宋俊華,張 瀝,陳海濱
(長沙市第四醫院內分泌科,湖南 長沙 410006)
糖尿病性心肌病是由糖尿病引起的心肌細胞結構和功能受損的一種疾病[1],該病在糖尿病患者中很常見,其發生率高達75%[2]。高血糖引起的氧化應激、組織炎癥、細胞凋亡被認為是糖尿病性心肌病發病機理和進展的關鍵[3]。因此,開發抑制糖尿病性心肌病患者氧化應激、組織炎癥水平并降低細胞凋亡,進而降低心肌細胞損傷的治療方法具有重要意義。山藥多糖是山藥中有效成分之一,具有抗腫瘤、抗氧化、抗衰老、增強免疫、降低血糖等作用[4]。相關研究報道,山藥多糖在改善脂多糖誘導的心肌細胞損傷中具有重要作用[5],而Wnt/β-連環蛋白(Wnt/βcatenin)信號通路作為參與細胞多種生命活動的重要通路之一,抑制該通路可使高糖誘導的H9c2 心肌細胞凋亡率下降[6],但尚未見山藥多糖通過調控Wnt/β-catenin 信號通路來發揮對高糖誘導心肌細胞損傷的保護作用的報道。因此,本研究通過構建高糖誘導心肌細胞損傷模型,觀察山藥多糖對心肌細胞損傷模型細胞活力、細胞凋亡、氧化應激、炎性因子水平及Wnt/β-catenin 信號通路相關蛋白的影響,旨在探索可能的分子機制。
1.1 細胞 大鼠心肌細胞H9c2(貨號C5045)購自上海冠導生物工程有限公司。
1.2 試劑與藥物 山藥多糖(純度≥90%,貨號SC9990)購自北京索萊寶科技有限公司;蛋白提取試劑盒、BCA 試劑盒均購自賽默飛世爾科技(中國)有限公司;ELISA 試劑盒購自上海恪敏生物科技有限公司;硫代巴比妥酸反應物檢測試劑盒購自武漢艾美捷科技有限公司;ROS 檢測試劑盒、Annexin V-FITC 細胞凋亡檢測試劑盒購自上海碧云天生物技術有限公司;黃嘌呤氧化酶活性測定試劑盒、Wnt3α、β-catenin、糖原合成激酶3β(GSK-3β)、GAPDH兔多克隆抗體、辣根過氧化物酶(HRP)標記的羊抗兔IgG 二抗均購自英國Abcam 公司。
1.3 細胞分組及給藥 參照文獻[5,7]報道及前期預實驗結果,將H9c2 細胞隨機分為對照組、高糖組、山藥多糖組、山藥多糖+LiCl(Wnt/β-catenin 信號通路激活劑)組。對照組以含有5.55 mmol/L 葡萄糖的培養液培養48 h,高糖組以含有33 mmol/L 葡萄糖的培養液培養48 h,山藥多糖組以含有33 mmol/L 葡萄糖和0.20 mg/mL 山藥多糖的培養液培養48 h,山藥多糖+LiCl 組以含有33 mmol/L 葡萄糖、0.20 mg/mL 山藥多糖和40 μmol/L LiCl 的培養液培養48 h。
1.4 CCK-8 法檢測細胞活力 細胞按“1.3” 項下方法處理,收集各組細胞,以每孔1×105個的密度接種在96 孔板中,同時設置只加培養液不加細胞的空白組,每組設置6個復孔,培養72 h 后向每孔中加入10 μL CCK-8 溶液,37 ℃避光孵育2 h,使用酶標儀檢測450 nm 波長處的吸光度值,計算細胞活力。
1.5 流式細胞術檢測細胞凋亡率 細胞按“1.3” 項下方法處理,收集各組細胞(5×105/mL),加入100 μL 結合緩沖液,輕輕重懸細胞,再加入5 μL Annexin V-FITC 和5μL碘化丙啶,將細胞輕輕混合,并在室溫下避光孵育10 min,使用流式細胞儀分析檢測細胞凋亡率,每組設置6 個復孔。
1.6 細胞ROS、MDA 水平和SOD 活性檢測 細胞按“1.3” 項下方法處理,收集各組細胞,分別使用活性氧(ROS)檢測試劑盒(熒光探針法)、丙二醛檢測試劑盒(硫代巴比妥酸法)、超氧化物歧化酶測定試劑盒(黃嘌呤氧化法)檢測細胞ROS、MDA 水平和SOD 活性,嚴格按照試劑盒說明書進行操作,以相對熒光強度(MFI)值代表ROS 水平,每個樣本重復6 次實驗。
1.7 ELISA 法檢測細胞炎癥因子IL-1β、IL-6 水平 細胞按“1.3” 項下方法處理,收集各組細胞上清液,采用ELISA 試劑盒檢測上清液中IL-1β、IL-6 水平,每個樣本重復6 次實驗。
1.8 Western blot 法檢測細胞Wnt3α、β-catenin、GSK-3β蛋白表達 細胞按“1.3” 項下方法處理,收集各組細胞,加入預冷的RIPA 緩沖液在4 ℃下裂解45 min,使用BCA試劑盒對總蛋白進行定量。通過12% SDS-PAGE 凝膠電泳分離蛋白質,然后移至PVDF 膜上,用5%脫脂牛奶室溫封閉1 h,與一抗β-catenin(1∶2 000)、Wnt3α(1∶1 000)、GSK-3β(1∶3 000)、GAPDH(1∶2 500)在4 ℃下孵育過夜,PBST 洗滌3 次,與HRP 標記的山羊抗兔二抗(1∶5 000)在室溫下孵育2 h,使用ECL 化學發光系統可視化蛋白質條帶,Image J 軟件量化蛋白質條帶,并以GAPDH為內參,分析目的蛋白相對表達,每個樣本重復6 次實驗。
1.9 統計學分析 通過SPSS 25.0 軟件進行處理,數據以(±s)表示,兩組間比較采用t檢驗,多組間比較采用單因素方差分析,進一步兩組間比較采用SNK-q檢驗。以P<0.05 為差異有統計學意義。
2.1 山藥多糖對細胞活力的影響 與對照組比較,高糖組細胞活力降低(P<0.05);與高糖組比較,山藥多糖組細胞活力升高(P<0.05);與山藥多糖組比較,山藥多糖+LiCl 組細胞活力降低(P<0.05),見表1。
表1 各組細胞活力比較(±s, n=6)

