牛永莉,王艷,孔麗,謝廣妹
(1.酒泉市人民醫院 生殖醫學科,甘肅 酒泉 735000;2.甘肅省婦幼保健院 生殖中心,甘肅 蘭州 730050)
多囊卵巢綜合征(polycystic ovarian syndrome,PCOS)為育齡女性常見病,發病率約8%[1]。PCOS 是一種生殖功能障礙與糖代謝異常并存的內分泌紊亂綜合征,目前認為與雄激素及促黃體生成素異常、胰島素抵抗等多種因素有關[2]。PCOS 屬中醫“閉經”“不孕”范疇,以腎功能失調為本,痰濁、血淤為標,中醫治療宜補腎為主,祛瘀為輔[3]。以往研究表明[4],中醫治療PCOS 費用低廉、不良反應少且無絕對用藥禁忌,在PCOS 的臨床治療中受到重視。研究認為[5],PCOS 的發生與腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α, TNF-α)介導的核因子κB(nuclear factor κB, NF-κB)/核因子IκB(inhibitor of NF-κB,IκBα)信號通路激活有關。其中,NF-κB 有多項調控功能,調控TNF-α/NF-κB/IκBα 信號通路可成為PCOS 防治的新靶點,但目前相關的研究較少。本研究采用自擬補腎祛瘀方治療PCOS 并分析其對TNF-α/NF-κB/IκBα 信號通路的影響,以期明確其治療PCOS 的可能作用機制,現報道如下。
1.1.1 實驗動物80 只SPF 級SD 雌性大鼠,6 周齡,體重(180±10)g[由中國科學院上海藥物研究所提供,實驗動物生產許可證號:SCXK(滬)2020-0005]。喂養條件:溫度20℃、濕度50%,每日喂新鮮水及飼料。
1.1.2 實驗試劑和藥物TNF-α 抗體、NF-κB(P65)抗體及IκBα 抗體(英國Abcam 公司),鼠抗人β-actin(生工生物工程上海股份有限公司),羊抗鼠二抗、DAB 顯色試劑盒(武漢博士德生物工程有限公司),SYBP?Premix Ex TaqTM(日本TaKaRa 公司),PCR 引物(寶生物工程大連有限公司),TRIzol(美國英杰生命技術有限公司),TBST 試劑(上海科拉曼試劑有限公司)。補腎化瘀方(酒泉市人民醫院中醫藥劑室配置),達英-35(拜耳醫藥保健有限公司),來曲唑(大連美侖生物技術有限公司),羧甲基纖維素鈉、水合氯醛、0.9%氯化鈉溶液(北京博爾邁生物技術有限公司)。
1.1.3 實驗儀器臺式高速離心機(美國Sigma 公司),電泳儀(美國BIO-RAD 公司),實時熒光定量PCR 儀、PCR 擴增儀、恒溫箱(美國Thermo 公司),顯微鏡(日本奧林巴斯株式會社),酶標儀(美國Benchmark 公司),血糖儀(德國羅氏診斷有限公司)。
1.2.1 模型復制80 只大鼠隨機分為對照組20 只、模型復制組60 只。采用來曲唑法復制模型:來曲唑灌胃1 mg/(kg·d),連續28 d,模型復制組給予高脂高糖飼料和9%葡萄糖水。模型復制成功后分為模型組、西藥組及聯合組,每組20 只。
1.2.2 藥物干預對照組和模型組根據大鼠體重給予1 mL/(kg·d)氯化鈉溶液灌胃,參考《中藥藥理研究方法學》[6]換算用藥劑量。自擬補腎祛瘀方組成:女貞子、墨旱蓮各15 g,菟絲子、山茱萸、丹參、川芎、赤芍、桃仁、紅花各10 g,由醫院中醫藥劑室加水煎煮成湯劑,湯劑終濃度為1 g/mL。聯合組每天根據體重給予補腎祛瘀湯劑11 g/kg 和4.5 mg/kg 二甲雙胍灌胃,西藥組僅給予4.5 mg/kg 二甲雙胍灌胃,聯合組與西藥組均灌胃28 d。
1.2.3 大鼠體重檢測藥物干預前及藥物干預28 d 后稱量各組大鼠體重,比較藥物干預前后大鼠體重變化。
1.2.4 大鼠性激素水平檢測大鼠于16 周齡、動情間期當晚20 點開始禁食,至次日早晨8 點空腹取腹主動脈血5~8 mL,3 500 r/min離心15 min,取上清液,置入-20℃冰箱冷凍保存待測。參照放射免疫法試劑盒說明書測定睪酮(T)、促卵泡激素(FSH)、黃體生成素(LH)的水平。抽血稱重后采用脊椎脫臼法處死所有大鼠,取大鼠卵巢組織待測。
