唐娟 黃碧來 高麗玲
子宮肌瘤是一種由子宮平滑肌細胞增生誘發的良性腫瘤[1,2],作為一種女性特有的疾病,子宮肌瘤發病率連年上升,患者大多臨床表現為腹部包塊、疼痛、子宮出血等,嚴重影響患者身體健康、生活質量[3,4]。據相關流行病學調查數據顯示,子宮肌瘤發病率與年齡具有一定相關性,絕經期女性發病率高達50%左右[5]。臨床常用的治療子宮肌瘤的手段包括手術治療、藥物治療等。部分子宮肌瘤患者因心理、生育需求等因素,不愿接受手術治療,但是目前臨床尚無一種特效的治療子宮肌瘤的藥物,子宮肌瘤發病機制、新治療靶點探究成為許多專家的新的研究方向[6,7]。本文研究中設計實驗,靶向調控子宮肌瘤細胞微小RNA-197(miR-197)表達,探究調控miR-197對子宮肌瘤細胞侵襲、遷移的影響及相關機制。
1.1 材料 研究細胞:子宮肌瘤細胞(中國醫學科學院)。主要試劑:小鼠抗兔miR-197、CD82抗體(BD公司);大鼠抗兔Wnt3a、β-catenin抗體(Selleck公司);兔抗小鼠MMP-2、MMP-9抗體(Hyclone公司);小鼠抗大鼠Beclin-1抗體(Gibco公司);大鼠抗小鼠LC3-Ⅱ抗體(Sigma公司);小鼠抗大鼠CyclinD1抗體(Invitrogen公司)。
1.2 方法
1.2.1 細胞培養:將子宮肌瘤細胞置于含10%胎牛血清的培養基中進行培養,將培養基置于37℃恒溫箱(5% CO2)中,培養至細胞密度達90%,胰蛋白酶消化傳代。
1.2.2 細胞分組干預:miR-197引物:5’-CAGUACUUUUGUGUAGUACAA-3’。Eco31Ⅰ酶切線性化質粒pGenesil-1,稀釋退火產物后相連接,使用大腸桿菌DH5α進行轉化,20℃環境下過夜,第2天選取單克隆菌落,接種后離心處理,室溫條件下搖晃均勻、過夜培養。將培養后的細胞分為對照組、下調miR-197組、上調miR-197組,重懸處理后3組細胞分別使用4 μg 0.9%氯化鈉溶液、miR-197-siRNA、pcDNA3.1-miR-197干預,電擊后常溫靜置2 h,將各組細胞加至6孔、96孔培養板中,培養箱內培養。
1.3 指標檢測
1.3.1 RT-PCR檢測miR-197表達:將TRIzol試劑添加至各組細胞中靜置待溶解,并添加三氯甲烷600 μl攪拌,呈乳白色后離心處理提取總RNA,檢測完整性之后合成cDNA,逆轉錄處理,使用熒光定量PCR試劑盒進行PCR擴增,2-△△Ct方法計算miR-197表達量數值。
1.3.2 細胞生物學行為檢測:MTT法檢測細胞增殖:取1×104細胞添加至96孔板,使用37℃培養箱(5% CO2)培養細胞72 h,在此過程中分別于24、48、72 h檢測細胞增殖抑制率。
1.3.2.1 TUNEL法檢測細胞凋亡:細胞添加20 μg/ml蛋白酶K培養,30 min后去除蛋白、清洗,添加100 μl平衡緩沖液10 min后添加TdT酶反應液100 μl,遮光培養1 h后添加100 μl SSC溶液靜置,0.5 h后清洗、DAPI復染,避光培養10 min后清洗、封片觀察。
1.3.2.2 Transwell小室實驗檢測細胞侵襲:濕化小室后添加200 μl細胞懸液,下室添加細胞培養液(含10%胎牛血清),置于培養箱中1 d,取出后PBS液清洗2次,置于4%多聚甲醛中染色0.5 h,顯微鏡下觀察。
1.3.2.3 細胞劃痕實驗檢測細胞遷移:細胞胰酶消化制備細胞懸液,接種于6孔板。使用10槍尖垂直于孔板底部畫直線,PBS緩沖液清洗3次。常溫培養24 h拍照計算劃痕。
1.3.3 Western blot法檢測CD82、細胞凋亡、自噬、侵襲相關蛋白表達:提取50 μg蛋白,煮沸至蛋白變性、SDS-PAGE凝膠電泳,根據蛋白分子切開凝膠轉至PVDF膜,Western封閉液室內封閉待測、內參蛋白90 min,1∶1 000添加待測蛋白抗體,1∶2 000添加內參抗體孵育1 d,取出后使用Western洗滌液清洗5次,1∶5 000加入山羊抗兔,Western洗滌液洗滌后顯色、曝光、成像,檢測CD82、RON、PI3K、Beclin-1、LC3-Ⅱ、MMP-2、MMP-9、CyclinD1相對表達量。

2.1 3組細胞miR-197、CD82表達比較 下調miR-197組細胞miR-197、CD82表達低于對照組,上調miR-197組細胞miR-197、CD82表達高于對照組、下調miR-197組,組間差異均有統計學意義(P<0.05)。見表1。

表1 3組細胞miR-197、CD82表達比較
2.2 3組細胞增殖抑制、凋亡能力比較 下調miR-197組細胞各時間點增殖抑制率、凋亡率低于對照組(P<0.05),上調miR-197組細胞各時間點增殖抑制率、凋亡率高于對照組、下調miR-197組(P<0.05)。見表2。