表1 各組細胞活力比較(±s, n=6)
注:與對照組比較,*P<0.05;與高糖組比較,#P<0.05;與山藥多糖組比較,△P<0.05。
2.2 山藥多糖對細胞凋亡率的影響 與對照組比較,高糖組細胞凋亡率升高(P<0.05);與高糖組比較,山藥多糖組細胞凋亡率降低(P<0.05);與山藥多糖組比較,山藥多糖+LiCl 組細胞凋亡率升高(P<0.05),見圖1、表2。

圖1 各組細胞凋亡情況流式圖
表2 各組細胞凋亡率比較(±s, n=6)

表2 各組細胞凋亡率比較(±s, n=6)
注:與對照組比較,*P<0.05;與高糖組比較,#P<0.05;與山藥多糖組比較,△P<0.05。
2.3 山藥多糖對細胞氧化應激水平的影響 與對照組比較,高糖組細胞ROS、MDA 水平升高(P<0.05),SOD 活性降低(P<0.05);與高糖組比較,山藥多糖組細胞ROS、MDA 水平降低(P<0.05),SOD 活性升高(P<0.05);與山藥多糖組比較,山藥多糖+LiCl 組細胞ROS、MDA 水平升高(P<0.05),SOD 活性降低(P<0.05),見表3。
表3 各組細胞ROS、MDA 水平和SOD 活性比較(±s, n=6)

表3 各組細胞ROS、MDA 水平和SOD 活性比較(±s, n=6)
注:與對照組比較,*P<0.05;與高糖組比較,#P<0.05;與山藥多糖組比較,△P<0.05。
2.4 山藥多糖對細胞上清液中炎癥因子水平的影響 與對照組比較,高糖組細胞上清液中IL-1β、IL-6 水平升高(P<0.05);與高糖組比較,山藥多糖組細胞上清液中IL-1β、IL-6 水平降低(P<0.05);與山藥多糖組比較,山藥多糖+LiCl 組細胞上清液中IL-1β、IL-6 水平升高(P<0.05),見表4。
表4 各組細胞上清液中IL-1β、IL-6 水平比較(μg/L,±s, n=6)

