禽流感病毒血凝與血凝抑制試驗影響因素

蔣庭松 王紅梅 劉黔峰

摘要：血凝（HA）和血凝抑制（HI）試驗是監測病毒感染的重要手段，可鑒定禽流感病毒的分離株，檢測禽血清中抗體或免疫抗體情況，是免疫效果評估及疫情監測的重要科學方法。該文就血凝和血凝抑制試驗操作過程中的材料準備、操作注意事項及試驗結果判斷等幾方面進行闡述，以期避免試驗中的類似問題，影響結果的準確性。

關鍵詞：血凝與血凝抑制試驗;耗材;試驗操作;結果判定

中圖分類號：S858.31文獻標識碼：Bdoi：10.3969/j.issn.2096-3637.2021.24.010

Analysis of Matters Needing Attention on Hemagglutination and Hemagglutination Inhibition Test of Avian Influenza Virus JIANG Tingsong，WANG Hongmei，LIU Qianfeng

（Animal Disease Prevention and Control Center of Guanyang County，Guilin Guangxi 541600，China）

Abstract：The hemagglutination （HA）and hemagglutination inhibition （HI）test is currently an important means of monitoring viral infections. This test can be used to identify isolates of avian influenza virus and detect antibodies or immunity in avian serum infected with avian influenza virus. Antibody status is an important scientific method for evaluating immune effects and epidemic detection. This article elaborates on the preparation of materials，precautions for the test operation，and the judgment of test results during the operation of the blood coagulation inhibition test，in order to help readers avoid similar problems in future tests，which will affect the test. The accuracy of the results.

Keywords ：blood coagulation and blood coagulation inhibition test，consumables used，test operation，result judgment

0引言

血凝（HA）是指有些病毒的血凝素使一些動物的紅細胞產生凝集。而血凝抑制（HI）則是抗體特異性地附著在HA分子的抗原位點上，干擾HA與紅細胞受體的結合，抑制HA凝集紅細胞的能力。這兩種方法應用在病毒鑒定、抗原變異、抗體效價監測以及病毒性疾病的診斷等方面，也是新城疫免疫效果以及禽流感疫情的主要監測手段，操作簡單，反應速度快，靈敏度較高，可批量化監測。但操作過程中很容易受其他因素的影響，導致檢測結果不準確。因此，為保證檢測結果準確性，應避免各種因素的影響。

1影響因素

血凝和血凝抑制試驗影響因素主要有以下幾個方面：紅細胞、抗原配制、稀釋液（PBS）、試驗溫度、試驗耗材、加樣操作、稀釋操作、反應時間、非特異凝集素等。

1.1紅細胞

紅細胞懸液濃度是影響試驗準確性的重要因素之一，不同個體對抗原敏感性不同。為避免雞只紅細胞發生自凝，在配制1%紅細胞懸液時，要求至少使用3只SPF（Specific Pathogen Free，無特定病原）級或無禽流感和新城疫抗體的健康成年公雞。

制備紅細胞懸液時，采集抗凝血液與阿氏液等體積混合，使用PBS緩沖液，以2 000r/min離心5～10 min，重復3次。一定要保證沖洗干凈血液中的白細胞，否則會增加非特異性反應，影響試驗結果。洗滌后按照1份紅細胞和99份緩沖液的比例配制成懸液，于4 ℃保存備用。但是配制好的1%紅細胞懸液不能長期保存，超過3 d后，需另行配制。若配置好的紅細胞懸液出現溶血，一定要重新配置，不能繼續使用[1]。

1.2抗原配制

1.2.14單位抗原配制

配制濃度必須準確，抗原濃度高，抗體效價偏低;抗原濃度低，抗體效價偏高。配制4單位抗原時，配制人員需檢查血凝價是否準確，然后進行系列稀釋，使最終稀釋度為1：2、1：3、1：4、1：5、1：6和1：7。每一稀釋度取0.025 mL，加入PBS 0.025 mL，再加入1%雞紅細胞懸液0.025 mL，混勻。將血凝反應板在室溫（約20 ℃）靜置40 min或4 ℃下靜置60 min。如果配制的抗原液為4單位，則1：4稀釋度為凝集終點;如果高于4單位，1：5或1：6可能為終點;如果低于4單位，1 ：2或1 ：3可能為終點。

1.2.24單位抗原標定

在微量反應板的第2～6孔均加入25 μL PBS或生理鹽水，吸取25 μL配制好的4單位抗原加入第1和第2孔。從第2孔倍比稀釋至第5孔，第5孔吸取25 μL棄之，第6孔加入稀釋液作為對照。每孔再加入25μL PBS或生理鹽水，然后再加入25 μL 1%雞紅細胞懸液。振蕩混勻，在室溫（20～25 ℃）下靜置20～30 min，觀察結果。對照孔紅細胞將呈明顯的小圓點沉到孔底。分裝標定好的4單位抗原在離心管中，并做好標記，避免抗原反復解凍，影響效價。

