汪增秀 吳衛鋒
(南京中醫藥大學附屬南京醫院(南京市第二醫院) 肝病一科,江蘇 南京 210003)
肝癌是中老年人群的高發惡性腫瘤之一〔1〕。隨著我國人口老齡化比例不斷增長,肝癌發病率呈逐年上升趨勢,已位居各類癌癥的第3位〔2〕。目前肝癌的臨床治療以手術聯合放化療為主,但療效不佳,難以耐受藥物的毒副作用是影響預后的主要原因之一〔3〕。探尋具有明確療效的中草藥,對降低肝癌治療過程中的毒副反應,延長患者生存時間,提升術后生存質量具有重要意義〔4〕。白花蛇舌草屬一年生披散草本,為臨床常用中草藥,其成藥具有清熱解毒、利尿除濕的功效〔5〕。目前從白花蛇舌草中已提取、分離出30余種化合物,包括萜類、黃酮類、多糖類等〔6〕;具有調節免疫、抗腫瘤、抗氧化等多種活性,其中抗腫瘤作用被廣泛關注〔7〕。近年來對白花蛇舌草抗腫瘤的研究雖然廣泛,但仍缺少對其單體活性化合物的深入研究〔8〕。2-羥基-3-甲基蒽醌(HMA)是從白花蛇舌草中提取得到的一種蒽醌單體化合物,具有抗腫瘤活性〔9〕。本研究通過體外細胞學實驗觀察HMA對人肝癌細胞株HepG2增殖、凋亡的影響,并進一步探討白細胞介素(IL)-6/STAT3信號通路的作用。
1.1材料與試劑 人肝癌細胞株HepG2購于深圳市百恩維生物科技有限公司;HMA購于西安千草生物技術有限公司;胎牛血清,DMEM培養基,胰蛋白酶購于上海素爾生物科技有限公司;CCK8試劑盒、細胞凋亡檢測試劑盒、二喹啉甲酸(BCA)蛋白濃度檢測試劑盒購于上海康朗生物科技有限公司;Trizol試劑,mRNA逆轉錄試劑盒購于北京利維平生物科技有限公司;鼠抗人信號傳導和轉錄激活因子(STAT)3、磷酸化(p)-Stat3、β-actin單克隆抗體,辣根過氧化物酶標記的山羊抗鼠免疫球蛋白(Ig)G二抗購于杭州啟泰生物技術有限公司。
1.2細胞培養及增殖情況檢測 將HepG2細胞置于含10%胎牛血清的DMEM培養基中,在37℃ 5%CO2培養箱中孵育至細胞融合度>80%,使用胰蛋白酶消化、傳代培養。按1×106個/孔將細胞接種于96孔板中,常規培養24 h后分為空白對照組、50 μmol/L HMA組、100 μmol/L HMA組、200 μmol/L HMA組、20 ng/ml IL-6組、IL-6+HMA組,其中IL-6+HMA組為終濃度為50、100、200 μmol/L的HMA分別于20 ng/ml IL-6混合。上述各組均設置5個復孔,培養24 h、36 h、48 h后使用CCK8試劑盒檢測細胞增殖情況,操作嚴格按試劑盒說明書進行。
1.3細胞凋亡水平檢測 按1×106個/孔的密度將細胞接種于6孔板中,分組同1.2.1,每孔加入對應的含藥培養基作用 48 h,收集培養基中的全部細胞,磷酸鹽緩沖液洗滌,2 000 r/min離心10 min,收集細胞沉淀,使用膜聯蛋白(Annexin)V-FITC結合液重懸細胞,并設置全陰管、單陽管,混合均勻后室溫下避光靜置15~30 min,上流式細胞儀檢測細胞凋亡率。
1.4RT-PCR檢測 按1×106個/孔的密度將細胞接種于6孔板中,分組同1.2.1,每孔加入對應的含藥培養基作用 48 h,Trizol法提取細胞總RNA,使用核酸蛋白分析儀測定濃度,逆轉錄得到cDNA。