綠色木霉Tv-1511組蛋白乙酰化酶編碼基因TvGCN5的功能分析

張豪 李哲 郭凱 黃艷華 郝永任

（齊魯工業大學（山東省科學院）生物研究所，濟南 250014）

木霉（Trichoderma spp.）屬于半知菌類的絲孢綱、絲孢目、叢梗孢科、木霉屬，廣泛分布于自然界中，是土壤微生物群落的重要組成部分［1］。木霉是一種多功能絲狀真菌，在植物促生抗逆、生物防治、纖維素酶生產和生物質利用等方面有著廣泛用途。

木霉菌作為生防菌株已得到廣泛認可，其對植物病原真菌的拮抗機制包含競爭作用、重寄生作用及抗生作用等［2］。木霉還可以產生一些拮抗性物質和次級代謝產物，對其他微生物產生毒害，抑制其他微生物的蛋白質表達，從而抑制其他微生物的生長。一些研究已經表明木霉對黑曲霉菌［3］、尖孢鐮刀菌［4］、炭疽?。?］、菌核病病菌［6］具有拮抗作用。

木霉在自然界分布廣泛，常腐生于木材、種子及植物殘體上，生長迅速［7］，且對營養物質要求低，分泌豐富的纖維素酶系，可在植物殘體和土壤等含有有機質的環境中通過菌絲體和繁殖孢子存活，適應力強。另外，近年來越來越多的報道指出，木霉菌能夠很好地在植物根部定殖并快速生長，并能伴隨根系的生長而拓展［8-9］，較好地促進宿主植物生長和抗病性［10］。大量研究表明，木霉可以誘導根際微生物群落組成發生變化，增強養分吸收，穩定土壤養分，促進側根發育，增加根毛形成［11-12］。同時，木霉還能提高植物耐受非生物脅迫的能力，包括一些鹽堿脅迫、干旱脅迫［13］、重金屬離子脅迫［14］等。因此，木霉已經被制成孢子粉、發酵液等多種制劑，廣泛應用于農業生產中。

研究表明，生長素介導的信號通路是調控木霉生防促生能力的主要方式［15］。木霉處理可以提高植物體內生長素的水平，同時在多種木霉菌的代謝產物中也能夠檢測到生長素的水平。另外，在多種木霉菌的代謝產物中還分離純化出了木霉特有的類植物生長素6-PP［16］，它不僅能促進植物的生長，還能減少植物病害的發生［17］。

木質纖維素是地球上含量最豐富的可再生資源，其降解主要由以木霉屬、曲霉屬和青霉屬為代表的絲狀真菌完成。其中木霉屬被公認是產纖維素酶最高的菌種之一，是當前生產上應用較多的菌種［18-19］。里氏木霉和綠色木霉是木霉屬中纖維素酶的有效生產者，是現代工業發酵生產線上不可缺少的“生物機器”［20-21］。同時，也有研究表明，木霉通過分泌纖維素酶分解植物細胞壁，從而實現更好的根系定殖效果［22］。木霉在產纖維素酶方面具有菌體生長量大且迅速、酶系齊全、產酶量大、酶活性高、降解木質纖維素能力強、綠色高效以及自身生長營養需求簡單等優點。

組蛋白的翻譯后修飾在染色質調節中起著至關重要的作用。它確保開放染色質結構的保真度，增加基因表達和其他DNA活動［23-24］。GCN5是第一個被鑒定的組蛋白乙酰基轉移酶［25］，屬于GCN5相關的N-乙酰轉移酶（GNAT）超家族［26］，最初是從氨基酸合成缺陷的酵母突變體中鑒定出來的［27］，被確認為是組蛋白乙?；揎椀谋匦钘l件。GCN5通過催化核心組蛋白N末端尾部特定賴氨酸殘基的乙?；鴧⑴c染色質修飾［28］。在釀酒酵母、曲霉菌以及木霉菌的研究中表明，GCN5對于維持全基因組組蛋白乙?；幕A水平具有決定性的作用，但是其在絲狀真菌生長發育、代謝調控等方面的功能研究還比較少。Xin等［28］通過序列比對和功能分析鑒定了釀酒酵母GCN5的里氏木霉直系同源物，并構建了里氏木霉GCN5缺失突變株，對里氏木霉纖維素酶活性和乙?；降葴y定后，發現里氏木霉TrGCN5在絲狀生長、形態發生和包括纖維素酶編碼基因在內的特定基因的轉錄激活中起著關鍵作用。Zheng等［29］通過銅抑制現象實現了木霉GCN5缺失的效果，從而降低了木霉的營養生長和產孢量，而且還嚴重損害了木霉纖維素酶基因的表達。

