段敏杰 李怡斐 楊小苗 王春萍 黃啟中 黃任中 張世才
(1.重慶市農業科學院蔬菜花卉研究所,重慶 401329;2.重慶市農業科學院生物技術研究所,重慶 401329)
DnaJ 蛋白是一類分子量為41 kD 的熱激蛋白(Hsp40),最早在大腸桿菌(Escherichia coli)中發現,又稱為J-蛋白[1]。J-蛋白通常包含4 個功能結構域:N 末端J-結構域、G/F 結構域、鋅指結構域(CxxCxGxG)及羧基末端區[2-3]。其中J-結構域具有極其保守的組氨酸/脯氨酸/天冬氨酸(His/Pro/Asp,HPD)三肽,是J-蛋白最核心特征[4]。J-蛋白通常作為伴侶蛋白,與熱激蛋白HSP70 結合,參與蛋白質折疊、展開、組裝和降解,并維持蛋白質穩定[5]。然而越來越多的研究發現DanJ 蛋白的一些活性并不依賴于完整的J-結構域,如當HPD 三肽發生突變甚至缺失的情況下,DanJ 蛋白仍能保持其活性[6-7],這類蛋白被劃分至J-Like 蛋白。依據擬南芥(Arabidopsis thaliana)的分類方式[8],該類蛋白可分為三類:具有類似J-結構域的DNAJD 蛋白,具有類似鋅指結構域和C 末端結構域的DNAJF 蛋白,具有位于羧基端重復DnaJ CxxCxGxG 或GRXLike(GRL)CxxCx7CxxC 鋅指結構域的DnaJ-like 鋅指蛋白(DNAJE)[8-12],DNAJE 蛋白是目前研究最多、最為復雜的一類J-Like 蛋白。
已有研究表明,DNAJE 蛋白在植物光合復合體組裝中發揮重要作用,而光合復合體組裝對環境干旱、溫度、光照等的改變非常敏感,每一種變化都會引起植物氧化還原反應的失衡,進而影響植物抗逆性[13]。最早在玉米(Zea maysL.)中鑒定到一個DNAJE基因BSD2[14],之后在萊茵衣藻(Chlamydomonas reinhardtii)中鑒定到同源BSD2基因[15],該基因能夠通過轉錄后調控rbcl 蛋白,從而促進葉綠體功能的正常發揮。同時,在擬南芥[16-20]、百脈根(Lotus corniculatusL.)[20]等中也鑒定到CYO1、SCO2、ANGULATA7等DNAJE基因,其均與葉綠體發育相關,在維持氧化還原反應和光合作用平衡中發揮作用。Fristedt 等[21]和Lu等[22]研究也發現,DNAJE 蛋白在光系統Ⅱ的維護和光系統Ⅰ積累中發揮特殊作用。目前,所有分離鑒定已知功能的DNAJE 蛋白中,僅THRUMIN1 屬于GRL CxxCx7CxxC 型,其他均為DnaJ CxxCxGxG 型鋅指蛋白[23]。
植物生長發育過程中會遭受諸多不利環境因子脅迫,如高溫、低溫、干旱、鹽等,導致正常生長發育受阻,從而影響產量和品質[24]。辣椒(Capsicum annuum)為一年生或多年生茄科(Solanaceae)作物,是全球種植面積最大的蔬菜作物和消費量最大的辛辣調味品[25]。辣椒喜溫不耐熱,最適生長溫度為22-28℃,溫度超過32℃,會產生不可逆熱害癥狀,導致其生長發育不良,造成減產,嚴重制約辣椒產業發展[24]。目前在辣椒中還未見DNAJE基因家族的相關報道,辣椒全基因組測序數據[26]的公布為辣椒DNAJE基因家族的鑒定和分析提供了條件。
本研究對辣椒DNAJE基因家族進行鑒定,系統分析基因結構特點、進化關系、啟動子順式作用元件、共線性關系及不同組織器官的表達模式等,并研究其在高溫脅迫下的生理生化和基因表達特征,為進一步探究辣椒DNAJE基因響應高溫脅迫機制奠定理論基礎。
試驗材料為課題組耐熱育種骨干親本862。挑選籽粒飽滿一致的辣椒種子,播種于10 cm ×10 cm營養缽中,溫室育苗。待幼苗長至5-6 片真葉時轉入光照培養箱適應性生長,晝夜溫度/光周期設定為26℃/12 h 和22℃/12 h,光照強度4 000 lx,每日定時澆水,控制空氣相對濕度為70%。培養3 d 后調整培養箱晝夜溫度至40℃/30℃,進行高溫脅迫處理,對照組為26℃/22℃,光周期、光照強度、空氣相對濕度保持不變。分別于處理0、1、3、5、7、10 d 時取葉片經液氮速凍后,-80℃保存備用。每次取樣隨機選擇10 株,重復3 次。
