茉莉花節間莖段的離體培養和植株再生

摘要要：【目的】通過雙瓣茉莉（Jasminum sambac）節間莖段離體培養獲得再生植株，填補通過愈傷組織獲得再生植株報道的空白。【方法】以雙瓣茉莉節間莖段為外植體，設置不同84消毒液和Tween-20濃度組合篩選適宜的外植體消毒方式，并在此基礎上設置9種不同的6-BA和NAA濃度組合篩選適宜的培養基進行愈傷組織誘導、分化及完整植株再生。【結果】茉莉花節間莖段經20%的84消毒液中滴加0.1 mL

Tween-20消毒12 min時，污染率低且成活率高；在MS + 1.5 mg/L 6-BA + 1.5 mg/L NAA + 30 g/L 蔗糖 + 6 g/L 瓊脂培養基上愈傷組織誘導率達100%。在此培養基生長2個月后，莖段產生的愈傷組織開始分化形成芽和根；培養至第6個月，開始形成莖和葉；培養至第8個月，開始形成完整植株；培養至第12個月時，愈傷組織開始逐漸褐化，植株的生長放緩，部分葉片出現枯焦?！窘Y論】茉莉花節間莖段誘導愈傷組織可在不繼代的情況下再生為完整植株，為茉莉花遺傳轉化獲得轉基因植株提供了途徑。

關鍵詞：茉莉花；莖段；愈傷組織；組培；再生；完整植株

中圖分類號：S685.16" " " " " " " " " " " 文獻標識碼：A" " " " " " " " " " " 文章編號：2095-5774（2024）03-0194-09

In Vitro Culture and Plant Regeneration of Internode Stem Segment of Jasminum sambac

Abstract：【Objective】 To obtain regenerated plants by in vitro culture of internode stem segment of Jasminum sambac and fill the gap in reports on the regenerated plants obtained from callus. 【Method】 The internode stem segments of J. sambac were selected as the explants and different concentrations of 84 disinfectant and Tween-20 were selected for suitable explant disinfection method. On this basis，9 combination of different concentration of 6-BA and NAA were set to screen suitabl media for callus induction，differentiation and complete plant regeneration.【Result】When 0.1 mL Tween-20 was added to 20% 84 disinfectant and internode stem segments were disinfected for 12 min，the contamination rate of the explants was low and the survival rate was high. The callus induction rate reached 100% on MS medium + 1.5 mg/L 6-BA + 1.5 mg/L NAA + 30 g/L sucrose + 6 g/L Agar. After 2 months of growth on this medium，the callus generated from stem segments could differentiate into shoots and roots. When the callus continued to grow on this medium at the 6th month，stems and leaves began to appear. When the callus continued to grow to the 8th month，the complete plants began to appear. When cultivating to the 12th month，the callus began to browning gradually，the growth of the plant slowed down，and some leaves appeared scorched. 【Conclusion】The internode stem callus could be regenerated into complete plants without secondary culture，which provided a way to obtain transgenic plants through genetic transformation of Jasminum sambac.

Key words：Jasminum sambac；Stem；Callus；Tissue culture；Regeneration；Complete plant

茉莉花［Jasminum sambac（L）. Ait］為木犀科（Oleaceae）素馨屬（Jasminum）常綠灌木，其花具有馥郁的香氣，在花茶窨制［1］、香精提取［2］、食品藥品［3］等方面被廣泛地應用，具有重要的觀賞和經濟價值。我國茉莉花引種栽培歷史悠久，栽培形式多樣，目前栽培面積已超過1萬ha，是世界上茉莉花產量最多的國家，年產量占世界產量的80%以上［4-5］。茉莉花自然敗育率高，田間結實率極低［6］，其種苗的主要來源是扦插繁殖［7-10］，而長期扦插繁殖會導致植株生長退化而出現香氣減弱的現象，因此利用組織培養技術對茉莉花進行復壯，成為加快茉莉花繁殖速度、提高幼苗質量的重要手段。此外，高效穩定的遺傳轉化技術對改良品種具有巨大潛力［11-15］，盡管茉莉花具有重要經濟價值，且轉基因技術在百合、菊花等許多觀賞植物上已取得突破［16-18］，但茉莉花遺傳轉化體系尚未有報道，這成為限制茉莉花品種改良和基因工程技術發展的瓶頸，獲得茉莉花遺傳轉化體系將成為解決這一問題的關鍵方法。