木霉體內代謝途徑豐富，代謝產物繁多，其基因轉錄和表達受到復雜而嚴格的調控［30-31］。利用基因組分析和基因工程技術，發掘木霉中重要的代謝途徑和功能基因，是對木霉進行遺傳改良的有效途徑。本文鑒定了綠色木霉Tv-1511中的組蛋白乙?；幋a酶基因TvGCN5，并對TvGCN5在木霉促生抗逆、次級代謝以及產纖維素酶等方面的功能進行了分析和鑒定。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 供試菌株 綠色木霉（Trichoderma viride）Tv-1511，本實驗分離保存，在中國普通微生物菌種保藏中心的保藏號為CGMCC No. 16800，保藏日期為2018年12月04日，保藏地址為北京市朝陽區北辰西路1號院3號中國科學院微生物研究所。

1.1.2 培養基 培養基均是購買于青島高科園海博生物技術有限公司。PDA培養基（g/L）：馬鈴薯浸粉6.0，葡萄糖20.0，瓊脂20.0。LB培養基（g/L）：胰蛋白胨10.0，酵母浸粉5.0，氯化鈉10.0，瓊脂15.0。

1.1.3 試劑 潮霉素；氨芐青霉素。溶液A：1.2 mol/L D-sorbitol，0.1 mol/L KH2PO4，pH 5.6。溶解酶液：取0.15 g 溶解酶（lysing enzyme，Sigma：L1412）溶于20 mL溶液A，0.2 μmol/L濾膜過濾除菌。溶液B：1 mol/L sorbitol，50 mmol/L CaCl2，10 mmol/L Tris-HCl，pH 7.5。PEG溶 液：25% PEG600，50 mmol/L CaCl2，10 mmol/L Tris-HCl，pH 7.5。

1.2 方法

1.2.1 綠色木霉TvGCN5基因缺失工程菌構建 （1）敲除片段構建：以綠色木霉Tv-1511基因組DNA為模板，擴增TvGCN5基因的上游片段和下游片段，敲除片段擴增引物分別為：上游片段擴增引物TvGCN5-up-F：ACAGTGGGATTTGGAAGTTGGGAT和TvGCN5-up-R：GCCATATTGATGTAAGGTAGCTCAGGTGGAATTAGGTGAGGTAGAGAC；下游片段擴增引物TvGCN5-down-F：GGGTATTCCATCTAAGCCATAGTACCCATGTCACGAAAGGGTTT GGTGGTAT和TvGCN5-down-R：GTGTTGGACGAAGAATGGGAGCAGT。以線性化的pBARGPE1-Hygro質粒為模板，擴增潮霉素抗性基因（HygR），擴增引物為HygR-F：GAGAGCTACCTTACATCAATATGGC和HygR-R：GGTACTATGGCTTAGATGGAATACCC。通過融合PCR構建敲除片段，將PCR產物純化回收。（2）原生質體制備：接種Tv-1511于PDA平板，28℃培養10 d后，收集分生孢子。在玻璃紙覆蓋的PDA平板上，涂布孢子懸液，待PDA平板上的孢子萌發后，將長有菌絲的纖維膜取出并反向貼在含有溶解酶液的平板上，裂解菌絲，收集原生質體，并稀釋至107個/mL。（3）原生質體轉化及突變子篩選：在離心管中加入原生質懸浮液、純化的PCR產物、PEG溶液，用槍頭混勻，冰上放置20 min，常溫下放置5 min，輕輕混勻后將混合液涂布在覆蓋層析紙的含1 mol/L蔗糖PDA平板上，待萌發后，將條形層析紙轉到含抗生素的PDA平板上，挑取菌落，轉接至新鮮的抗生素平板上，培養2 d，篩選并鑒定突變子。