B淋巴細胞瘤(BCL)-2、凋亡相關基因(Bax)、胱天蛋白酶(Caspase)-9引物由上海云序生物科技有限公司設計合成,BCL-2引物序列:上游5′-GGTGTGTGTACTGGGGTGG-3′,下游5′-CCTACTGACTCATGGACTTGGC-3′;Bax引物序列:上游5′-GAGCCTTTTT CTGGAGAGCCC-3′,下游5′-TAGTCTTGGTAGTACCCG ACC-3′;Caspase-9引物序列:上游5′-GGACAATCAAGCGTCTTTGCTTC-3′,下游5′-TTTGGAATGG GGTCACCACG-3′;β-actin引物序列:上游5′-TCAGATCTCGTTGTATCGTG-3′,下游5′-CCATACCTTAGGACACCGTA-3′。PCR循環條件:94℃ 5 min,94℃ 30 s, 58℃ 30 s,40個循環,行溶解曲線分析,2-△△Ct法計算mRNA相對表達量。
1.5Western印跡檢測 RIPA裂解液提取各組細胞的總蛋白,BCA法蛋白定量,取20 μg蛋白行10%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE),將分離得到的蛋白條帶電轉至聚偏二氟乙烯(PVDF)膜,5%脫脂奶粉封閉2 h,TBST洗膜后加入鼠抗人STAT3單克隆抗體(1∶1 000),鼠抗人p-STAT3單克隆抗體(1∶1 000)、鼠抗β-actin單克隆抗體(1∶2 000),4℃過夜,TBST洗膜后加入辣根過氧化物酶標記的山羊抗鼠IgG(1∶2 000),室溫搖床孵育2 h,電化學發光(ECL)顯色,凝膠成像系統拍照,使用Image進行灰度分析。
1.6統計學分析 采用SPSS19.0軟件進行單因素方差分析、t檢驗、χ2檢驗。
2.1HMA對HepG2細胞增殖的影響 培養24 h、36 h、48 h后,不同濃度HMA組HepG2細胞增殖水平均明顯低于空白對照組(P<0.05),且隨著HMA濃度的增加對HepG2細胞增殖的抑制作用逐漸加強。見表1。

表1 各組培養不同時間HepG2細胞增殖水平比較
2.2IL-6在HMA抗肝癌中的作用分析 培養24 h、36 h、48 h后,IL-6組HepG2細胞增殖水平明顯高于空白對照組(P<0.05);IL-6+50 μmol/L HMA組、IL-6+100 μmol/L HMA組、IL-6+200 μmol/L HMA組HepG2細胞增殖水平明顯低于IL-6組和空白對照組(P<0.05)。見表2。

表2 各組培養不同時間HepG2細胞增殖水平及Bcl-2、Bax、Caspase-9 mRNA相對表達比較
2.3HMA對HepG2細胞凋亡的影響 空白對照組、IL-6組、IL-6+50 μmol/L HMA組、IL-6+100 μmol/L HMA組、IL-6+200 μmol/L HMA組HepG2細胞凋亡率分別為(21.53±0.66)%、(16.37±0.43)%、(43.19±0.95)%、(61.72±0.58)%、(63.05±0.83)%。IL-6組細胞凋亡率明顯低于空白對照組(P<0.05);IL-6+50μmol/L HMA組、IL-6+100 μmol/L HMA組、IL-6+200 μmol/L HMA組HepG2細胞凋亡率明顯高于空白對照組和IL-6組(P<0.05),且隨HMA濃度的提升明顯增加,提示HMA可促進HepG2細胞的凋亡。
2.4HMA對HepG2細胞BCL-2、Bax、Caspase-9 mRNA表達的影響 IL-6組Bax和Caspase-9 mRNA表達水平明顯低于空白對照組(P<0.05);而HMA作用于HepG2細胞后可明逆轉IL-6對Bax、Caspase-9 mRNA表達的抑制效應,其中IL-6+50 μmol/L HMA組、IL-6+100 μmol/L HMA組、IL-6+200 μmol/L HMA組Bax、Caspase-9 mRNA表達水平明顯高于IL-6組和空白對照組(P<0.05)。IL-6組抗凋亡基因BCL-2表達雖然高于空白對照組,但差異無統計學意義(P>0.05);IL-6+50 μmol/L HMA組、IL-6+100 μmol/L HMA組、IL-6+200 μmol/L HMA組BCL-2表達明顯低于IL-6組和空白對照組(P<0.05)。見表2。
