綿羊附睪頭、體、尾上皮細胞的培養及相關基因表達

杜 煒，欒兆進，宋慧子，王兆琛，趙勇超，張家新

（內蒙古農業大學動物科學學院 010018）

1 實驗方法

1.1 附睪上皮細胞的分離培養

將附睪頭、體、尾組織分離，分別浸泡在加入PS的DPBS中使附睪組織中的精子成分上游，用眼科手術剪刀將組織剪成2～3mm小塊，并剔除其中結締組織，移入1mg/ml膠原蛋白酶Ⅳ中，37℃水浴震蕩消化30min，用孔徑為0.15mm不銹鋼濾網將消化液過濾，用DPBS沖洗濾網上的管狀組織塊，RPMI-1640培養基1350r/min離心5min清洗3次取得管狀組織塊，每個60皿中約放置60個塊，加入3mLRPMI1640培養基（含體積分數10%胎牛血清、5μg/mL轉鐵蛋白、100nmol/L雄激素、50U/mL青霉素和50μg/mL鏈霉素）37℃、5%CO2培養箱中培養，待單層細胞融合度達80%時，去掉組織塊，即得原代附睪上皮細胞[1]。

1.2 附睪上皮細胞體外傳代培養

待細胞融合接近80%～90%時傳代，加入0.25%胰蛋白酶（含EDTA）消化2min，光鏡下觀察到細胞收縮變圓或少數脫落浮起時，加入完全培養基終止消化，用移液槍輕輕吹打，使細胞基本成單個懸浮后，收集離心，重懸后接種到新的培養瓶[2]。

1.3 實時熒光定量PCR測定附睪頭、體、尾上皮細胞相關基因

使用TBGreenTMPremixExTaqTMⅡ（Takara）對GPx5基因進行相對定量試驗。反應條件如下:95℃、10min;95℃、30s，60℃、30s，72℃、30s，進行40個循環反應。反應體系為20μL:TBGreenTMPremixExTaqTMⅡ（2×）10μL，cDNA2μL，上 下 游引 物 各0.8μL，ddH2O6.4μL。利用2-ΔΔct法 與β-actin進行相對定量計算[3]。

表1 P66、SERPIN1、DCXR 、AK1和Clu基因引物序列

2 實驗結果

2.1 附睪頭、體、尾上皮細胞的分離及傳代培養

附睪上皮細胞，24h內以球狀團塊形式貼壁生長。36h后，細胞團逐漸變平并擴散成單層，外觀呈菌落狀的生長形態。原代附睪頭上皮細胞、附睪體上皮細胞3d內達到融合。可以用0.25%胰蛋白酶消化傳代至少8～10次（傳代比率為1∶2）。相比之下，附睪尾上皮細胞培養7d才能融合。經過4～5次傳代后，上皮細胞通常顯示細胞體積增大，形狀趨于扁平且不規則，并帶有大量胞質液泡。

圖1 上皮細胞培養圖

2.2 附睪相關基因在附睪頭、體、尾上皮細胞的表達差異

從p66mRNA、P34HmRNA、seRPINA1的基因表達量來看，附睪頭、體、尾上皮細胞的基因表達量比較均存在顯著差異，且頭部＞體部＞尾部（P＜0.01）；從ak1mRNA來看，附睪頭部上皮細胞基因表達量顯著高于體部（P＜0.05）；從clumRNA看，附睪頭、體部的基因表達量顯著高于尾部（P＜0.01）（見圖2）

圖2 附睪頭、體、尾上皮細胞相關基因表達差異

3 討論與結論

從p66mRNA，附睪頭、體、尾上皮細胞的基因表達量比較均存在顯著差異，且頭部＞體部＞尾部（P＜0.01）；考慮p66mRNA的基因表達量在附睪的不同部位的上皮細胞間存在分布差異。在附睪頭、體、尾呈遞減性分布。研究顯示，體外胚胎發育能力下降與胚胎暴露于氧化應激蛋白p66Shc環境下有關[4]。研究證實，綿羊合子階段注射p66SHc siRNA會導致p66mRNA的蛋白質水平下降[5]。而敲定p66SHc 能夠提升胚胎的基因激活階段的抗氧化應激能力。從正常綿羊附睪組織獲取的附睪頭、體、尾組織的p66mRNA基因分布情況看，決定綿羊附睪上皮細胞的生育、細胞凋亡、抗氧化應激能力的基因物質主要集中在附睪頭部。

從clumRNA看，附睪頭、體部的基因表達量顯著高于尾部（P＜0.01）。clumRNA與多種疾病有關，CLU的功能多樣，但在不同的區域承擔的生物學特性有影響差異。而附睪頭、體部基因表達量高于尾部,可見，綿羊附睪上皮細胞的clumRNA主要存在于附睪頭、體部，在尾部含量少。綜上，在不同的附睪上皮細胞中，參與附睪的功能的主要基因分布情況存在一定差異，但主要以附睪頭、體部為主，尾部的上皮細胞的基因分布較低，與附睪尾端的生物功能有關。