1.2.5 Western blotting檢測大鼠卵巢組織中TNF-α、NF-κB、IκBα 蛋白相對表達量剪碎30 mg 卵巢組織,加1 mL PBS,10 000 r/min、4℃下離心1 min,洗凈組織上的血污及黏液等。加300 μL 蛋白裂解液,研磨后置于冰上20 min 至細胞裂解。12 000 r/min、4℃下離心15 min,所得上清液即為全蛋白提取液,置于-80℃冷凍保存備用。提取蛋白液,電泳、轉膜、封閉,取出PVDF 膜放入TBST 中漂洗3 次,分別加入TNF-α 抗體、NF-κB(P65)抗體、IκBα 抗體及鼠抗人β-actin,震蕩過夜。取出膜,放入TBST 中漂洗3 次后置于二抗中震蕩2 h。放入TBST 中漂洗3 次,滴加顯色液,緊密結合膜蛋白面與膠片,強曝光5 min 左右,用Image Quant 350 成像系統掃描并保存圖像,分析TNF-α、NF-κB、IκBα 蛋白相對表達量。
1.2.6 實時熒光定量聚合酶鏈反應(qRT-PCR)檢測大鼠卵巢組織中TNF-α、NF-κB、IκBα mRNA 相對表達量洗凈研缽等器皿,用雙蒸水和焦碳酸二乙酯水分別沖洗,于180℃下烘烤4 h 去除RNA 酶。切取50~100 mg 組織在研缽中研磨成粉,將粉末移至無RNA 酶的EP 管中,加1 mL TRIzol 后混勻。靜置5 min 后加入氯仿200 μL,震蕩15 s 混勻,靜置5 min,4℃下離心15 min。待EP 管中液體分層后,用100 μL 移液槍將上層液體吸到新的無RNA酶的EP 管中,并加入等體積異丙醇,混勻后靜置10 min 并再次離心10 min。EP 管底部白色物質即為RNA,倒掉管中液體后加入1 mL 75%乙醇,顛倒EP 管數次,離心5 min。倒掉上清液,用移液槍吸凈管底液體,靜置5 min 干燥。加入30~50 μL DEPC 水并用移液槍吹打使RNA 充分溶解。取2 μL總RNA,凝膠電泳檢測完整性。各組大鼠總RNA 的電泳圖中可見明顯2 個條帶,根據遷移率分別是18 S 和28 S,且電泳圖中無明顯雜帶和向前拖尾的現象,說明RNA 提取成功,完整性較高,純度滿足后續PCR 擴增要求。參照TaKaRa試劑盒說明書配制逆轉錄體系20 μL(5×PrimeScriptTMBuffer 4 μL、Total RNA 4 μL、RNase Free dH2O 12 μL),37℃15 min,85℃5 s,4℃30 min 獲取cDNA。qRT-PCR 反應條件:95℃預變性30 s,95℃變性5 s,95℃退火5 s、60℃延伸30 s,40 個循環,循環結束后95℃延伸15 s。引物序列:①TNF-α:正向5'-TCTCTTCAAGGGACAA GGCT-3',反 向5'-TCCTGGTATGAAATGGCAAA-3',引物長度78 bp;②NF-κB:正向5'-GCCTCATCCAC ATGAACTTG-3',反向5'-CGCTTCTTCACACACTGG AT-3',引物長度120 bp;③IκBα:正向5'-CTGTACG CCCCAGCATCT-3',反向5'-GCACCCAAAGTCACCAA G-3',引物長度144 bp;④β-actin:正向5'-CGGTCA GGTCATCACTATCG-3',反向5'-TTCCATACCCAGGA AGGAAG-3',引物長度79 bp。以β-actin 為內參,計算各組ΔΔCt,ΔCt=Ct目的基因-Ct內參基因,ΔΔCt=ΔCt實驗組-ΔCt對照組。目的基因相對表達量用2-ΔΔCt表示。
1.2.7 免疫組織化學檢測大鼠卵巢組織中TNF-α、NF-κB、IκBα 蛋白陽性表達卵巢組織常規固定、石蠟包埋、切片(厚度4 μm),脫蠟止水,5%的牛血清白蛋白封閉10 min。滴加一抗后4℃下過夜;滴加二抗后37℃下孵育20 min。蘇木精復染2 min,脫水后常規透明、封片,顯微鏡下拍照,取5 個不同高倍鏡視野,IPP 6.0 軟件分析圖像,記錄陽性細胞平均光密度(OD)值,取3 次平均值作為最終結果,OD 值越高表示陽性表達率越高。陽性判定:TNF-α、NF-κB、IκBα 以細胞核中可見棕黃或棕褐色顆粒為陽性表達。
數據分析采用SPSS 19.0 統計軟件,計量資料以均數±標準差(±s)表示,比較采用方差分析,進一步兩兩比較采取LSD-t檢驗。P<0.05 為差異有統計學意義。
各組大鼠藥物干預前體重比較,差異無統計學意義(P>0.05)。各組大鼠藥物干預28 d 后體重比較,差異有統計學意義(P<0.05);進一步兩兩比較,模型組的體重高于另外3 組(P<0.05),西藥組高于聯合組和對照組(P<0.05),聯合組高于對照組(P<0.05)。見表1。
表1 各組大鼠藥物干預前及藥物干預28 d后的體重比較(n=20,g,±s)

