劉叢麗,董金菊,周雙玉
1 湖北醫藥學院附屬襄陽市第一人民醫院西區婦產科,湖北 襄陽441000;2 南漳縣婦女兒童醫院婦產科
宮頸癌是最常見的婦科惡性腫瘤之一,隨著Pap 涂片技術的推廣,宮頸癌的發生率和死亡率明顯降低,但是其全球病死率依然僅次于乳腺癌,居女性腫瘤第二位,而且近年來發病有年輕化趨勢[1-3]。現代醫學研究發現宮頸癌的發生是一個多步驟、多因素發展過程,包括抑癌基因的缺失失活、原癌基因的表達、細胞周期蛋白調節的異常、端粒及端粒酶功能異常等多種因素[4-5]。臨床治療以手術、化療、放療或新輔助化療為主,易造成機體免疫功能下降,甚至出現并發癥而導致死亡。因此,尋找低毒、高效、專一的抗宮頸癌藥物為該疾病相關研究之一。
紫草素(shikonin)是從紫草科植物紫草的根中提取的一種有效成分,其化學結構為萘醌類化合物,具有抗炎、抗病毒、抗氧化、抗腫瘤等作用[6]。目前,其表現出很好的抗腫瘤特性,對乳腺癌、卵巢癌、子宮內膜癌等都有抑制癌細胞增殖的作用[7-9],但對宮頸癌細胞的增殖、侵襲遷移及信號通路方面的研究較少。
本研究探討紫草素對人宮頸癌細胞Caski 侵襲遷移及Wnt/β-catenin信號通路的影響。
1.1 實驗細胞Caski 細胞購于中國科學院典型培養物保藏委員會細胞庫。細胞用含10% 胎牛血清的高糖型DMEM 培養基培養于37℃、5%CO2培養箱中,待細胞融合度達到80%時以1∶3傳代。
1.2 實驗試劑MTT(IM0280,Solarbio,中國);DMSO(D8372,Solarbio,中 國);Transwell 小 室(MCHT24H48,Millipore,美國);Matrigel 基質膠(356234,BD,美國);DMEM 高糖培養基(11965084,Hyclone,美國);FBS(10099141,Hyclone,美國);RIPA 裂解液(P0013B,Beyotime,中國江蘇);SDSPAGE凝膠試劑盒(P0012A,Beyotime,中國江蘇);Trizol(9109,Takara,日 本);逆 轉 錄 試 劑 盒(RR047A,Takara,日本);實時定量PCR 試劑盒(RR820L,Takara,日本);兔抗β-Catenin 單克隆抗體(ab52372,Abcam,英國);兔抗p-β-Catenin單克隆抗體(ab27798,Abcam,英國);山羊抗兔二抗(A0208,Beyotime,中國江蘇)。
引物GSK-3β:5′-CACCTCTGGCTACCATCCTTAT-3′;5′-ATTATTGGTCTGTCCACGGTCT-3′;Wnt2B:5′-GTGTCCTGGCTGGTTCCTTA-3′;5′-AGCTGGTGCAAAGGAAAGAA-3′。
1.3 實驗方法
1.3.1 MTT 細胞增殖實驗 取對數生長期細胞消化成單細胞懸液,計數后配制成1.5×105/mL懸液,以每孔100 加入到96 孔板中,37℃、5%CO2細胞培養箱培養24 h 后,以每孔0、2、4、8、16 μg/mL 的濃度加入紫草素,每組設6 個平行孔,加入相同體積的溶媒作為空白對照,分別處理24、48、72 h后,每孔加入20 μL MTT 溶液(5 mg/mL,即0.5% MTT),繼續培養4 h 后,棄去上清,每孔加入150 μL DMSO溶解MTT,于490 nm處檢測OD值,計算抑制率。