目前，針對茉莉花組培快繁的研究大部分限于利用莖段、帶芽莖段進行快繁體系建立，以及愈傷組織誘導和繼代保持，如甘煌燦等［19］以茉莉花莖段及花瓣為試驗材料，發現莖段能較好的誘導出愈傷組織，同時發現6-BA與NAA合適的配比可以誘導出質量較好且能長期繼代保持的愈傷組織。莊哲煌等［20］利用茉莉花花瓣誘導愈傷組織，建立茉莉花懸浮細胞培養系的方法。何麗斯［21］選取當年生半木質化帶腋芽的莖段為外植體，成功誘導腋芽萌發、伸長生長、生根。李聰聰等［22］以雙瓣茉莉帶腋芽的莖段為外植體，建立起雙瓣茉莉組織培養快速繁殖的技術體系。蔡漢等［23］對雙瓣茉莉進行了離體微繁及無糖生根技術研究。孫艷妮等［24］以WPM為基本培養基，比較了不同6-BA和IBA配比對茉莉花莖段芽誘導的影響及不同溫度條件下不同6-BA和IBA配比對茉莉花芽增殖的影響，并以1/2 WPM為培養基，比較了不同NAA濃度處理及不同生根方法對離體芽生根的影響。盧瑩［25］以茉莉花莖段和葉片作為外植體，以WPM為基本培養基，篩選出誘導愈傷組織的最佳消毒時間和植物激素配比以及愈傷組織繼代增殖、誘導分化的最佳培養基。盡管如此，這些研究結果仍停留在愈傷組織誘導根或芽，或快繁的層面，未有通過愈傷組織誘導獲得完整植株的報道。

由于茉莉花的遺傳轉化體系目前主要通過愈傷組織作為受體轉化外源基因，再誘導轉化后的愈傷組織分化芽及根，進而獲得完整的轉基因植株。因此通過愈傷組織誘導獲得植株再生成為關鍵的技術要點。本研究以無腋芽的節間莖段為外植體，通過培養基篩選及培養方式的探索，成功通過愈傷組織誘導了植株再生，為進一步利用轉基因后的愈傷組織進行植株再生，從而獲得完整的茉莉花遺傳轉化體系奠定基礎。

1材料與方法

1.1供試材料

三年生雙瓣茉莉種植于盆中（盆直徑5 cm，高10 cm），基質為泥炭土：珍珠巖：蛭石=713（VVV）。植株放置于人工氣候室，溫度26℃/ 22℃（晝/夜），光周期為16 h / 8 h（晝/夜），濕度為70%，日常常規養護。

1.2外植體消毒方式篩選

參照盧瑩［25］方法，并在此基礎上進行優化。選取茉莉花剛抽生的幼嫩健康的節間莖段為外植體材料，在含有適量洗衣粉的水中浸泡30 min；隨后使用純水沖洗10 min，泡入無菌水中備用；移入超凈工作臺內，用75%乙醇表面滅菌處理30 s，無菌水沖洗3～5次；隨后用添加了Tween-20的84消毒液，消毒12 min；所用84消毒液的主要成分為次氯酸鈉，有效氯含量 5.5%～6.5%，使用濃度為10%、20%、30%；Tween-20的添加用量為0.1、0.2、0.3 mL；最后用無菌水沖洗3～5次，直至無泡沫。消毒后接種于MS + 2.0 mg/L 6-BA + 0.2 mg/L NAA 培養基中（含 30 g/L 蔗糖和 6 g/L 瓊脂，pH為5.8）［19］。莖段切成1 cm的長度，每個處理接種10個外植體，重復10次。置于培養室培養，培養溫度為25℃，光強1 500 lx，光周期為16 h / 8 h （晝/夜）。30 d