1.2.1 辣椒DNAJE基因家族鑒定和特征分析 從國家基因庫核酸序列歸檔系統(CNSA)(https://db.cngb.org/cnsa/)和茄科基因組數據庫(https://www.sgn.cornell.edu/) 分別下載辣椒Zunla 1 和番茄(Solanum lycopersicumL.)全基因組數據,構建本地蛋白數據庫;從Pfam 數據庫(https://pfam.xfam.org/)獲得鋅指(zinc finger)結構域DnaJ_CxxCxGxG HMM 模型文件PF00684,通過本地Hmmsearch 命令初步篩選獲得DNAJE基因家族成員;參考已發表文獻[8,10]從擬南芥數據庫(https://www.arabidopsis.org/)獲得33 個擬南芥DNAJE基因家族成員蛋白序列,與辣椒和番茄蛋白序列進行本地Blastp 比對,收集E-value<1e-5 輸出基因,剔除重復序列后,與HMM 檢索結果合并;將合并的候選序列上傳至Pfam、NCBI CDD(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/cdd/wrpsb.cgi)及SMART(http://smart.emblheidelberg.de/),基于DNAJE 結構域進一步比對篩選。利用ExPASy(https://web.expasy.org/compute_pi/)計算辣椒DNAJE 蛋白分子量和等電點,利用WoLF PSORT(https://wolfpsort.hgc.jp/)在線分析工具進行DNAJE 蛋白的亞細胞定位預測;利用在線軟件SOPMA(http://npsa-pbil.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sopma.html)預測分析DNAJE 蛋白二級結構。
1.2.2 辣椒DNAJE基因家族染色體定位和比較進化關系分析 基于獲取的辣椒基因組注釋信息文件,利用TBtools[27]可視化工具構建辣椒染色體定位圖;利用MEGA 5.0 軟件的鄰近法(neighbour-joining,NJ)構建辣椒、番茄和擬南芥DNAJE 進化樹,設置Bootstrap 值為1 000,置換模型為P-distance,其他為默認參數;利用在線軟件iTOL(http://itol.embl.de/)對進化樹進行美化。
1.2.3 辣椒DNAJE基因家族保守基序、基因結構、啟動子作用元件分析 利用MEME(https://memesuite.org/meme/tools/meme) 在線軟件預測分析DNAJE 蛋白保守motif,motif 最大發現數設定為5個,其他參數默認。利用TBtools 軟件分析DNAJE基因結構,利用PlantCARE(http://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/)在線軟件分析基因啟動子順式作用元件,利用MEGA 5.0 構建辣椒DNAJE基因家族系統進化樹,方法參數同上,利用TBtools 軟件對上述結果進行可視化。
1.2.4 辣椒和擬南芥DNAJE基因家族共線性及RNA-seq 分析 利用TBtools 軟件中Fasta stats 和Table Row 功能構建辣椒和擬南芥染色體骨架、DNAJE基因位置,再利用其One step MCscanX(Super Fast)和Advanced circos 插件對辣椒和擬南芥進行共線性分析;從NCBI 數據庫(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE45037) 下載葉、花、莖、根及不同時期果實的RNA-seq 數據,提取DNAJE基因家族成員TPM 值并繪制基因表達熱圖。