1.2.2 綠色木霉TvGCN5基因過表達工程菌構建 （1）TvGCN5基因表達盒的克?。阂跃G色木霉Tv-1511基因組DNA為模板，PCR反應獲得帶有酶切連接位點（BamH I和EcoR I）的TvGCN5基因表達盒，利用DNA回收試劑盒回收擴增出的DNA片段。連接T載體，測序驗證序列的正確性。擴增引物分別為TvGCN5-FL-BamHI-F：CGGGATCCATGGCTGAC GTTAAAGAAGA和TvGCN5-FL-EcoRI-R：CGGAATTCCTACTTCTCCGGCTCGAG。（2）過表達載體的構建及轉化：將酶切回收得到的TvGCN5基因表達盒和載體pBARGPE1切膠并回收，利用T4連接酶試劑盒進行DNA片段和表達載體的連接。轉化DH5α感受態細胞，并在抗性LB平板上篩選，進行菌落PCR驗證。用質粒大提試劑盒提取后經測序驗證的表達載體為pBARGPE1-Hygro-TvGCN5，保存備用。（3）過表達工程菌的構建及驗證：按照1.2.1的方法制備原生質體，用BamH I酶切表達載體pBARGPE1- Hygro-TvGCN5，獲得線性化質粒。在離心管中加入原生質懸浮液、純化的PCR產物、PEG溶液，用槍頭混勻，冰上放置20 min，常溫下放置5 min，輕輕混勻后將混合液涂布在覆蓋層析紙的含1 mol/L蔗糖PDA平板上，待萌發后，將條形層析紙轉到含抗生素的PDA平板上，挑取菌落，轉接至新鮮的抗生素平板上，培養2 d，篩選并鑒定突變子。

1.2.3 綠色木霉TvGCN5基因的轉錄表達和蛋白表達水平分析 將100 μL木霉原始菌株（wildtype）和突變工程菌（Tv-1511-△GCN5和Tv-1511-GCN5-OE）的孢子液分別接種于PDB液體培養基中，28℃，180 r/min培養48 h，通過4層無菌紗布過濾獲得無菌的菌絲體。將上述收集的木霉無菌菌絲體，經過液氮充分研磨處理后，用Trizol法提取木霉菌總RNA，并反轉錄獲得cDNA。使用澤葉生物的真菌總蛋白微量提取試劑盒，提取木霉菌的總蛋白。

采用熒光定量PCR檢測木霉原始菌株和突變工程菌（Tv-1511-△GCN5和Tv-1511-GCN5-OE）中TvGCN5的轉錄表達，擴增引物為TvGCN5-qPCR-F：GGAGTGGA AGAATGGCATA和TvGCN5-qPCR-R：GGAGTGGAAGAATGG CATA。利用已知的TvGCN5蛋白的特征序列制備可用于蛋白檢測的抗體，制備工作有南京金斯瑞公司完成。利用蛋白質免疫印跡法，檢測TvGCN5蛋白在原始菌株（wildtype）和突變工程菌（Tv-1511-△GCN5和Tv-1511-GCN5-OE）中的表達。

1.2.4 綠色木霉組蛋白乙酰化水平分析 為了測定GCN5基因缺失與過表達后，基因組中組蛋白乙酰化水平的變化，利用EpiQuik公司試劑盒（Total H3ac Detection Kit，P-4031）進行組蛋白H3的提取和乙?；癄顟B檢測。

1.2.5 綠色木霉抗逆能力的分析 在PDA平板上活化木霉原始菌株（wildtype）和突變工程菌（Tv-1511-△GCN5和Tv-1511-GCN5-OE），28℃避光培養48-72 h，使得原始菌株和突變工程菌木霉長勢均一，再使用打孔器制備大小均一的菌塊。一部分菌塊轉移到含有300 mmol/L NaCl的PDA平板中央，進行耐鹽實驗研究；部分菌塊轉移到新的PDA平板中央，放入35℃培養箱培養72 h，進行耐高溫實驗研究。將不同處理的木霉平板培養一段時間后，分別測量其菌落生長直徑。

