熒光光譜法探究pH值對咖啡酸β-苯乙醇酯與人血清蛋白相互作用的影響

范金波，邢 莉，李孟雨，麻 奧，呂長鑫，勵建榮

（渤海大學食品科學與工程學院，遼寧省食品安全重點實驗室，生鮮農產品貯藏加工及安全控制技術國家地方聯合工程研究中心，遼寧 錦州 121013）

蜂膠是一類獨特的黏合劑和樹脂物質，具有多種生物學活性[1]。黃酮類與酚酸類化合物在其中大量存在，使其具備豐富的營養價值，然而目前只對少部分蜂膠活性成分進行過研究[2]。咖啡酸β-苯乙醇酯（caffeic acid phenethyl ester，CAPE）在蜂膠生物活性成分中占重要地位，具有免疫調節、抗癌、抗微生物、抗炎和抗氧化等一系列的生物活性，尤其在抗癌方面表現出很大的潛力[3-7]。目前已有研究者利用化學方法合成了CAPE，解決了從蜂膠中提取時提取率低的問題[8]。CAPE屬于酚類衍生物，穩定性差，生物利用度低，常使用蛋白質作為載體實現保護作用[9-11]。

人血清蛋白（human serum albumin，HSA）是人血漿中濃度最高的載體蛋白，能和各種內源性與外源性的分子進行結合并遞送，例如脂肪酸、營養素、類固醇以及許多常用藥物如華法林和布洛芬等[12]，成為了當前研究最為普遍的蛋白之一。HSA是單肽鏈的蛋白，由585 個氨基酸殘基組合而成，17 個二硫鍵有助于維持其心形形狀。HSA由3 個同源結構域構成（I、II、III），各結構域又可細分為A和B兩個亞結構域，芳香族和雜環配體分子分別結合到亞結構域IIA（site I）和IIIA（site II）的疏水腔，具有特定的生理活性[13-14]。位于亞結構域IIA（Trp 214）的色氨酸殘基，其熒光強度對小分子配體敏感，因此常被用作探針，監測該位點上配體與HSA的結合情況[15]。Li Hongliang等[16]采用多光譜和分子對接技術研究了CAPE與HSA的特異性結合作用，并與前人研究的蜂膠組分對比發現pH 7.4條件下，CAPE對HSA具有較強的內源性熒光猝滅作用，CAPE與HSA結合能力顯著強于其他蜂膠活性成分。

目前，CAPE參與人體循環系統藥代動力學過程的詳細轉運機制尚不清楚，CAPE與HSA生理條件下結合作用已有報道，但不同pH值對CAPE與HSA結合作用的影響鮮有報道。本實驗擬通過熒光發射光譜探究pH值對CAPE與HSA結合行為的影響，通過同步熒光光譜分析CAPE結合對蛋白結構的影響，通過位點Marker實驗確定兩者的結合位點，實驗結果為CAPE活性穩態化保持、靶向遞送提供理論支撐。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

HSA（99%） 北京百靈威科技有限公司；CAPE（98%）、華法林（98%）、布洛芬（98%） 生工生物工程（上海）股份有限公司；檸檬酸、無水乙醇、磷酸氫二鈉等均為分析純，實驗用水為超純水。

1.2 儀器與設備

F-7000熒光分光光度計 日本日立高新技術公司；FE20實驗室pH計 梅特勒-托利多儀器（上海）有限公司；Milli-Q Reference型超純水機 德國默克密理博有限公司。

1.3 方法

1.3.1 儲備液的配制

配制0.2 mol/L磷酸緩沖液（pH 3.0、5.0和7.4），并配制1.2×10-4mol/L的HSA儲備液，以及濃度為7.2×10-4mol/L CAPE、華法林、布洛芬儲備液。

1.3.2 CAPE與HSA相互作用的熒光光譜測定

熒光發射光譜：取7 支離心管，先加入不同pH值的緩沖溶液，再加入1.2×10-4mol/L HSA 30 μL，最后加入一定體積7.2×10-4mol/L CAPE，得到3 mL的混合溶液，使之充分反應20 min。最終HSA濃度為1.2 μmol/L，CAPE濃度為0～14.4 μmol/L。分別在298 K和310 K溫度下，設置激發和發射光柵分別為2.5 nm和5 nm，激發波長為280 nm，以700 nm/min的掃描速率，對290～450 nm的發射光譜進行熒光發射光譜的測定。

同步熒光光譜：在298 K和310 K溫度下，λEx和λEm的波長間隔分別設為Δλ=60 nm和Δλ=15 nm，激發光柵為2.5 nm和發射光柵為5 nm條件下，對波長250～350 nm的同步光譜進行測量。