表4 各組細胞上清液中IL-1β、IL-6 水平比較(μg/L,±s, n=6)
注:與對照組比較,*P<0.05;與高糖組比較,#P<0.05;與山藥多糖組比較,△P<0.05。
2.5 山藥多糖對細胞中Wnt/β-catenin 信號通路相關蛋白表達的影響 與對照組比較,高糖組細胞Wnt3α、β-catenin 蛋白表達升高(P<0.05),GSK-3β 蛋白表達降低(P<0.05);與高糖組比較,山藥多糖組細胞Wnt3α、β-catenin 蛋白表達降低(P<0.05),GSK-3β 蛋白表達升高(P<0.05);與山藥多糖組比較,山藥多糖+LiCl 組細胞Wnt3α、β-catenin蛋白表達升高(P<0.05),GSK-3β 蛋白表達降低(P<0.05),見圖2、表5。

圖2 各組細胞Wnt3α、β-catenin、GSK-3β 蛋白條帶圖
表5 各組細胞Wnt3α、β-catenin、GSK-3β 蛋白表達比較(±s, n=6)

表5 各組細胞Wnt3α、β-catenin、GSK-3β 蛋白表達比較(±s, n=6)
注:與對照組比較,*P<0.05;與高糖組比較,#P<0.05;與山藥多糖組比較,△P<0.05。
糖尿病性心肌病是一種涉及線粒體功能障礙、氧化應激、炎癥反應、自噬、細胞凋亡和心肌代謝異常的一種疾病[8]。目前普遍認為高糖條件下的氧化應激、炎癥反應及細胞凋亡是造成心肌細胞損傷主要原因,同時也是糖尿病性心肌病發病機制之一[9-10]。據報道,心肌細胞在受損時會產生大量的ROS,不僅可誘導細胞凋亡,還能將細胞內的脂質過氧化,造成氧化損傷[11-13]。本研究通過葡萄糖誘導心肌細胞損傷模型,發現高糖可誘導心肌細胞損傷。
山藥多糖具有調節免疫力、抗衰老、降血糖、降血脂、抗氧化、抗應激等多種功能活性[14]。有研究表明,山藥多糖可抑制神經元細胞凋亡,改善腦組織抗氧化能力及抑制炎性細胞因子過度表達,進而減少缺血再灌注損傷大鼠腦梗死面積[15];山藥多糖還可以對脂多糖誘導的心肌細胞損傷發揮保護作用[5]。本研究結果亦表明山藥多糖對心肌細胞損傷具有保護作用。
Wnt/β-catenin 信號通路能夠參與介導機體各種生理病理反應[16]。在Wnt/β-catenin 信號通路中,Wnt3α 是激活Wnt/β-catenin 通路的Wnt 同源物,其能促進一系列蛋白活化最終導致β-catenin 蛋白的大量積累;而GSK-3β 作為Wnt/β-catenin 信號通路的負調控因子,其能夠促進βcatenin 的降解,當GSK-3β 不足或者發生障礙時,β-catenin會在細胞質內大量累積[17-18],因此Wnt3α、β-catenin、GSK-3β 可作為評估Wnt/β-catenin 信號通路活性的重要依據。相關研究表明,Wnt/β-catenin 抑制劑XAV939 通過抑制Wnt/β-catenin 信號通路降低大鼠心肌組織中促纖維化因子的表達及膠原的濃度并抑制心肌細胞凋亡,進而阻止心肌梗死后心肌纖維化的發生與發展[19];miR-124-3p 抑制劑可通過抑制Wnt/β-catenin 信號通路,進一步抑制心肌細胞的凋亡,減輕細胞損傷,減少炎性因子的釋放,對缺氧缺糖的心肌細胞起到保護作用[20];右美托咪定通過抑制Wnt/β-catenin 信號通路激活,降低促凋亡因子Bax 表達,促進抗凋亡因子Bcl-2 表達,進而緩解新生大鼠缺氧缺血性腦損傷[21]。本研究結果顯示,高糖誘導可通過上調Wnt3α、βcatenin 蛋白表達,下調GSK-3β 蛋白表達來激活Wnt/βcatenin 信號通路,而山藥多糖處理后可抑制該通路的激活。此外,本研究還利用Wnt/β-catenin 信號通路激活劑LiCl 處理心肌細胞,結果發現其可逆轉山藥多糖對高糖誘導的心肌細胞活力、凋亡、炎性因子和氧化應激相關指標的影響,提示山藥多糖對高糖誘導心肌細胞損傷的保護作用機制與Wnt/β-catenin 信號通路有關。
綜上所述,山藥多糖對高糖誘導的心肌細胞損傷具有保護作用,其可增強細胞活力,抑制細胞凋亡、氧化應激及炎性因子水平,該機制與抑制Wnt/β-catenin 信號通路有關,可為臨床上糖尿病性心肌病的治療提供參考依據。