將200 μL木霉原始菌株和突變工程菌（Tv-1511-△GCN5和Tv-1511-GCN5-OE）的孢子分別接種于含有300 mmol/L NaCl的PDB液體培養基中，28℃，180 r/min培養72 h；再重新取等量的菌絲體分別接種于新的PDB液體培養基中，35℃，180 r/min培養72 h，進行耐高溫實驗研究。在特定培養時間，收集菌絲，測定生物量。

1.2.6 綠色木霉對植物促生能力的分析 供試植物為擬南芥、椒樣薄荷和黃瓜（津研四號）。將上述供試植物進行預培養，并選用長勢均一的植物移至水培裝置，進行處理。以加入木霉原始菌株或突變工程菌（Tv-1511-△GCN5和Tv-1511-GCN5-OE）的孢子液（終濃度為105）為不同處理組，每個處理設置4個重復，處理一段時間后進行生長指標的測定。

1.2.7 木霉發酵液中的IAA含量分析 將200 μL木霉原始菌株和突變工程菌（Tv-1511-△GCN5和Tv-1511-GCN5-OE）的孢子分別接種于PDB液體培養基（加入或者不加100 μg/mL L-tryptophan）中，28℃，180 r/min培養72 h，通過2層無菌紗布過濾菌絲體，回收液體發酵液，回收的液體發酵液經10 000 r/min離心后取上清，利用HPLC檢測發酵液中的IAA含量。

1.2.8 木霉發酵液中纖維素降解酶的活性分析 將200 μL木霉原始菌株和突變工程菌（Tv-1511-△GCN5和Tv-1511-GCN5-OE）的孢子分別接種于MM液體培養基中，28℃，180 r/min培養48 h，通過2層無菌紗布過濾獲得工程菌和原始菌株的菌絲體。將菌絲體分別接種于含有微晶纖維素的MM液體培養基（不添加葡萄糖）中進行纖維素酶的誘導培養，72 h后通過2層無菌紗布過濾菌絲體，回收液體發酵液。

回收的液體發酵液經10 000 r/min離心后取上清，制備粗酶提取液，檢測纖維素酶的活性。其中濾紙酶（filter paper celluloses，FPase）活性、羧甲基纖維素酶（carboxymethylcellulose cellulose，CMCase）活性檢測采用DNS法檢測，pNPCase（p-nitrophenyl-β-cellobioside cellulase）和pNPGase（p-nitroph- enyl-β-glucopyranoside cellulase）酶活性采用pNG法檢測。

2 結果

2.1 綠色木霉TvGCN5基因缺失和過表達的工程菌的構建

通過融合PCR獲得TvGCN5基因的敲除片段（圖1-A，B），構建了木霉缺失菌株Tv-1511-△GCN5；通過雙酶切法構建了TvGCN5過表達載體（圖1-C，D），進一步構建了TvGCN5過表達木霉菌株Tv-1511-GCN5-OE。然后采用熒光定量PCR檢測TvGCN5的轉錄表達，利用蛋白質免疫印跡法，檢測TvGCN5的蛋白表達。結果顯示，與原始菌株相比，在Tv-1511-△GCN5菌株中檢測不到TvGCN5的轉錄表達（圖2-A）和蛋白表達（圖2-B，C），而在Tv-1511-GCN5-OE菌株中TvGCN5的轉錄表達（圖2-A）和蛋白表達（圖2-B，C）均明顯上升。

圖1 TvGCN5基因敲除片段及過表達載體的構建Fig. 1 Construction of knockout fragment and overexpression vector of TvGCN5 gene

圖2 熒光定量PCR和Western blot鑒定TvGCN5基因過表達和缺失的木霉工程菌Fig.2 Identification of overexpressing or deleting TvGCN5 gene in Trichoderma engineering strains by fluorescence quantitative PCR and Western blot