1.2.5 辣椒高溫脅迫響應相關基因RT-qPCR 分析 利用FastPure Universal Plant Total RNA Isolation Kit(Vazyme)提取樣品總RNA,通過瓊脂糖凝膠電泳分析RNA 質量,NanoDrop 2000 超微量分光光度計檢測RNA 濃度,利用Hiscript Ⅲ 1st strand cDNA Synthesis Kit(Vazyme)試劑反轉錄合成cDNA;利用Primer 5.0 設計特異性引物,并在NCBI Primer-BLAST(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primerblast/)進行特異性驗證,以UBI3為內參基因(表1)。參照ChamQ universal SYBR qPCR Master Mix(Vazyme)試劑操作說明書進行RT-qPCR 分析。采用2-△△Ct算法計算基因相對表達量,使用EXCEL、Origin 2021、SPSS 18.0 軟件進行數據分析及作圖。

表1 實時熒光定量PCR 引物Table 1 Primers used for quantitative real-time PCR
1.2.6 高溫脅迫下辣椒幼苗的生理生化響應 超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、過氧化物酶(peroxidase,POD)和過氧化氫酶(catalase,CAT)活性及丙二醛(malondialdehyde,MDA)、過氧化氫(hydrogen peroxide,H2O2)含量測定參照試劑盒說明書(蘇州科銘生物技術有限公司)進行操作,采用Thermo MULTISKAN GO 型酶標儀分別測定不同波長下吸光度,計算酶活性或含量,利用EXCEL、Origin 2021 進行數據分析及作圖。
本研究在Zunla 1 和番茄基因組中分別鑒定獲得28 個和26 個DNAJE基因家族成員,依據其在染色體上的位置將辣椒DNAJE基因命名為CaDNAJE1-CaDNAJE28。對所有CaDNAJE 蛋白理化性質分析結果(附表1)顯示,CaDNAJE基因序列開放閱讀框(ORF)長度范圍為297-1 410 bp,變化范圍較大。CaDNAJE 蛋白氨基酸序列長度在99(CaDNAJE23)-470(CaDNAJE18)個之間,分子量變化范圍為10.05(CaDNAJE23)-52.26(CaDNAJE18)kD,理論等電點(pI)為4.75(CaDNAJE7)-9.64(CaDNAJE20)。亞細胞定位預測發現,CaDNAJE 蛋白主要定位在葉綠體、細胞核及細胞質。二級結構分析表明(附表2),28 個CaDNAJE 蛋白二級結構完整,以無規卷曲(random coil)和α-螺旋(α-helix)為主。
28 個CaDNAJE基因不均勻分布在辣椒除7 號和8 號染色體之外的10 條染色體上,另外有3 個基因未錨定在染色體上(圖1)。其中,1 號和9 號染色體上分布最多,均有5 個;3 號和11 號染色體上各包含3 個;2 號、6 號和10 號染色體上各有2 個;而4 號、5 號和12 號染色體上只有1 個成員。

圖1 辣椒DNAJE 基因家族成員染色體定位Fig.1 Chromosomal location of DNAJE gene family members in pepper(Capsicum annuum)
為探討辣椒、番茄和擬南芥DNAJE基因家族成員之間的進化關系,構建了28 個辣椒、26 個番茄和33 個擬南芥DNAJE 蛋白的系統進化樹(圖2)。進化結果分為2 個亞族,Group Ⅰ和 Group Ⅱ。Group Ⅰ 有16 個辣椒成員、15 個番茄成員和20 個擬南芥成員,屬于DNAJ CxxCxGxG 型DNAJE 鋅指蛋白。Group Ⅱ 中有12 個辣椒成員、11 個番茄成員和13 個擬南芥成員,屬于GRL CxxCx7CxxC 型DNAJE 鋅指蛋白。