表1 各組大鼠藥物干預前及藥物干預28 d后的體重比較(n=20,g,±s)
注:①與模型組比較,P <0.05;②與西藥組比較,P <0.05;③與對照組比較,P <0.05。
藥物干預28 d后210.78±10.33①②231.16±15.17 225.65±13.02①219.32±11.62①②③5.150 0.003組別對照組模型組西藥組聯合組F 值P 值藥物干預前190.54±8.11 189.18±9.13 188.69±10.14 190.88±10.52 0.245 0.865
各組大鼠血清T、FSH、LH 水平比較,差異有統計學意義(P<0.05);進一步兩兩比較,模型組血清T、FSH、LH 水平高于另外3 組(P<0.05),西藥組高于聯合組與對照組(P<0.05),聯合組高于對照組(P<0.05)。見表2。
表2 各組大鼠血清性激素水平比較 (n=20,±s)

表2 各組大鼠血清性激素水平比較 (n=20,±s)
注:①與模型組比較,P <0.05;②與西藥組比較,P <0.05;③與對照組比較,P <0.05。
LH/(mIU/mL)34.51±6.78①②47.15±11.63 43.12±10.97①39.22±7.56①②③6.512 0.001組別對照組模型組西藥組聯合組F 值P 值T/(ng/dL)11.91±2.26①②17.5±5.76 15.87±4.98①13.66±4.21①②③5.999 0.001 FSH/(mIU/mL)9.94±2.82①②14.79±4.63 13.08±3.99①11.71±3.41①②③6.343 0.001
各組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB、IκBα 蛋白相對表達量比較,差異有統計學意義(P<0.05)。進一步兩兩比較,模型組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB 蛋白相對表達量高于另外3 組,IκBα 蛋白相對表達量低于另外3 組(P<0.05);西藥組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB 蛋白相對表達量高于聯合組與對照組(P<0.05),同時聯合組高于對照組(P<0.05);西藥組大鼠卵巢組織IκBα 蛋白相對表達量低于聯合組與對照組(P<0.05),同時聯合組低于對照組(P<0.05)。見圖1 和表3。
表3 各組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB、IκBα蛋白相對表達量的比較 (n=20,±s)