1.3稀釋液

試驗應選用合適的稀釋液種類，一般選擇PBS緩沖液或生理鹽水。另外，在進行血凝試驗、血凝抑制試驗及洗滌紅血球時均需采用同一種稀釋液。稀釋液pH值也會對試驗的結果產生影響，如pH值為7.0時，紅細胞沉降最充分，圖形最清晰，HI效價也最高;當pH值在5.8以下時，紅細胞容易產生自凝現象;pH值在7.8以上時，凝集圖形易解脫，也會造成試驗誤差。因此，試驗時建議稀釋液pH為7.0～7.2[2]。

1.4溫度

血凝和血凝抑制試驗對溫度的要求較高，一般在20～25 ℃的室溫下靜置30～40 min即可，溫度過高或者過低均會影響試驗結果。從4～37 ℃，隨著溫度上升，HA與HI滴度會逐漸提高。但在37 ℃時，凝集的紅細胞易解脫，使得紅細胞的沉降速度過快，影響試驗準確性;4 ℃以下時，紅細胞易產生自凝，并且試驗反應的速度很慢。因此，試驗時應注意保持合適的溫度。

1.5試驗耗材

1.5.1微量反應板

微量反應板有90°V型板和110°V型板。90°V型板的角度比110°V型板的角度小，紅細胞沉降速度快，形成的凝集圖像清晰、判定結果相對容易。因此，血凝和血凝抑制試驗時建議使用90°V型板。

1.5.2移液器

試驗時移液器量程越精確，檢測結果就越準確。HA與HI試驗中加樣體積為25 μL，因此，與20～200 μL量程移液器相比，選擇10～100 μL量程移液器的檢測精確度更高。

1.6加樣、稀釋操作

倍比稀釋時，每孔的吹吸次數應該一致，至少反復吹吸6次，以使其充分均勻混合，還應注意盡量避免產生泡沫。加抗原及紅細胞時，不要讓吸頭碰到反應板，以免產生污染，影響試驗準確度。加樣、稀釋時，應高度集中注意，以免漏加、重復加樣等。

1.7反應時間

血凝與血凝抑制試驗應在規定時間內發生反應。若反應時間過短，細胞凝集不完全;反應時間過長，則容易出現洗脫。反應時間超出正常時間10 min，會導致紅細胞裂解，試驗結果無說明意義[1]。

1.8非特異凝集素

有些禽類（如鴨、鵝等水禽及鴿）血清可能對雞紅細胞產生非特異性凝集，可先用待檢血清做HA試驗。如待檢血清出現紅細胞凝集，則說明存在非特異凝集因子，宜用雞紅細胞吸附待檢血清，具體方法為：每0.5 mL待檢血清中加入0.025 mL 50%雞紅細胞，輕搖后至少靜置30 min。離心2～5 min，收集上清液進行HI試驗?；蛘哂门c待檢血清同一宿主的1%紅細胞懸液進行HA和HI試驗。

2結果判定

除試驗材料與操作技術等會對血凝和血凝抑制試驗的結果產生影響外，實驗員對結果的判定也會影響準確性。正常試驗結果為病毒所在的對照孔發生完全凝集，而稀釋液對照孔無凝集，因此每次試驗均應設立對照組[3]。對照結果正確的情況下，實驗員可以傾斜反應板，從背面觀察紅細胞的凝集情況，需控制觀察時間，當陽性血清反應后就迅速觀察。當出現整板無紅細胞凝集或者整板紅細胞凝集時，則無法進行結果判斷，這時需查找原因，重新開展試驗。

3結束語

血凝和血凝抑制試驗是檢測禽流感等傳染性疾病非常有價值的方法，試驗方便、快捷且檢測成本較低，一直被廣泛應用，但其準確性卻容易受到多種因素的影響。在試驗過程中，實驗員必須注重每個細節，從試驗材料的準備到操作過程都應該嚴格按照相關試驗標準進行，保證各試驗環節的操作質量，有效降低操作誤差。此外，在結果判定時也應按照專業方法準確判斷，為禽流感等傳染性疾病的預防和控制提供可靠參考。

參考文獻

[1]杜秋陽，高沙沙，趙協，等.影響血凝和血凝抑制試驗的因素及分析[J].河南畜牧獸醫（綜合版），2019，40（8）：39-40.

[2]王寧.淺談血凝和血凝抑制試驗操作要點[J].中國畜禽種業，2020，16（3）：53.

[3]魯衛紅.禽流感血凝和血凝抑制試驗操作[J].獸醫導刊，2020（17）：123.