圖2 辣椒、擬南芥和番茄DNAJE 基因家族成員進化樹Fig.2 Phylogenetic tree of DNAJE gene family members in pepper,Arabidopsis and tomato(Solanum lycopersicum)
基于MEME 在線分析軟件,在CaDNAJE 蛋白中分析了5 個保守motif(圖3-B),基序長度介于15-45 個氨基酸之間(表2)。系統進化樹分析結果顯示( 圖3-A),Group Ⅰ 中CaDNAJE13 和CaDNAJE25 分別缺失motif 2 和motif 5 基序,其他10 個成員均包含motif 1-motif 5 保守基序;Group Ⅱ所有16 個成員均缺失motif 2、motif 3 和motif 5,只包含motif 1 和motif 4 保守基序。

表2 辣椒DNAJE 蛋白氨基酸保守基序Table 2 Conserved motif of the DNAJE proteins in pepper
基因結構分析表明(圖3-C),同一亞族內成員具有相似的基因結構,但不同亞家族間基因結構和內含子數目存在明顯差異。Group Ⅰ 中除CaDNAJE2和CaDNAJE26外,均只包含1 個外顯子,大部分成員無內含子;Group Ⅱ 中成員具有0-11 個內含子,其中具有4 個以上內含子的占比為56%,CaDNAJE19和CaDNAJE16內含子數目最多,CaDNAJE23和CaDNAJE20只包含1 個內含子,CaDNAJE27無內含子。
利用在線工具對該家族基因啟動子順式作用元件進行預測,結果如圖3-D 所示。多個CaDNAJE基因啟動子區富集了光響應(GATA-motif、G-box)、MeJA 響應(TGACG-motif)、脫落酸響應(ABRE)、水楊酸響應(TCA-element)、MYB 結合位點參與干旱誘導(MBS)、低溫響應(LTR)、防御與脅迫響應(TC-rich repeat)、晝夜節律調節(circadian)等順式作用元件。其中,TGACG-motif 和ABRE 較多,而MSA-like 和TGA-element 分別僅在CaDNAJE15和CaDNAJE20中被檢測到。

圖3 辣椒DNAJE 基因家族保守基序、基因結構和順式作用元件分析Fig.3 Analysis of conserved motifs,gene structure and cis-acting elements of DNAJE gene family in pepper
共線性分析結果(圖4)顯示,辣椒和擬南芥之間有10 對DNAJE共線性基因,辣椒中9 個對應擬南芥中10 個DNAJE基因。分別為CaDNAJE1/AT4G10630、CaDNAJE4/AT5G06470、CaDNAJE4/AT3G11773、CaDNAJE7/AT3G28850、CaDNAJE8/AT5G61670、CaDNAJE10/AT4G13670、CaDNAJE11/AT1G75690、CaDNAJE13/AT5G58530、CaDNAJE18/AT5G03870、CaDNAJE21/AT2G41330 直系同源基因對。其中,CaDNAJE4基因在擬南芥中有2 個共線性基因,表明該基因發生了擴張。此外,在辣椒中僅有CaDNAJE12/CaDNAJE21之間存在共線性關系,表明該基因家族種內共線性基因較少。

圖4 辣椒和擬南芥DNAJE 基因家族共線性分析Fig.4 Collinearity analysis of DNAJE gene family between pepper and Arabidopsis
利用GEO Datasets 中的轉錄組數據,對辣椒DNAJE基因家族組織特異性表達模式進行分析,結果如圖5。辣椒DNAJE基因在不同組織及果實中有明顯表達差異,28 個基因可以分為4 類。CaDNAJE1、CaDNAJE4、CaDNAJE6等A 類基因在辣椒各組織中表達量都很低甚至不表達,多數為Group Ⅱ 基因;B 類4 個基因中僅CaDNAJE26在葉和花芽中表達量相對較高;C 類CaDNAJE 5、CaDNAJE 27、CaDNAJE 23等基因在花和幼果中高表達;D 類基因多數為Group Ⅰ 基因,除CaDNAJE2、CaDNAJE10、CaDNAJE20在0-1 cm 幼果或葉和花芽中幾乎不表達外,其他基因在各組織中均高表達。