2.2 過表達TvGCN5基因對綠色木霉組蛋白乙?；降母淖?/h3>

檢測了綠色木霉中TvGCN5基因缺失和過表達對組蛋白H3乙?；降挠绊憽＝Y果表明，與原始菌株相比，TvGCN5基因缺失突變體Tv-1511-△GCN5中組蛋白H3的乙?；揎椝矫黠@下降（圖3），TvGCN5基因過表達工程菌Tv-1511-GCN5-OE中組蛋白H3乙?；揎椝矫黠@提高（圖3）。

圖3 綠色木霉Tv-1511及其工程菌中的組蛋白乙酰化修飾水平的變化Fig.3 Changes in the levels of histone acetylation in T. viride Tv-1511 and its engineered strains

2.3 過表達TvGCN5基因提高了綠色木霉的抗逆 能力

對木霉原始菌株（wildtype）和突變工程菌株（Tv-1511-△GCN5和Tv-1511-GCN5-OE）進行了耐鹽耐高溫平板實驗以及耐鹽耐高溫液體培養實驗。結果發現，在300 mmol/L NaCl脅迫下，TvGCN5基因過表達的工程菌（Tv-1511-GCN5-OE）的直徑平均比原始菌株增加了大約（90.8±5.1）%，而TvGCN5基因缺失的工程菌（Tv-1511-△GCN5）的直徑平均比原始菌株減少了大約（69.3 ± 3.5）%（圖4-A，B）。TvGCN5過表達的工程菌（Tv-1511-GCN5-OE）的生物量比原始菌株提高了大約1.1倍，而TvGCN5缺失的工程菌（Tv-1511-△GCN5）的生物量比原始菌株降低了大約（62.4 ± 4.4）%（圖4-C）。這些結果表明TvGCN5基因在綠色木霉耐鹽中起著重要作用。

圖4 綠色木霉Tv-1511原始菌株及其工程菌耐鹽能力的 分析Fig.4 Analysis of the salt tolerances of T. viride Tv-1511 original strain and its engineered strains

在35℃的培養環境下，TvGCN5基因過表達的工程菌（Tv-1511-GCN5-OE）的直徑平均比原始菌株增加了大約（82.2 ± 4.1）%，而TvGCN5基因缺失的工程菌（Tv-1511-△GCN5）的直徑平均比原始菌株減少了大約（48.8 ± 3.6）%（圖5-A，B）。TvGCN5基因過表達的工程菌（Tv-1511-GCN5-OE）的生物量比原始菌株提高了大約（75.3 ± 5.2）%，而TvGCN5基因缺失的工程菌（Tv-1511-△GCN5）的生物量比原始菌株降低了大約（51.9 ± 6.3）%（圖5-C）。這些結果表明TvGCN5基因在綠色木霉耐高溫中起著重要作用。

圖5 綠色木霉Tv-1511原始菌株及其工程菌耐高溫能力的分析Fig.5 Analysis of the high temperature tolerance of T. viride Tv-1511 original strain and its engineered strains

2.4 過表達TvGCN5基因的綠色木霉具有更強的植物促生能力

在擬南芥、椒樣薄荷和黃瓜種植中，接種了綠色木霉Tv-1511的孢子液，有效地促進了植物的生長，而且接種了TvGCN5基因過表達工程菌菌株（Tv-1511-GCN5-OE）的促生效果更明顯（圖6-8）。

其中，TvGCN5基因過表達工程菌（Tv-1511-GCN5-OE）對擬南芥的促生效應明顯強于原始菌株，其中鮮重提高了（34.1 ± 3.3）%，葉片面積提高了（24.6 ± 3.8）%；而TvGCN5基因缺失工程菌（Tv-1511-△GCN5）的促生效率相比原始菌株明顯下降 （圖6），其中鮮重降低了（45.9 ± 5.1）%，葉片面積降低了（25.9 ± 4.1）%。

圖6 綠色木霉Tv-1511原始菌株及其工程菌對擬南芥促生能力的分析Fig.6 Analysis of the growth-promoting effects of T. viride Tv-1511 original strain and its engineering strains on Arabidopsis thaliana