表2 3組細胞增殖抑制、凋亡能力比較
2.3 3組細胞侵襲、遷移能力比較 下調miR-197組細胞侵襲、遷移細胞數高于對照組,上調miR-197組細胞侵襲、遷移細胞數低于對照組、下調miR-197組,差異有統計學意義(P<0.05)。見表3。

表3 3組細胞侵襲、遷移能力比較 個,
2.4 3組細胞凋亡、自噬相關蛋白表達比較 下調miR-197組細胞RON相對表達量高于對照組,P13K、Beclin-1、LC3-Ⅱ相對表達量低于對照組;上調miR-197組細胞RON相對表達量低于對照組、下調miR-197組,P13K、Beclin-1、LC3-Ⅱ相對表達量高于對照組、下調miR-197組,差異有統計學意義(P<0.05)。見表4,圖1。

表4 3組細胞凋亡、自噬相關蛋白表達比較

圖1 3組細胞凋亡、自噬相關蛋白表達WB圖
2.5 3組細胞侵襲相關蛋白表達比較 下調miR-197組細胞MMP-2、MMP-9、CyclinD1相對表達量高于對照組,上調miR-197組細胞MMP-2、MMP-9、CyclinD1相對表達量低于對照組、下調miR-197組,差異有統計學意義(P<0.05)。見表5,圖2。

圖2 3組細胞MMP-2、MMP-9、CyclinD1表達WB圖

表5 3組細胞侵襲相關蛋白表達比較
臨床醫學尚未將子宮肌瘤發病機制研究透徹,許多專家學者通過分子生物學、基礎醫學等途徑探究子宮肌瘤發病機制,以期尋找新的治療靶點[8,9]。大量實驗研究表示,microRNA因其穩定性、特異性的特點在細胞增殖、凋亡、分化等過程中發揮重要作用[10,11]。miR-197為microRNA家族的主要組成成員,有研究表明,miR-197在乳腺癌、胃癌等惡性腫瘤組織及子宮肌瘤中表達異常[12],但是國內外關于調控miR-197表達對子宮肌瘤干預效果的研究還鮮有報道。本研究顯示,與子宮肌瘤細胞相比,上調miR-197表達的子宮肌瘤細胞CD82表達上調。CD82為TM4SF家族重要組成成員,其表達變化與細胞黏附、遷移、侵襲等能力具有密切聯系。本研究結果說明,miR-197、CD82在子宮肌瘤細胞中表達異常,上調miR-197表達能夠誘導子宮肌瘤細胞中CD82表達上調,從而影響子宮肌瘤細胞增殖、侵襲等生物學行為。
本研究結果顯示,子宮肌瘤細胞增殖抑制率、凋亡率較低,上調miR-197表達的子宮肌瘤細胞增殖抑制率、凋亡率較高,并且隨著時間推移呈現不斷上升趨勢。有學者在研究中表示,子宮肌瘤的發展演進過程伴隨著子宮肌瘤組織細胞增殖、凋亡能力的不斷變化[13]。有研究表明,抑制子宮肌瘤細胞增殖,促進子宮肌瘤細胞凋亡是抑制腫瘤細胞擴散、治療子宮肌瘤的關鍵[14,15]。本研究結果說明,上調miR-197表達能夠起到抑制子宮肌瘤細胞增殖、促進細胞凋亡的作用,抑制子宮肌瘤細胞的不斷擴散,出現這一研究結果的原因可能是上調miR-197表達使細胞凋亡通路蛋白表達受到調控。
本研究結果顯示,上調miR-197表達的子宮肌瘤細胞中,RON表達下調,P13K表達上調,Beclin-1、LC3-Ⅱ表達上調。有研究表示,RON/PI3K通路蛋白表達變化與腫瘤組織細胞增殖、凋亡、侵襲等密切相關,參與膀胱癌、前列腺癌等多種惡性腫瘤的發生發展,但是關于RON/PI3K通路蛋白表達與子宮肌瘤關系的研究還鮮有報道[16]。Beclin-1、LC3-Ⅱ是常用的評價細胞自噬情況的指標,二者表達變化與細胞自噬密切相關[17,18]。本研究結果說明,上調miR-197表達能夠調控RON/PI3K通路蛋白及自噬相關蛋白Beclin-1、LC3-Ⅱ表達,從而起到促進子宮肌瘤細胞凋亡、自噬,抑制子宮肌瘤細胞增殖的作用,影響子宮肌瘤細胞的不斷發展。
本研究結果顯示,上調miR-197表達的子宮肌瘤細胞侵襲、遷移細胞數較少,MMP-2、MMP-9、CyclinD1相對表達量較低。大量臨床研究表示,腫瘤組織的不斷發展演進與細胞侵襲、遷移能力變化密切相關,抑制細胞侵襲、遷移能力是抑制子宮肌瘤細胞不斷擴散的關鍵[19,20]。MMP-2、MMP-9、CyclinD1在腫瘤細胞分化、侵襲、遷移等行為中發揮重要的作用[21,22]。本研究結果說明,上調miR-197表達能夠抑制子宮肌瘤細胞侵襲、遷移能力,從而抑制子宮肌瘤細胞的不斷發展,其機制可能是上調miR-197表達能夠調控MMP-2、MMP-9、CyclinD1,從而起到抑制子宮肌瘤細胞侵襲、遷移的作用。
綜上所述,上調子宮肌瘤細胞miR-197表達,CD82表達也受到調控,細胞凋亡率上升,增殖、侵襲、遷移能力受到抑制,其機制可能是上調miR-197能夠調控RON/PI3K通路及細胞自噬、侵襲相關蛋白表達,從而影響子宮肌瘤細胞生物學行為,因此miR-197可作為子宮肌瘤新的治療靶點進行深入研究。