ECM中的collagen、fibronectin、THBS2等和細胞膜上的整合素、CD44、syndecan、CD36、CD47,從另一角度證實了胎盤水溶性提取物治療傷口愈合與整合素α5β1介導炎癥因子調控纖連蛋白促進細胞的遷移和吞噬有關[32]。已有研究表明,黏著斑、ECM受體相互作用、肌動蛋白細胞骨架調控等信號通路中的調控因子在骨骼肌生長發育過程中發揮著重要的作用[33],為驢胎盤肽促進骨骼肌成肌細胞增殖的作用機制和機理提供了新的途徑和線索[34]。
3 結論
該研究采用SDS-PAGE凝膠電泳、二維電泳、圓二色譜和MALDI-TOF/TOF/MS等手段揭示驢胎盤的性質與組成,結果表明,驢胎盤蛋白質的含量為15.62%±1.04%,等電點分布在酸性和堿性區域,分子量主要集中在7~19和36~78 kD 2個區域;驢胎盤蛋白二級結構主要以β-折疊和無規則卷曲為主。通過與馬科蛋白圖庫進行對比,檢索出3 865種可識別的蛋白。GO分類和KEGG通路分析顯示,驢胎盤蛋白主要富集在GTP結合、GTPase活性、小GTP酶介導的信號轉導、抗生素生物合成、糖酵解/糖異生、代謝途徑、胞吞作用、TCA循環、內質網蛋白質加工、ECM-受體相互作用等。該研究為進一步探究與驢胎盤藥理活性相關蛋白質組分、生物活性肽的開發提供數據支撐,明確驢胎盤蛋白成分發揮藥理活性的機制提供了新的途徑和線索。
參考文獻
[1] PARK S Y,PHARK S,LEE M,et al.Anti-oxidative and anti-inflammatory activities of placental extracts in benzo[a]pyrene-exposed rats[J].Placenta,2010,31(10):873-879.
[2] LEE K K,CHOI W S,YUM K S,et al.Efficacy and safety of human placental extract solution on fatigue:A double-blind,randomized,placebo-controlled study[J].Evidence-based complementary and alternative medicine,2012,2012:1-6.
[3] MULUYE R A,BIAN Y H,WANG L,et al.Placenta peptide can protect mitochondrial dysfunction through inhibiting ROS and TNF-α generation,by maintaining mitochondrial dynamic network and by increasing IL-6 level during chronic fatigue[J].Frontiers in pharmacology,2016,7:1-8.
[4] YOSHIKAWA C,KOIKE K,TAKANO F,et al.Efficacy of porcine placental extract on wrinkle widths below the eye in climacteric women[J].Climacteric,2014,17(4):370-376.
[5] SINGH N,BHATTACHARYYA D.Biochemical and functional analysis of corticotropin releasing factor purified from an aqueous extract of human placenta used as wound healer[J].Journal of pharmaceutical and biomedical analysis,2017,145:298-306.
[6] JASH A,KWON H K,SAHOO A,et al.Topical application of porcine placenta extract inhibits the progression of experimental contact hypersensitivity[J].Journal of ethnopharmacology,2011,133(2):654-662.
[7] LEE K H,PARK H J,SEO H G,et al.Immune modulation effect of porcine placenta extracts in weaned the pig[J].Journal of animal science,2013,91(5):2405-2413.
[8] YAMAUCHI A,KAMIYOSHI A,SAKURAI T,et al.Development of a mouse iron overload-induced liver injury model and evaluation of the beneficial effects of placenta extract on iron metabolism[J/OL].Heliyon,2019,5(5)[2020-06-25].https://doi.org/10.1016/j_heliyou.2019.e01637.
[9] BAK D H,NA J,CHOI M J,et al.Anti-apoptotic effects of human placental hydrolysate against hepatocyte toxicity in vivo and in vitro[J].International journal of molecular medicine,2018,42(5):2569-2583.
[10] JUNG J,LEE H J,LEE J M,et al.Placenta extract promote liver regeneration in CCl4-injured liver rat model[J].International immunopharmacology,2011,11(8):976-984.
[11] DE D,CHAKRABORTY P D,BHATTACHARYYA D.Analysis of free and bound NADPH in aqueous extract of human placenta used as wound healer[J].Journal of chromatography B,2009,877(24):2435-2442.