TvGCN5基因過表達工程菌（Tv-1511-GCN5-OE）對椒樣薄荷的促生效應明顯強于原始菌株（圖7），其中鮮重提高了（48.1 ± 4.5）%，葉片面積提高了（34.3 ± 4.3）%；而TvGCN5基因缺失工程菌（Tv-1511-△GCN5）的促生效率相比原始菌株明顯下降 （圖7），其中鮮重降低了（40.6 ± 3.1）%，葉片面積降低了（46.1 ± 5.3）%。

圖7 綠色木霉Tv-1511原始菌株及其工程菌對椒樣薄荷促生能力的分析Fig.7 Analysis of the growth-promoting effects of T. viride Tv-1511 original strain and its engineering strains on peppermint（Mentha piperita）

TvGCN5基因過表達工程菌（Tv-1511-GCN5-OE）對黃瓜的促生效應明顯強于原始菌株（圖8），其中鮮重提高了（50.9 ± 6.3）%，葉片面積提高了（14.33 ± 1.3）%；而TvGCN5基因缺失的工程菌（Tv-1511-△GCN5）的促生效率相比原始菌株明顯下降（圖8），其中鮮重降低了（33.6 ± 2.9）%，葉片面積降低了（26.4 ± 1.9）%。

圖8 綠色木霉Tv-1511原始菌株及其工程菌對黃瓜促生能力的分析Fig.8 Analysis of the promoting effects of T. viride Tv-1511 original strain and its engineering strains on cucumber（Cucumis sativus L.）

2.5 TvGCN5基因參與調控綠色木霉產IAA的能力

木霉菌能分泌一些植物生長激素等物質，促進植物的生長。因此我們利用液相色譜檢測了木霉發酵液中IAA的含量。結果（圖9）發現，相比于原始菌株，在加入L-tryptophan 的培養基中，TvGCN5基因過表達工程菌（Tv-1511-GCN5-OE）所產IAA的含量提高了（71.2 ± 6.7）%，而TvGCN5基因缺失工程菌（Tv-1511-△GCN5）則降低了（53.5 ± 3.9）%。這些結果表明TvGCN5基因在綠色木霉產IAA的代謝中起著重要作用。

2.6 TvGCN5基因過表達提高了綠色木霉產纖維素酶的能力

木霉是公認的高效的纖維素酶產生菌，因此測定了TvGCN5基因在綠色木霉產纖維素酶中的作用。TvGCN5基因過表達工程菌（Tv-1511-GCN5-OE）中各種纖維素降解酶的活性均高于原始菌株，其中FPase 活性提高了大約1.3倍（圖10-A），CMCase 活性提高了大約（75.2 ± 4.8）%（圖10-B），pNPCase 活性提高了大約（74.6 ± 6.2）%（圖10-C），pNPGase活性提高了大約（72.9 ± 5.1）%（圖10-D）；而TvGCN5基因缺失工程菌（Tv-1511-△GCN5）中，各種纖維素降解酶的活性均低于原始菌株（wildtype），其中FPase 活性降低了大約（60.1 ± 3.7）%（圖10-A），CMCase 活性降低了大約（41.4 ± 4.4）%（圖9-B），pNPCase 活性降低了大約（53.8 ± 5.5）%（圖10-C），pNPGase活性降低了大約（61.9 ± 5.8）%（圖10-D）。

圖9 綠色木霉Tv-1511原始菌株及其工程菌發酵液中IAA含量的檢測Fig.9 Detection of IAA contents in the fermentation broths of T. viride Tv-1511 original strain and its engineering strains

圖10 綠色木霉Tv-1511原始菌株及其工程菌產纖維素酶活性的分析Fig.10 Analysis of cellulase activities of T. viride Tv-1511 original strain and its engineering strains

3 討論

由組蛋白乙酰轉移酶和組蛋白去乙酰化酶催化的組蛋白乙?；腿ヒ阴；瘜τ诨虮磉_調節至關重要［32］，在生物生長發育中起著重要作用。組蛋白乙酰基轉移酶GCN5屬于其中重要的一種，在維持全基因組組蛋白乙?；幕A水平起著重要作用。自從1996年Brownell等從四膜蟲核提取物中分離到第一種組蛋白乙酰基轉移酶（HAT）——GCN5以來，在酵母、果蠅等生物體內都分離得到了不同的HATs。我們基于前期全基因組測序（DDBJ/ENA/GenBank under the accession VCEC00000000（BioProject：PRJNA543939；BioSample：SAMN11791795））的結果，也從綠色木霉Tv-1511中克隆到了組蛋白乙酰化酶編碼基因TvGCN5，并已將基因序列提交至NCBI GenBank（MZ338376）。