1.3.2 細胞侵襲實驗 將Transwell 小室放入24孔板,4℃預冷后,上室加入1∶4稀釋的Matrigel基質膠,待凝固后上室加入無血清培養基配制的細胞懸液400 μL,細胞數為1.5×105個,下室加入20% FBS 培養基,待細胞沉降后上室每孔加入一定濃度紫草素,每組設6 個平行孔,加入相同體積溶媒作為空白對照,處理24 h 后,取出小室,PBS漂洗后-20℃預冷甲醇固定5 min,用棉簽輕輕拭去上室未遷移細胞,結晶紫染色5 min,PBS 漂洗,拍照,計數。
1.3.3 細胞遷移實驗 將Transwell 小室放入24 孔板,上室加入無血清培養基配制的細胞懸液400 μL,下室加入20% FBS 培養基,待細胞沉降后上室每孔加入一定濃度的紫草素,每組設6 個平行孔,加入相同體積的溶媒作為空白對照,處理24 h后,取出小室,PBS漂洗后-20℃預冷甲醇固定5 min,用棉簽輕輕拭去上室未遷移的細胞,結晶紫染色5 min,PBS漂洗,拍照,計數。
1.3.4 qPCR 實驗 取對數生長期細胞,加入合適終濃度紫草素,加入相同體積溶媒作為空白對照,處理24 h 后,加入1.5 mL Trizol 于冰上吹打細胞,室溫靜置5 min,13 000 rpm離心5 min,吸取上清液,加入氯仿,靜置離心,吸取上清液加入異丙醇,靜置離心,棄去上清液,75% 乙醇清洗沉淀,離心棄上清,保留沉淀干燥,用DEPC 水溶解。然后按照Takara 反應試劑盒依次經過去除基因組DNA反應、反轉錄反應和RT-PCR進行擴增,擴增程序為:預變性:95℃、10 min、1循環數;擴增:95℃、15 s,60℃、15 s,72℃、30 s、40循環數。
1.3.5 Western bloting 實驗 取對數生長期細胞,加入合適終濃度紫草素,加入相同體積的溶媒作為空白對照,處理24 h后,加入RIPA裂解液,置于冰上研碎至勻漿后,4℃放置30 min,13 000 rpm離心10 min,取一部分上清液,BCA 試劑盒檢測蛋白濃度,另一部分上清液加入4×上樣緩沖液,煮沸變性后加到4%濃縮膠濃縮,10%分離膠分離,經過轉膜、封閉、4℃孵育一抗、室溫孵育二抗、ECL 發光液顯色、X醫用膠片顯影、定影等,最后拍照分析。
1.4 統計學方法采用SPSS 21.0 統計軟件分析數據,計量資料以xˉ±s表示;多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗,P<0.05表示差異有統計學意義。
2.1 紫草素對Caski 細胞增殖的抑制作用對照組Caski 細胞生長活躍,經不同濃度(2、4、8、16 μg/mL)紫草素處理后,細胞生長呈現不同的抑制作用。在同一時間下,隨著紫草素濃度的升高,其對Caski 細胞增殖抑制率越大,相同濃度下,對Caski 細胞作用時間越長,抑制率越大,因此,紫草素對Caski 細胞增殖抑制作用具有時間-濃度依賴性。見表1。