[12] TOGASHI S,TAKAHASHI N,IWAMA M,et al.Antioxidative collagen-derived peptides in human-placenta extract[J].Placenta,2002,23(6):497-502.
[13] CHAKRABORTY P D,BHATTACHARYYA D.Isolation of fibronectin type III like peptide from human placental extract used as wound healer[J].Journal of chromatography B,2005,818(1):67-73.
[14] 李小梅.豬胎盤肽凍干粉的制備及功效考察[D].揚州:揚州大學,2016:10-14,34,61,71-78.
[15] TOGASHI S I,TAKAHASHI N,KUBO Y,et al.Purification and identification of antioxidant substances in human-placenta extracts[J].Journal of health science,2000,46(2):117-125.
[16] WANG L,SONG X B,CUI H T,et al.Antifatigue effects of peptide isolated from sheep placenta[J].Chinese herbal medicines,2018,10(3):279-284.
[17] 房新平,夏文水,生慶海,等.多級色譜純化牛胎盤免疫調節多肽及性質測定[J].北京化工大學學報(自然科學版),2006,33(6):42-45.
[18] 中華人民共和國國家衛生和計劃生育委員會,國家食品藥品監督管理總局.食品中蛋白質的測定:GB 5009.5—2016 [S].北京:中國標準出版社,2017:1-3.
[19] 樊雨梅,帖航,解曉,等.驢乳粉蛋白的特性、結構與組成分析[J].食品科學,2020,41(12):221-227.
[20] 田蘭,馬曉麗,陳春麗,等.毛細管電泳法對乳及乳制品中乳源蛋白的研究[J].食品工業科技,2012,33(8):108-111.
[21] WAWRZYKOWSKI J,FRANCZYK M,HOEDEMAKER M,et al.The comparison of protein map between retained and released bovine placenta[J].Research in veterinary science,2019,125:45-51.
[22] 張巖春,尤娟,鄭喆,等.驢乳的營養成分與功能特性[J].農產品加工(學刊),2009(2):71-72.
[23] 唐文林.豬胎盤綜合利用工藝與應用研究[D].無錫:江南大學,2014:8,19.
[24] CENTLOW M,HANSSON S R,WELINDER C.Differential proteome analysis of the preeclamptic placenta using optimized protein extraction[J].Journal of biomedicine and biotechnology,2010,2010:1-9.
[25] 高垚垚,徐蓉蓉,王冬東,等.豬胎盤蛋白的分離鑒定[J].中成藥,2017,39(8):1651-1654.
[26] 高賽.鹿茸與鹿胎活性成分的提取及其抗衰老作用的研究[D].長春:吉林大學,2015:27.
[27] 王曉然.馬胎盤水溶性蛋白提取工藝及其保健功能研究[D].烏魯木齊:新疆醫科大學,2013:15.
[28] 周國華.家畜胎盤肽的制備及其生物活性的研究[D].泰安:山東農業大學,2006:25.
[29] NER-KLUZA J,WAWRZYKOWSKI J,FRANCZYK M,et al.Identification of protein patterns in bovine placenta at early-mid pregnancy-Pilot studies[J].Rapid communications in mass spectrometry,2019,33(12):1084-1090.
[30] MIAO Z J,CHEN M,WU H,et al.Comparative proteomic profile of the human placenta in normal and fetal growth restriction subjects[J].Cellular physiology and biochemistry,2014,34(5):1701-1710.
[31] LEE D G,NAM J,KIM S W,et al.Proteomic analysis of reproduction proteins involved in litter size from porcine placenta[J].Biochemistry & molecular biology,2015,79(9):1414-1421.
[32] NATH S,BHATTACHARYYA D.Cell adhesion by aqueous extract of human placenta used as wound healer[J].Indian journal of experimental biology,2007,45(8):732-738.
[33] 馬喜山.豬骨骼肌發育相關基因的差異表達和多態性研究[D].北京:中國農業科學院,2011:37.
[34] 張寧,邊育紅,張嘉麗,等.羊胎盤肽對L6成肌細胞增殖能力和ATP濃度的影響[J].天津中醫藥大學學報,2018,37(6):488-493.