本研究通過構建TvGCN5缺失的木霉菌株Tv-1511-△GCN5和TvGCN5過表達的木霉菌株Tv-1511-GCN5-OE，清晰高效的研究了TvGCN5基因在木霉中的作用。木霉菌屬于重要的植物根際促生真菌，在植物根際接種木霉孢子液，可以有效的增加植物的鮮重、葉面積等［9-11］。本研究中，綠色木霉對植物的促生作用效果明顯，而且經過TvGCN5過表達的木霉菌株Tv-1511-GCN5-OE處理后的植物促生效果比經過TvGCN5缺失的木霉菌株Tv-1511-△GCN5更明顯。木霉主要通過重寄生、競爭作用和分泌一些代謝產物等方法產生促生作用。研究表明，木霉屬可產生一些揮發性有機化合物，通過土壤空氣擴散抑制植物病原真菌的生長［33］或在植物中誘導防御反應［34-36］。木霉的促生作用還表現在木霉可以產生IAA。生長素可以促進根系的發育，促進側根生長。Contreras-Cornejo HA等通過氣相色譜-質譜在木霉培養液中檢測到吲哚類化合物吲哚-3-乙酸（IAA）、吲哚-3-乙醛（IAAld）和吲哚-3-乙醇（IEt），并用這3種物質處理擬南芥，揭示了木霉菌促進擬南芥生長的生長素運輸/響應基因的調控機制［37］。在本研究中，在TvGCN5過表達的木霉菌株發酵液中檢測到了更高濃度的IAA，表明TvGCN5在木霉菌產生生長素的過程中發揮著重要作用。

生物在面對生存環境無時無刻的變化時，組蛋白乙酰化是基因表達可逆和動態變化的重要調節方式。在一些非生物脅迫下，生物可以激活相應的反應基因來耐受不斷變化的生存環境。GCN5通過組蛋白乙酰化的方式激活了為菌株提供抵抗非生物脅迫能力的相關基因［38］。GCN5通過調節有關于細胞壁上的重要基因的表達來應對鹽脅迫［39］和熱脅迫［40］。在工農業生產中，高溫脅迫、鹽脅迫對于木霉的生長和生產有著重要的作用，嚴重影響著木霉的代謝活動［30］。本研究中，TvGCN5過表達的菌株在抵抗鹽脅迫和熱脅迫時，效果也更明顯。木霉屬是工業上重要的產纖維素酶的菌株。在近些年來，有關表觀遺傳修飾在真菌產酶方面的研究也在不斷深入。Xin等［28］通過敲除里氏木霉中的GCN5，發現里氏木霉產纖維素酶能力異常。在木霉中，cbh1和egl1是主要編碼纖維素酶的基因，Xyr1是主要的調控激活因子。周嬌嬌［41］采用siRNA技術在轉錄水平上特異性的抑制GCN5的表達發現，組蛋白乙?；浇档?，Xyr1、cbh1和egl1的表達量降低，木霉產纖維素酶的能力和纖維素酶活也降低。進一步的表明了組蛋白乙酰化酶在木霉產纖維素酶中發揮著重要作用。

4 結論

本研究開展了綠色木霉Tv-1511組蛋白乙?；妇幋a基因TvGCN5（NCBI accession number MZ338376）在木霉促生、抗逆、產酶等方面的功能研究。在過表達TvGCN5基因后，綠色木霉的生長及抗逆境脅迫能力顯著提升，其產纖維素酶的水平顯著提高，而且其植物促生和產IAA的能力明顯增強。表明TvGCN5基因及其參與的組蛋白乙?；揎椩诰G色木霉生長發育、次級代謝以及促生抗逆等方面起重要作用。