周 迪,石張鎮(zhèn),楊永凈,刁建東,白元松*,盧振霞*
(1.吉林大學(xué)中日聯(lián)誼醫(yī)院 血液腫瘤科,吉林 長春130033;2.吉林省腫瘤醫(yī)院 放療一科,吉林 長春130012)
多藥耐藥(MDR)是急性髓系白血病(AML)患者化療失敗、腫瘤復(fù)發(fā)、生存期縮短的重要原因之一,對MDR機制的探索成為目前的研究熱點[1]。ATP結(jié)合盒(ABC)膜轉(zhuǎn)運蛋白超家族在其發(fā)生機制中的角色被逐漸認識,乳腺癌耐藥蛋白(BCRP)作為ABC家族重要成員之一,是一種依賴ATP酶的藥物排除泵,近年來被發(fā)現(xiàn)可能與包括米托蒽醌、柔紅霉素等在內(nèi)的多種抗腫瘤藥物的交叉耐藥有關(guān)[2]。研究發(fā)現(xiàn),AML患者中多藥耐藥基因(MDR1)和BCRP共表達與臨床耐藥、較低的完全緩解率、較差的總生存率相關(guān)[3],BCRP可能是AML的耐藥機制之一。為了探討B(tài)CRP對AML患者耐藥性的相關(guān)性,本文對AML患者骨髓細胞的BCRP基因表達量、蛋白表達量進行檢測,并對不同濃度的DNR作用下AML骨髓細胞的藥物敏感性進行了研究。
1.1 臨床資料
吉林大學(xué)第三醫(yī)院收治的AML患者20例,其中男性8例,女性12例,年齡范圍為21-55歲。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)的FAB診斷分型為M1 型1例、M2 型4例、M3 型6例、M4 型3例、M5 型6例。
具體分組:本研究中的20例AML患者中,結(jié)合患者的治療史,有12例為首次接受治療,為初治組,8例為既往接受治療并緩解后再次出現(xiàn)復(fù)發(fā),為復(fù)發(fā)組。AML患者根據(jù)在院期間對治療的反應(yīng),分為敏感組和耐藥組,其中有9例為敏感組,11例為耐藥組。具體分組情況見表1。

表1 AML患者具體分組情況
1.2 方法
1.2.1單個核細胞分離 所有患者均進行骨髓穿刺術(shù),吸取新鮮骨髓,稀釋2倍后,加入Ficoll淋巴細胞分離液,1 500 rpm離心30 min,分離出單個核細胞,計數(shù)備用。
1.2.2藥物干預(yù)及MTT法檢測細胞活性 根據(jù)柔紅霉素的血漿峰值濃度(PPC),對96孔板中的單個核細胞給予不同濃度的柔紅霉素干預(yù),包括2倍PPC、1倍PPC、0.5倍PPC、0.25倍PPC、0.125倍PPC,即40、20、10、5和2.5 μg/ml,各濃度分別設(shè)置4次重復(fù)。
在適宜條件下培養(yǎng)后,向細胞培養(yǎng)體系中加入MTT溶液20 μl(濃度為5 mg/ml),于4 h后取出96孔板,將液體吸出并棄去,立即加入150 μl二甲基亞砜,于37℃孵箱搖床震蕩10 min后終止。酶聯(lián)免疫檢測儀測定各孔490 nm波長處的吸光度(OD)。
PPC=20D(D為臨床化療計量單位mg·kg-1·d-1);腫瘤細胞生長抑制率=(1-試驗孔OD值/對照孔OD值)×100%。化療藥物高度敏感:生長抑制率>50%;化療藥物中度敏感:生長抑制率30%-50%;化療藥物低度敏感:生長抑制率<30%。
1.2.3流式細胞術(shù)法檢測BRCP蛋白 單個核細胞(106個)離心并應(yīng)用冷PBS洗滌后,應(yīng)用細胞固定液作用30-40 min,應(yīng)用冷PBS洗滌兩次,并向細胞中加入BCRP抗體,冰上避光靜置30 min。利用流式細胞分析檢測儀對細胞的熒光強度進行定量記錄,每份樣本共計數(shù)104個細胞,以熒光染色陽性細胞百分率>10%作為陽性標(biāo)準(zhǔn)。
1.2.4RNA提取 取106數(shù)量級的單個核細胞,加入1 ml的RNA提取液TRIzol,震蕩并靜置,后加入異丙醇沉淀分離后,分別用70%和100%的冷乙醇洗滌及干燥,每份RNA樣本充分溶解于50 μl的去除RNA酶的三蒸水中,部分采取酶標(biāo)儀測定吸光度并計算RNA濃度及含量;部分應(yīng)用瓊脂糖RNA電泳檢測樣本純度;部分用于后續(xù)逆轉(zhuǎn)錄實驗。
1.2.5cDNA合成 通過RNA樣本濃度測定及計算,將2 μg的RNA樣本于提前冰浴的滅菌滅酶離心管中與oligo(dT)混合,使用dd水將RNA定容至13.5 μl,并在70℃金屬浴鍋中反應(yīng)5 min,迅速置于冰上靜置2 min,輕柔震蕩并離心,根據(jù)cDNA試劑盒說明書向反應(yīng)體系中加入Buffer、DTT、Rnasin及逆轉(zhuǎn)錄酶,并于42℃金屬浴鍋中反應(yīng)50 min,最后在95℃金屬浴鍋中反應(yīng)5 min。
1.2.6PCR反應(yīng)檢測BCRP基因表達 于離心管中分別加入cDNA樣本2 μl,前序及后序引物各1 μl,2×Master Mix 12.5 μl,應(yīng)用三蒸水定容至25 μl。將上述混合體系在94℃下反應(yīng)5 min。每個PCR循環(huán)包括94℃ 45 s、55℃ 45 s,72℃ 60 s,72℃ 7 min。在BCRP(32循環(huán))及β-actin(28循環(huán))PCR反應(yīng)結(jié)束后,取10 μl PCR產(chǎn)物進行瓊脂糖電泳,并應(yīng)用EB染色,應(yīng)用凝膠成像分析系統(tǒng)對電泳產(chǎn)物進行掃描、影像學(xué)分析、計算定量。以β-actin為內(nèi)參基因,檢測BCRP基因的相對表達量,與β-actin比例≥0.34即為BCRP陽性,PCR引物序列如表2。