圖5 DNAJE 基因在辣椒不同組織及果實發育過程中的表達分析Fig.5 Expression profile analysis of pepper DNAJE genes in different tissues and fruit development
通過分析NCBI SRA 數據庫中辣椒高溫脅迫轉錄組數據(SRP187794),對表達顯著差異的12 個CaDNAJE基因和3 個Hsf/HSP 耐熱相關基因進行高溫脅迫RT-qPCR 分析(圖6)。其中,CaHSP22、CaHSP16.4和CaHsfB5基因受高溫脅迫表達水平極顯著升高,隨脅迫時間延長,CaHSP22、CaHSP16.4表達呈下降趨勢;辣椒DNAJE基因中除CaDNAJE24負向調控辣椒響應高溫脅迫,表達水平下調外,其他11 個基因均呈現不同程度的上調表達,但在不同脅迫時期的表達模式有所差異。CaDNAJE2、CaDNAJE3、CaDNAJE13和CaDNAJE21這4 個基因在1 d 時表達水平最高,之后呈下降趨勢;CaDNAJE11基因在1、7 和10 d 時表達水平均顯著高于對照,且在7 d 時表達水平最高;CaDNAJE15基因在脅迫1、3、5 d 時表達水平基本持平,之后降低;CaDNAJE17、CaDNAJE19、CaDNAJE23和CaDNAJE27這4 個基因表達基本呈現先升后降再升趨勢,均在5 d 時達到最高。CaDNAJE基因在高溫脅迫下的高表達,表明其作為應激蛋白可能在辣椒響應高溫脅迫中起調節作用,以維持辣椒正常的生長發育。

圖6 辣椒高溫脅迫相關基因表達分析Fig.6 Expression analysis of genes related to high temperature stress in pepper
當植物遭遇高溫等逆境脅迫時,會造成體內H2O2積累,威脅植物細胞膜系統,導致膜脂過氧化產物MDA 含量升高。同時,植物自身SOD、POD、CAT 等抗氧化保護酶系統啟動,參與植物對外界逆境脅迫的響應。由圖7可知,隨著高溫脅迫時間延長,H2O2含量急劇升高,5 d 達到最高的5.36 μmol/g,之后開始下降;MDA 含量呈上升趨勢,10 d 時比處理前增幅437.01%;SOD 酶活性呈先升后降趨勢,在3 d 時活性達到頂峰的188.0 U/g,相比對照,3-10 d 酶活性升高幅度為24.7%-66.1%;POD 酶活性整體呈上升趨勢,在10 d 時達到最高的3 819.88 U/g,相比對照,3 d 時活性提升幅度最大,為75.5%;CAT 酶活性前期變化不大,但在10 d 時酶活性明顯升高,達到276.91 nmol/(min·g),為對照(40.25 nmol/(min·g))的6.9 倍。

圖7 辣椒幼苗對高溫脅迫的生理生化響應Fig.7 Physiological and biochemical responses of pepper seedlings to high temperature stress
近年來,隨著辣椒全基因組數據的公布[26-28]和生物信息學方法的不斷完善,研究人員已對辣椒DnaJ[29]、B-BOX[30]、MYB[31]、AP2/ERF[32]等多個基因家族進行了鑒定分析,但辣椒DNAJE基因家族系統鑒定和分析還未見報道。本研究基于Zunla 1全基因組數據,對辣椒DNAJE基因家族進行鑒定,從基因結構特征、系統進化、順式作用元件、共線性關系、組織特異性表達及高溫脅迫響應等多方面進行了分析和研究。