表1 紫草素對Caski細胞增殖的抑制作用(xˉ± s)
2.2 紫草素對侵襲Caski 細胞的抑制作用隨紫草素濃度的升高,Caski 細胞侵襲數目越少,與空白對照組相比,2 μg/mL紫草素差異顯著(P<0.05),4、8、16 μg/mL 紫草素差異極顯著(P<0.01)。見圖1。

圖1 紫草素對Caski細胞侵襲的影響
2.3 紫草素對Caski 細胞遷移的抑制作用隨紫草素濃度的升高,Caski細胞遷移數量越少,與空白對照組比較,2 μg/mL處理組差異顯著(P<0.05),4、8、16 μg/mL 紫草素差異極顯著(P<0.01)。見圖2。

圖2 紫草素對Caski細胞遷移的影響
2.4 紫草素對Caski 細胞GSK-3β、Wnt mRNA 表達的促進作用與空白對照組相比,隨著紫草素濃度的升高,Caski 細胞內GSK-3βmRNA 含量逐漸升高,Wnt mRNA含量逐漸減少(P<0.01)。見圖3。

圖3 各組細胞GSK-3β、Wnt mRNA表達量變化情況
2.5 紫 草 素 對Caski 細 胞β -Catenin、p- β -Catenin 的影響隨著紫草素處理濃度的升高,Caski 細胞內β-Catenin 蛋白越少,p-β-Catenin蛋白越多,其中與空白對照組相比,8、16 μg/mL紫草素差異顯著(P<0.01)。見圖4。

圖4 各組細胞β-Catenin、p-β-Catenin蛋白變化情況
紫草素已在白血病、肝癌、胃癌、乳腺癌等癌癥方面表現出良好的抗癌作用[10-14]。但紫草素對宮頸癌的抗癌能力方面研究報道較少,本研究發現紫草素可濃度-時間依賴性抑制人宮頸癌細胞系Caski細胞的增殖。
癌癥發生侵襲遷移是癌癥惡化的標志,抑制癌癥的侵襲遷移對預防癌癥惡化具有重要意義。本研究發現紫草素可有效抑制Caski 細胞的侵襲遷移,并表現出一定劑量依賴性。Wnt是Wnt信號通路的胞外信號,與Wnt 受體結合可激活該通路,本研究發現紫草素可抑制Caski細胞Wnt mRNA表達,因此,紫草素首先通過抑制Wnt分泌使Caski細胞Wnt 信號通路處于低活性狀態。Wnt 信號通路的調節關鍵在于胞內β-Catenin 的穩定與含量,當β-Catenin 水平低下時,Wnt 通路關閉;反之,Wnt通路開啟。而維持β-Catenin 穩定的關鍵蛋白是GSK-3β,在無Wnt 信號刺激情況下,胞質內GSK-3β能與其他蛋白例如APC、Axin 等以復合物形式磷酸化β-Catenin 氨基末端Ser/Thr 位點,使β-Catenin 泛素化降解,維持細胞內β-Catenin 低水平狀態。在Wnt 信號刺激情況下,由細胞分泌的Wnt蛋白與細胞表面受體FZD和LRP5/6結合后觸發細胞內信號轉導:細胞內蛋白Dsh(dishevelled)被活化,活化的Dsh 與Axin 及Frat1 結合,后兩者與GSK-3β和APC 基 因 形 成 復 合 物,Frat1 介 導GSK-3β從Axin脫離,不能磷酸化β-Catenin,導致β-Catenin 水平升高并激活下游轉錄因子,促進轉移相關因子高表達,進而促進腫瘤轉移[15]。本研究發現紫草素可誘導Caski 細胞內GSK-3βmRNA 表達。隨著Caski 細胞內GSK-3β表達量的增多,其與更多的β-Catenin 結合,打破胞內β-Catenin 磷酸化平衡反應,使更多β-Catenin 磷酸化降解,而且隨著紫草素濃度的增高,Caski 細胞內β-Catenin 含量越少,p-β-Catenin 含量越多。大量β-Catenin 被紫草素誘導降解,導致β-Catenin 在細胞內積累受阻,抑制β-Catenin 轉移到細胞核與轉錄因子TCF 相結合,進一步抑制靶基因如VEGF、基質金屬蛋白酶等侵襲遷移相關因子的表達激活。
綜上所述,紫草素可通過促進Caski 細胞Wnt/β-Catenin 通路中GSK-3βmRNA 表達和p-β-Catenin 蛋白表達,抑制Wnt mRNA 表達和β-Catenin 蛋白表達,從而抑制Caski 細胞的侵襲遷移。