表2 引物序列
1.2.7統(tǒng)計學(xué)處理 應(yīng)用SPSS13.0軟件進行分析,計量資料兩兩比較時應(yīng)用t檢驗,兩個及以上率或構(gòu)成比的比較應(yīng)用卡方檢驗,P<0.05代表差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 BCRP基因表達與AML臨床表型的關(guān)系
2.1.1AML患者BCRP基因表達情況-質(zhì)控 對AML患者骨髓有核細胞的RT-PCR產(chǎn)物進行瓊脂糖電泳,EB染色后進行凝膠成像,部分樣本組織的結(jié)果呈現(xiàn)如圖1所示。可見泳道內(nèi)未見明顯的降解彌散區(qū),無其他核酸物質(zhì)污染,提示樣本質(zhì)量完好無污染,可進行后續(xù)BCRP基因相對表達量的計算,并對BCRP基因表達是否陽性進行鑒定。

BCRP:乳腺癌耐藥蛋白;M:marker;10:空白對照;1-9:AML患者骨髓有核細胞
2.1.2BCRP基因表達情況-mRNA表達量 20名AML患者骨髓中提取出的單個核細胞,應(yīng)用RT-PCR方法檢測到BRCP的mRNA相對表達量,由低到高進行梯度排序,可見BCRP基因在不同個體中的表達差異較大,具體結(jié)果見圖2。

BCRP:乳腺癌耐藥蛋白;1-20:AML標(biāo)本
2.1.3BCRP基因表達與AML臨床表型的關(guān)系-耐藥率 AML患者中,敏感組(n=9)BCRP陽性者為2例,治療耐藥組(n=11)中BCRP陽性5例,結(jié)果顯示治療耐藥組的BCRP陽性率較敏感組有增高趨勢但沒有統(tǒng)計學(xué)差異(45.4% vs 22.2%,P=0.2785)。見表3。對本研究臨床資料及數(shù)據(jù)的分析顯示,BCRP在個體中表達量差異較大、mRNA的相對表達水平高低不同,但對RNA表達量的排序圖中發(fā)現(xiàn)可能的趨勢,即敏感組中BCRP表達較低,而耐藥組較高,提示BCRP可能與臨床耐藥有關(guān),統(tǒng)計學(xué)沒有差異是與樣本例數(shù)較少有關(guān)。

表3 AML患者不同組BCRP陽性率
2.2 細胞存活率檢測
2.2.1不同濃度柔紅霉素對AML細胞存活率的影響 通過MTT法檢測細胞存活率,并計算柔紅霉素對AML患者骨髓單個核細胞的抑制率。結(jié)果顯示,柔紅霉素對AML患者的單個核細胞抑制率存在個體差異,但總體上藥物對細胞的抑制存在濃度依賴性,高濃度的藥物對細胞抑制率高于低濃度,其中2倍PPC柔紅霉素作用下抑制率為(33.87±16.36)%,0.125倍PPC柔紅霉素作用下抑制率為(16.36±18.37)%,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.0029)。見圖3。

圖3 不同藥物濃度下的平均抑制率
2.2.2BCRP表達與細胞抑制率的比較 對BCRP表型不同的AML患者骨髓細胞的抑制率進行分析,結(jié)果顯示在0.125倍PPC柔紅霉素作用下,BCRP陰性組的細胞抑制率顯著高于BCRP陽性組的細胞抑制率[(24.09±18.68)% vs (1.99±0.80)%,P=0.001)]。在2倍PPC柔紅霉素作用下,BCRP陰性組的抑制率也顯著高于BCRP陽性組的抑制率[(39.26±15.25)% vs (20.58±3.67)%,P=0.002)],如表4。上述結(jié)果提示,AML患者BCRP陽性表達,會使腫瘤具有對抗腫瘤藥物有耐藥的趨勢,且此趨勢與抗腫瘤藥物濃度無關(guān)。