1.3.3 CAPE與HSA的結合位點分析

參照1.3.2節方法，在加入CAPE前，先加入華法林/布洛芬充分搖勻反應20 min，使其濃度為6.0 μmol/L，后續操作與1.3.2節相同。并設置對照組。

1.4 數據統計分析

2 結果與分析

2.1 CAPE對HSA熒光強度的影響

如圖1所示，在298 K時，3 種pH值條件下CAPE對HSA均產生熒光猝滅現象，隨著CAPE濃度的增加（0～14.4 μmol/L）熒光強度呈規律性的減弱，峰形無顯著變化。在pH 3.0時，HSA的熒光強度峰值降低了43%；pH 5.0時，HSA的熒光強度峰值降低了40%；pH 7.4時，HSA的熒光強度峰值降低了78%。不同pH值條件下，最大發射波長（λmax）出現不同的變化趨勢，pH 3.0時發生微弱藍移（327～326 nm），pH 5.0時發生微弱紅移（338～339 nm），pH 7.4時發生紅移（339～343 nm），可能是由于pH值和CAPE對HSA共同作用使熒光發色團附近的微環境發生了變化，紅移使極性增強。由圖1D所示，猝滅率隨著CAPE濃度的增大而增大，其中pH 7.4時的猝滅率明顯高于pH 3.0和pH 5.0，差異顯著（P＜0.05）；而pH 3.0和pH 5.0相比，差異不顯著（P＞0.05）。

圖1 298 K條件下pH值對CAPE與HSA結合熒光光譜的影響Fig.1 Effect of pH on fluorescence spectra of HSA bound to CAPE at 298 K

如圖2所示，310 K時，在3 種pH值條件下CAPE對HSA均產生熒光猝滅現象，且峰形未發生明顯變化。當pH 3.0、5.0和7.4時，HSA的熒光強度峰值分別降低了43%、62%和81%。pH值變化影響了λmax，pH 3.0、5.0和7.4時，隨著CAPE濃度的增加λmax分別紅移6 nm（325～331 nm）、紅移8 nm（336～344 nm）和紅移3 nm（337～340 nm）。這表示CAPE與HSA發生了相互作用，加之pH值的影響改變HSA的結構，使熒光基團附近的微環境產生變化，極性增強。由圖2D可知，相同CAPE濃度下，猝滅率隨著pH值的升高而增大，pH 7.4時最高，pH 3.0時最低，說明pH值影響了CAPE與HSA的結合作用。

圖2 310 K條件下pH值對CAPE與HSA結合熒光光譜的影響Fig.2 Effect of pH on fluorescence spectra of HSA bound to CAPE at 310 K

2.2 熒光猝滅機理和結合常數

HSA與小分子之間的熒光猝滅類型主要分為靜態和動態[17]。靜態猝滅的過程是猝滅分子和HSA在基態形成了不發光的物質；動態猝滅是HSA的激發態分子和猝滅分子發生了碰撞，返回到基態，2 種方式均可以使HSA的熒光強度降低。靜態猝滅的猝滅常數Ksv和溫度呈反比，動態猝滅呈正比。本實驗采用Stern-Volmer方程（1）和Acharya方程（2）分析熒光猝滅機理[18]。

式中：F0和F分別為未加和加入CAPE時熒光強度；[Q]為CAPE的濃度/（mol/L）；Kq為雙分子猝滅速率常數；τ0為熒光團的平均壽命，為10-8s；Ksv為猝滅常數；Ka為結合常數。

R2值越接近于1，證明數據越精確。根據方程（1），可計算不同條件下CAPE與HSA結合的猝滅常數Ksv。由表1可知，在pH 3.0、5.0、7.4條件下，Ksv均隨溫度上升而增大，但由于Kq均遠大于2×1010L/（mol·s）（生物分子的最大散射碰撞猝滅常數），說明CAPE對HSA的猝滅類型是靜態猝滅[19-20]。相同溫度條件下（310 K）pH值變化影響了Ksv，且隨著pH值的升高而出現增加趨勢，pH 7.4時Ksv出現最大值，驗證了圖2的結果。結合常數Ka在不同條件下都為104～106數量級，證明二者的結合能力較強。pH值變化顯著影響了結合常數，在生理條件（pH 7.4）下最大。

表1 CAPE與HSA相互作用常數Table 1 Interaction constants of CAPE with HSA

2.3 熱力學性質和作用力類型

小分子和HSA之間主要基于氫鍵、范德華力、疏水相互作用和靜電相互作用4 種作用力結合[21]。在298 K和310 K溫度下通過Van’t Hoff方程（3）和熱力學方程（4）計算熱力學參數[22]：

式中：K1、K2對應T1（298 K）、T2（310 K）時的結合常數；ΔH為焓變/（kJ/mol）；ΔG為結合反應的吉布斯自由能變化/（kJ/mol）；ΔS為熵變/（J/（mol?K））；R為氣體常數（8.314 J/（mol?K））；溫差較小時，ΔH可作為常數[23]。

從理論上講，當ΔH＜0或ΔH≈0和ΔS＞0時，靜電相互作用扮演交互的主要力量；當ΔH＞0，ΔS＜0時，主要基于靜電和疏水相互作用結合；ΔH＜0，ΔS＜0時，氫鍵與范德華力作為交互的主要力量；ΔH＞0，ΔS＞0時，疏水作用起主要作用[24-25]。由表2可知，ΔH＜0，ΔG增加（ΔG＜0），ΔS＜0，說明CAPE與HSA之間的結合是熵減少，吉布斯自由能升高，自發進行的放熱過程，二者間的作用力表現為氫鍵和范德華力。