表3 各組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB、IκBα蛋白相對表達量的比較 (n=20,±s)
注:①與模型組比較,P <0.05;②與西藥組比較,P <0.05;③與對照組比較,P <0.05。
IκBα蛋白相對表達量0.71±0.22①②0.46±0.12 0.55±0.16①0.61±0.20①②③6.495 0.001組別對照組模型組西藥組聯合組F 值P 值TNF-α蛋白相對表達量0.38±0.07①②1.45±0.21 1.13±0.19①0.67±0.14①②③6.416 0.001 NF-κB蛋白相對表達量0.53±0.18①②0.81±0.26 0.73±0.24①0.64±0.20①②③5.867 0.001

圖1 各組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB、IκBα蛋白的表達
各組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB、IκBα mRNA 相對表達量比較,差異有統計學意義(P<0.05)。進一步兩兩比較,模型組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB mRNA 相對表達量高于另外3 組,IκBα mRNA 相對表達量低于另外3 組(P<0.05);西藥組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB mRNA 相對表達量高于聯合組與對照組(P<0.05),聯合組高于對照組(P<0.05);西藥組大鼠卵巢組織IκBα mRNA 相對表達量低于聯合組與對照組(P<0.05),聯合組低于對照組(P<0.05)。見表4。
表4 各組大鼠TNF-α、NF-κB、IκBα mRNA相對表達量比較 (n=20,±s)

表4 各組大鼠TNF-α、NF-κB、IκBα mRNA相對表達量比較 (n=20,±s)
注:①與模型組比較,P <0.05;②與西藥組比較,P <0.05;③與對照組比較,P <0.05。
TNF-α mRNA 0.67±0.21①②1.01±0.34 0.90±0.29①0.76±0.24①②③5.990 0.001組別對照組模型組西藥組聯合組F 值P 值NF-κB mRNA 0.53±0.18①②0.83±0.24 0.72±0.20①0.61±0.19①②③6.498 0.001 IκBα mRNA 0.58±0.20①②0.39±0.11 0.44±0.13①0.52±0.15①②③6.750 0.001
各組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB、IκBα 的OD 值比較,差異有統計學意義(P<0.05)。進一步兩兩比較,模型組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB 的OD 值高于另外3 組,IκBα 的OD 值低于另外3 組(P<0.05);西藥組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB 的OD 值高于聯合組與對照組(P<0.05),聯合組高于對照組(P<0.05);西藥組大鼠卵巢組織IκBα 的OD 值低于聯合組與對照組(P<0.05),聯合組低于對照組(P<0.05)(見表5)。各組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB、IκBα 陽性表達見圖3~5。
表5 各組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB、IκBα的OD值比較 (n=20,±s)

表5 各組大鼠卵巢組織TNF-α、NF-κB、IκBα的OD值比較 (n=20,±s)
注:①與模型組比較,P <0.05;②與西藥組比較,P <0.05;③與對照組比較,P <0.05。
IκBα 0.78±0.24①②0.44±0.16 0.59±0.17①0.67±0.19①②③6.302 0.001組別對照組模型組西藥組聯合組F值P值TNF-α 0.40±0.14①②0.76±0.23 0.65±0.21①0.52±0.16①②③11.165 0.001 NF-κB 0.49±0.15①②0.74±0.23 0.66±0.21①0.58±0.17①②③6.195 0.001

圖3 各組大鼠卵巢組織TNF-α蛋白陽性表達 (免疫組織化學×200)

圖4 各組大鼠卵巢組織NF-κB蛋白陽性表達 (免疫組織化學×200)