表4 不同BCRP表達與細胞抑制率的比較
急性髓系白血病是一種侵襲性克隆性疾病,是一種基因雜合性疾病,臨床治療中部分AML患者會因為多重耐藥而導(dǎo)致腫瘤耐藥、復(fù)發(fā)、預(yù)后不良。MDR是指惡性腫瘤細胞接觸一種抗癌藥后,對多種結(jié)構(gòu)不同、作用機制各異的其他抗癌藥產(chǎn)生耐藥性。MDR目前的具體病理生理學(xué)機制尚未被完全闡明,當(dāng)前被發(fā)現(xiàn)的可能機理包括多藥耐藥基因擴增及其蛋白產(chǎn)物P-糖蛋白過表達(P-gp),并且可能與B淋巴細胞瘤2(Bcl-2)通路、多藥耐藥相關(guān)蛋白(MRP)以及肺耐藥相關(guān)蛋白(LRP)等諸多因素相關(guān)[4]。
Doyle等[5]在人乳腺癌細胞株MCF-7/Adrvp細胞中首次發(fā)現(xiàn)了一段2.4kb mRNA,翻譯出具有665個氨基酸殘基的跨膜蛋白,并將其命名為BCRP。BCRP本質(zhì)上是半轉(zhuǎn)運蛋白,是ATP結(jié)合盒G2轉(zhuǎn)運蛋白(ABCG2),其功能單位是同型二聚體或可能更大的寡聚體。近些年的研究發(fā)現(xiàn)BCRP在腫瘤細胞發(fā)生MDR中起到了重要作用,該基因的高表達與甲氨蝶呤、9-氨基喜樹堿、拓撲替康、伊立替康和SN-38耐藥相關(guān)[6],是一個獨立的危險因素[7]。一項針對新診斷急性白血病患者的研究中顯示,BCRP基因陰性表達患者的完全緩解率明顯高于BCRP 基因陽性表達患者的完全緩解率(79.3% vs 31.6%)[8]。在一項針對AML患者膜排出通道的研究發(fā)現(xiàn),352例初發(fā)AML中有64例白血病細胞具有特殊的膜排出通道,伴有BCRP高表達,提示BCRP所介導(dǎo)的ATP依賴性的藥物細胞外轉(zhuǎn)運增加是這類患者發(fā)生耐藥的可能機制[9]。
研究顯示33%的AML細胞會高表達BCRP,與患者的預(yù)后及總生存相關(guān),然而BCRP表達與AML發(fā)生率相關(guān)性暫無報道[10]。在急性淋巴細胞白血病中,不同研究中對BCRP表達和藥物治療反應(yīng)相關(guān)性的結(jié)論不一致,可能與不同研究中BCRP檢測方法、樣本大小或患者是否有合并癥相關(guān)。目前認為BCRP基因高表達是AML不良預(yù)后的預(yù)測因素,與白血病細胞的MDR密切相關(guān)[11]。
本研究納入了20例AML患者,根據(jù)治療是否敏感、對抗腫瘤藥物是否耐藥、是否復(fù)發(fā)等臨床表型對AML患者進行分組,應(yīng)用RT-PCR及流式細胞術(shù)檢測骨髓細胞中BCRP的基因及蛋白表達,應(yīng)用MTT檢測細胞抑制率。結(jié)果發(fā)現(xiàn),BCRP基因及蛋白的表達與耐藥有相關(guān)性,且BCRP陽性與AML患者細胞抑制率降低有關(guān)。
既往一項研究對不同亞型AML患者的BCRP基因表達水平進行研究,發(fā)現(xiàn)AML各亞型間BCRP基因表達水平無統(tǒng)計學(xué)差異[12]。本研究結(jié)果與前述結(jié)果一致,在不同AML分型中,M2型BCRP平均表達水平最低,M5 型BCRP平均表達水平最高,各個亞型之間BCRP基因表達無顯著差異,這也可能與該研究納入的病例數(shù)量較少相關(guān)。
綜上,本研究結(jié)果提示了BCRP高表達可能與AML耐藥及預(yù)后不良有關(guān),盡管BCRP這種作用的具體信號途徑及機制尚有待探討,但BCRP通路抑制仍被認為是提高藥效的藥理學(xué)策略。對BCRP的進一步研究有助于揭示腫瘤耐藥的內(nèi)在機理,深入研究BCRP通路以及通過抑制BCRP通路減少藥物細胞外轉(zhuǎn)運、增加細胞內(nèi)藥物濃度,值得不斷挖掘開發(fā)與探索。