2.5HMA對HepG2細胞IL-6/STAT3信號通路的影響 IL-6組HepG2細胞中p-STAT3蛋白表達水平明顯高于空白對照組(P<0.05);IL-6+50 μmol/L HMA組、IL-6+100 μmol/L HMA組、IL-6+200 μmol/L HMA組p-STAT3蛋白表達水平明顯低于IL-6組和空白對照組(P<0.05)。STAT3蛋白表達水平在各組患者間差異無統計學意義(P>0.05)。見圖1,表3。

1~5:空白對照組,IL-6組,IL-6+50 μmol/L HMA組,IL-6+100 μmol/L HMA組,IL-6+200 μmol/L HMA組圖1 各組STAT3、p-STAT3蛋白表達的Western印跡電泳

表3 HMA對HepG2細胞IL-6/STAT3信號通路的影響
肝癌是我國常見的惡性腫瘤之一,年發病患者數超過80萬且呈上升趨勢,已位居我國居民惡性腫瘤發病率的第3位〔10〕。肝癌具有病情發展迅速、惡性程度高、預后差的特點〔11〕;手術是目前最有效的治療方案,但多數患者確診時已處于晚期,失去了手術的機會〔12〕;同時肝癌患者放化療的并發癥較多且復發、轉移率高,因此臨床仍缺少理想的治療手段〔13〕。HMA可有效抑制乳腺癌、食管癌等細胞的體外增殖,且具有濃度依賴性〔14,15〕。本研究中50、100、200 μmol/L的HMA均能用明顯抑制肝癌HepG2細胞的增殖,且隨濃度的增加抑制程度逐漸上升。IL-6是多種細胞分泌產生的活性因子,在信息傳遞、激活、免疫調節方面發揮重要作用,能夠介導T細胞、B細胞增殖、分化〔16〕。IL-6在肺癌、前列腺癌、乳腺癌等惡性腫瘤細胞的增殖、遷移、侵襲和凋亡中發揮重要作用〔17,18〕。本研究顯示,20 ng/ml IL-6能夠促進人肝癌HepG2細胞的增殖,但HMA能抑制IL-6對HepG2細胞增殖的促進作用,且隨濃度的增加抑制作用逐漸增強,提示HMA抗人肝癌細胞增殖的活性可能通過抑制IL-6及相關信號通路來實現。
IL-6/STAT3信號通路與肺癌、卵巢癌、結直腸癌等惡性腫瘤的發生與發展密切相關,IL-6介導的STAT3活化后能夠明顯上調惡性腫瘤細胞的增殖、分化,抑制BCL-xl、Survivin、髓細胞白血病(MCL)1等細胞凋亡基因的表達,發揮抗細胞凋亡的生物學作用〔19,20〕。BCL-2、Bax、Caspase-9是近年來研究發現的與細胞凋亡進程明顯相關的基因,其中BCL-2發揮抗細胞凋亡的作用,Bax、Caspase-9發揮促進細胞凋亡的作用〔21〕。本研究結果提示HMA能逆轉IL-6對HepG2細胞的影響,促進HepG2細胞凋亡。STAT3蛋白磷酸化為具有活性的p-STAT3后發揮生物學作用,本研究中IL-6能促進HepG2細胞STAT3蛋白磷酸化,而加入不同濃度的HMA后STAT3蛋白磷酸化水平明顯下降,提示HMA在HepG2細胞中能夠降低IL-6/STAT3信號通路活性,抑制細胞的增殖和分化。
綜上所述,HMA對人肝癌HepG2細胞具有明顯的體外抑制作用,同時能夠誘導細胞凋亡;抑制IL-6/STAT3信號通路是其作用機制之一,能夠為HMA用于肝癌患者的臨床治療提供理論依據。