圖5 各組大鼠卵巢組織IκBα蛋白陽性表達 (免疫組織化學×200)
研究發現[7],PCOS 易增加子宮內膜癌的發病風險,積極治療PCOS 對女性月經失調、不孕癥及各種遠期并發癥有較好的預防作用。由于對PCOS發病機制認識的局限性,目前國內外尚無統一的規范治療方案,臨床治療多以促排卵等對癥處理為主,但存在停藥復發或治療無效等問題。西藥基礎上聯合中醫藥治療PCOS 具有不良反應少,且能有效改善患者癥狀,受到臨床歡迎。
本研究通過來曲唑法復制大鼠PCOS 模型。來曲唑可促進促性腺激素持續分泌,刺激LH、FSH持續合成,使LH、FSH 無法達到排卵高峰,誘發排卵功能障礙,造成卵巢多囊樣改變[8]。本研究結果顯示,藥物干預后,模型組大鼠體重增加最為顯著,高于另外3 組;西藥組高于聯合組和對照組,聯合組高于對照組。此外,模型組血清T、FSH、LH 高于對照組;且與模型組相比,血清T、FSH、LH 明顯降低,其中聯合組更低,但仍高于對照組。這提示PCOS 會造成血清T、FSH、LH 水平的升高,西藥治療可促進血清T、FSH、LH 降低,而聯合自擬補腎化瘀方治療后,血清T、FSH、LH 會進一步降低。中醫認為[9],PCOS 病機主要為腎虛、瘀血阻致胞宮,兩者互為因果,形成腎虛血瘀癥,補腎化瘀是PCOS 的主要治療思路。本研究所用自擬補腎化瘀方中,菟絲子、山茱萸補腎益精為君藥,女貞子、墨旱蓮共用為臣藥,可養肝腎、益精血;丹參、赤芍、桃仁活血養血為佐藥,補益而不留瘀;川芎、紅花解郁通達、活血祛瘀,為使藥。諸藥合用精充血足、氣血暢通則經自調,共奏補腎化瘀、活血調經之功[10-11]。現代藥理學研究表明[12-13],菟絲子可以TNF-α 為靶點調控TNF-α/NF-κB,抑制PCOS 的炎癥反應,從而治療PCOS;墨旱蓮具有抗炎、調節免疫等功效,可通過對卵巢炎癥的抑制作用改善卵巢功能[14-15];山茱萸的抗炎抑菌作用可有效改善PCOS 大鼠的胰島素抵抗,從而減輕炎癥及氧化應激,降低血清TNF-α 水平,促進卵巢功能的恢復[16];丹參可通過對外周血單個核細胞NF-κB 活化及TNF-α 表達的影響來調控炎癥反應,且與NF-κB/IκBα 炎癥反應通路之間存在量效時效關系[17-18]。上述研究提示自擬補腎祛瘀方可能是通過對TNF-α/NF-κB/IκBα 炎癥通路的調控來改善卵巢循環與病理狀態,達到治療目的。
為探討自擬補腎祛瘀方治療PCOS 的機制,本研究檢測大鼠卵巢組織的TNF-α、NF-κB、IκBα表達,結果顯示模型組大鼠卵巢組織的TNF-α、NF-κB 蛋白表達,mRNA 表達,OD 值均高于對照組,IκBα 蛋白表達,mRNA 表達,OD 值均低于對照組。與模型組相比,西藥組和聯合組卵巢組織TNF-α、NF-κB 蛋白表達,mRNA 表達,OD 值均降低,其中聯合組更低,但仍高于對照組;與模型組相比,西藥組和聯合組卵巢組織IκBα 蛋白表達,mRNA 表達,OD 值均升高,其中聯合組更高,但仍低于對照組。上述結果表明自擬補腎化瘀方治療PCOS 可上調卵巢組織TNF-α、NF-κB 表達,下調IκBα 表達,PCOS 發病與NF-κB/IκBα 信號通路有關。國外研究表明[19],細胞在正常生理情況下,NF-κB 與抑制蛋白IκBα 結合成無活性的三聚體并存在于細胞質中;TNF-α 升高會刺激IκBα 磷酸化后與NF-κB 解離,使NF-κB 進入細胞核并轉錄,誘發PCOS[20]。也有研究發現[21],炎癥因子IκBα 是NF-κB/IκBα 信號通路的關鍵下游因子,抑制IκBα可阻斷該通路,改善PCOS。自擬補腎化瘀方可補益肝腎,活血化瘀,切中病機,并通過影響TNF-α調控的IκBα/NF-κB 信號通路來改善卵巢功能,且可對TNF-α、IκBα、NF-κB 多個靶點進行干預,最終促進性激素水平的恢復。本研究不足之處:PCOS 的發病過程復雜,自擬補腎祛瘀方治療PCOS可能不只對單一信號通路的調控發揮治療作用,其可能涉及的其他信號通路及靶點仍有待進一步探究。
綜上所述,自擬補腎化瘀方治療PCOS 可有效促進LH、FSH、T 等的恢復,且這一作用考慮與TNF-α 介導的NF-κB/IκBα 信號通路的調控有關。