表2 CAPE與HSA相互作用的熱力學常數Table 2 Thermodynamic constants of interaction between CAPE and HSA

2.4 同步熒光光譜測定

在298 K和310 K溫度下測定不同配體濃度的HSA同步熒光光譜。當λEx和λEm的波長間隔設定在15 nm時反映酪氨酸殘基的光譜信息；設定在60 nm反映色氨酸殘基的光譜信息[26-27]。酪氨酸和色氨酸殘基的最大發射波長（λmax）均與附近微環境的極性相關，若λmax藍移，則周圍環境的疏水性增強；反之極性增強[28]。所以能夠依據λmax的改變，判斷CAPE的參與對蛋白質構象的改變[29]。

如圖3所示，298 K溫度下，無論Δλ=15 nm還是Δλ=60 nm，CAPE的參與對HSA都存在猝滅作用，而且隨CAPE濃度逐步升高，HSA熒光強度逐漸降低。當Δλ=15 nm時，pH 3.0與pH 7.4條件下，對應的酪氨酸殘基的吸收峰微弱藍移1 nm和2 nm，pH 5.0時未發生位移；當Δλ=60 nm時，pH 5.0和pH 7.4條件下，色氨酸殘基的吸收峰藍移1 nm和6 nm，pH 5.0時未發生位移。且伴隨pH值的增大，色氨酸最大吸收峰的降低趨勢更加明顯。表明CAPE的加入，加之pH值的影響，使色氨酸附近微環境的疏水性增強，極性減弱[30]。

圖3 298 K及pH 3.0（A）、pH 5.0（B）、pH 7.4（C）時CAPE對HSA的同步熒光光譜的影響Fig.3 Effects of different pHs on synchronous fluorescence spectra of HSA bound to CAPE at 298 K

如圖4所示，310 K溫度下，伴隨CAPE濃度的升高，酪氨酸與色氨酸殘基內源熒光強度均呈現規律性地降低，與圖3呈現出相似的規律。當Δλ為15 nm時，pH 5.0和pH 7.4條件下，對應酪氨酸殘基的吸收峰微弱藍移1 nm和2 nm，pH 3.0時未發生位移；當Δλ為60 nm時，pH 3.0和pH 7.4條件下，色氨酸殘基的吸收峰藍移1 nm和3 nm，pH 5.0時紅移1 nm。由此能夠推測，2 種氨基酸殘基附近的微環境均產生了微弱的變化。且色氨酸最大吸收峰的降低趨勢隨pH值的增大更為明顯，pH 7.4時最明顯。綜上所述，HSA中的酪氨酸殘基與色氨酸殘基比較，后者的熒光強度減弱的更顯著。說明色氨酸殘基可能比酪氨酸殘基更接近于結合位點，CAPE的加入和pH值的共同影響改變了HSA的構象。

圖4 310 K及pH 3.0（A）、pH 5.0（B）、pH 7.4（C）時CAPE對HSA的同步熒光光譜的影響Fig.4 Effects of different pHs on synchronous fluorescence spectra of HSA bound to CAPE at 310 K

2.5 CAPE與HSA結合位點的分析

華法林和布洛芬均能夠特異性地與HSA結合，結合位點分別位于HSA的亞結構域IIA（Sudlow’s site I）和亞結構域III A（Sudlow’s site II）。本實驗選擇布洛芬和華法林作為位點Marker，通過比較位點Marker存在時猝滅率的變化判斷CAPE與HSA的結合位點[31]。

由圖5可以得出，二者的存在均顯著降低了CAPE與HSA的結合，華法林存在時產生的熒光猝滅變化比布洛芬更顯著。結果說明CAPE與HSA的結合位點位于亞結構域IIA和IIIA之間，更接近于Sudlow’s site I。

圖5 298 K、pH 7.4布洛芬和華法林對CAPE與HSA結合的影響Fig.5 Effects of IBUP and WARF on binding between CAPE and HSA at 298 K and pH 7.4

3 結 論

本實驗采用熒光光譜法研究CAPE與HSA在pH 3.0、5.0、7.4條件下的結合作用，經過分析計算出猝滅常數、猝滅類型、結合常數、作用力類型，再通過同步熒光探究3 種pH值條件下CAPE對HSA構象的影響，最后位點Marker實驗確定結合位點。結果表明3 種pH值條件下CAPE對HSA均產生了熒光猝滅現象，類型為靜態猝滅，pH 7.4時具有最強的猝滅作用，同時結合常數最大，說明生理條件下CAPE與HSA更容易結合；熱力學參數表明CAPE與HSA主要通過范德華力和氫鍵作用結合；同步熒光表明CAPE和pH值的共同影響改變了HSA的構象；位點Marker實驗表明，CAPE與HSA的結合位點位于Sudlow’s site I附近。實驗結果證明，pH值的增加促進了CAPE與HSA的結合，這對于探究蜂膠生物活性成分在體內的轉運，以及為蛋白基-CAPE載體的開發提供了理論依據。