HSP70 是植物主要伴侶蛋白家族之一,在蛋白質量控制中起非常重要的作用。DnaJ 蛋白(HSP40)是HSP70 的共同伴侶,他能識別未折疊的底物并將其傳遞給HSP70,刺激ATP 酶活性,誘導伴侶構象改變,進而穩定其與底物的相互作用[33]。DNAJE 蛋白擁有類似于DnaJ 蛋白中參與結合底物的鋅指結構域[34],而缺乏典型的J-結構域,能夠不依賴HSP70和J-結構域,直接與底物結合發揮作用。已有研究證實,ORANGE 蛋白作為DNAJE 蛋白家族一員,通過轉錄后調控植物烯合成酶PSY 以及通過抑制細胞核中轉錄因子TCP14 活性調控色素合成和葉綠體發育[35-37]。本研究在辣椒中鑒定出28 個DNAJE基因,進化分析顯示,辣椒、番茄和擬南芥DNAJE 蛋白被劃分至2 個亞族,每個亞族中辣椒、番茄和擬南芥成員分布情況相似,說明其具有較近的同源關系。啟動子順式作用元件對基因轉錄及調控具有非常重要的作用[38]。分析發現,DNAJE基因啟動子區域包含大量光響應、激素響應和脅迫應答元件。結果表明,DNAJE基因可能不僅參與光系統調控,也參與了激素響應和脅迫應答。諸多研究已經證實了這點,Amiya 等[13]報道了一個萊茵衣藻DNAJE 類囊體相關蛋白ZnJ6,其能與氧化還原酶、光合蛋白等相互作用,防止因外界環境脅迫使蛋白發生錯誤折疊和聚集,從而維持氧化還原和光合平衡,提升抗逆性。Hartings 等[39]在擬南芥中分離了HCF222基因,具有二硫化物還原酶活性,參與細胞色素b6f 組裝,進而影響PSII 和PSI 光合復合物的合成;Ham 等[40]通過對煙草(Nicotiana tabacum)DNAJE基因Tsip1的研究發現,其能夠與Tsi1轉錄因子互作,激活下游水楊酸反應基因,進而參與煙草抗逆脅迫應答反應。通過共線性分析發現,辣椒和擬南芥具有10 對直系同源基因,且CaDANJE1/AT4G10630、CaDNAJE8/AT5G61670、CaDNAJE10/AT4G13670、CaDNAJE11/AT1G75690、CaDNAJE13/AT5G58530 這5 對不僅進化關系最近,且序列相似度很高。其中,AT5G61670、AT4G13670 和AT1G75690 已分別被鑒定為擬南芥OR[41-42]、pTAC5[43]和LQY1[44]基因,在質體發育、逆境應答及光系統建成等方面發揮重要作用,因此推測辣椒近源基因也具有類似功能。
已有研究表明,熱激轉錄因子Hsf 和熱激蛋白HSP 是參與植物應激反應的主要通路[45],CaHsfB5[46]、CaHSP22[47]和CaHSP16.4[48]等基因在辣椒響應高溫脅迫中顯著上調表達,進而提升辣椒耐熱性,這與本研究結果一致。DNAJE 蛋白與典型DanJ 蛋白具有相似的功能,其表達也能夠顯著提高植物對非生物脅迫的耐受力,從而降低細胞損傷[49]。Lee 等[50]在苜蓿(Medicago sativaL.)中鑒定了一個DNAJE基因MsDJLP,該基因的表達受低溫(4℃)和高溫(42℃)誘導,通過在煙草中異位過表達MsDJLP基因增強了轉基因煙草對低溫和高溫的耐受力。So 等[51]通過對大豆(Glycine maxL.)DNAJE基因GmDjp1的研究發現,其受多種非生物脅迫誘導,在大腸桿菌中異源表達GmDjp1基因,能夠提高大腸桿菌的耐受性,表明GmDjp1可能在細胞熱休克應激過程中發揮關鍵作用。本研究對NCBI SRA 數據庫中辣椒高溫脅迫轉錄組數據進行分析,從2 個亞族中挑選出12 個在高溫脅迫下表達量具有顯著差異的CaDNAJE基因進行RT-qPCR 分析,結果表明,CaDNAJE24在高溫脅迫中表達量降低,呈負調控,其他基因表達水平均顯著提高,但其在不同脅迫時間的表達量存在差異,這反映出DnaJ-Like基因以不同調控方式參與了植物響應高溫脅迫進程。
在辣椒全基因組中共鑒定出28 個DNAJE家族基因,進化分析結果分為2 個亞族,同一亞族具有相似的蛋白保守基序、基因結構以及組織特異性表達模式。高溫脅迫導致辣椒生理生化改變,并誘導DNAJE基因高表達,表明該家族基因參與了辣椒響應非生物脅迫的生物過程。
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