后統計外植體的污染率和成活率。

污染率（%）= 污染外植體數/外植體總數 × 100%

成活率（%）=成活外植體數/外植體總數 × 100%

1.3 愈傷組織誘導培養基篩選

以 MS + 30 g/L蔗糖+ 6 g/L瓊脂（pH=5.8）為基本培養基，添加6-BA和NAA兩種植物生長調節劑，6-BA和NAA各設置3個濃度，其中6-BA濃度分別為1.0、1.5、2.0 mg/L，NAA濃度分別為0.5、1.0、1.5 mg/L。使用上述篩選的適宜莖段的消毒方式進行消毒，然后接種設置的誘導培養基中。每個處理接種10個外植體，重復10次。置于培養室培養，培養溫度為25℃，光強1 500 lx，光周期為16 h / 8 h（晝/夜）。接種30 d后統計產生愈傷組織的外植體數目，篩選最適宜愈傷組織誘導的培養基配方。

1.4 不定芽、不定根誘導培養

將表面滅菌處理后的茉莉花莖段置于滅菌濾紙上吸去多余的水分，切除莖段上的芽點，切成1 cm左右的長度，接種于組培瓶內，每瓶接種20～25個莖段，共接種20瓶，每個處理共接種450個莖段，放置于上述已篩選出的最佳培養基中，置于培養室培養，培養溫度為25℃，光強1 500 lx，光周期為16 h / 8 h（晝/夜）。整個組織培養過程中不進行轉接。

1.5 愈傷組織誘導率、芽及根分化率的計算

愈傷組織誘導率（%）=誘導出愈傷組織的外植體數/外植體總數 × 100%

芽分化率（%）=分化芽的外植體數/外植體總數 × 100%

根分化率（%）=分化根的外植體數/外植體總數 × 100%

1.6 數據統計

使用 Microsoft Excel 2019對數據進行統計。用 IBM SPSS Statistics 26.0軟件的單因素 ANOVA 進行顯著性分析。

2結果與分析

2.1 不同消毒方式下茉莉花莖段外植體的污染率與成活率比較

茉莉花莖段外植體經不同的消毒方式消毒后，接種到培養基上，30 d后統計其污染率與成活率（如表1所示）。結果顯示，在20% 84消毒液中滴加0.3 mL Tween-20處理時間為12 min 時，污染率在9個處理中最低，僅為8.2%，其成活率為82.4%；而在20% 84消毒液中滴加0.1 mL Tween-20消毒處理時間為12 min 時，污染率為8.6%，但其成活率最高，為89.3%。綜合考慮經濟效益以及污染率、成活率，最終選擇20% 84消毒液中滴加0.1 mL Tween-20處理時間為12 min 的消毒方式，污染率低且成活率高。

2.2不同誘導培養基下茉莉莖段愈傷組織誘導率比較

通過比較不同培養基的愈傷組織誘導率可以得出，在6號培養基（MS + 2.0 mg/L 6-BA + 1 mg/L

NAA + 30 g/L 蔗糖+ 6 g/L 瓊脂）上培養，愈傷組織誘導率最低，僅為15.6%；在8號培養基（MS +

1.5 mg/L 6-BA + 1.5 mg/L NAA + 30 g/L 蔗糖+ 6 g/L 瓊脂）上茉莉花莖段的誘導率都能達到99.6%（如表2所示），顯著高于其他處理，且誘導出的愈傷組織類似于胚性愈傷組織。

2.3 愈傷組織的誘導及芽和根的分化

以不帶腋芽的茉莉花莖段為外植體，接種至MS + 30 g/L蔗糖+ 1.5 mg/L NAA + 1.5 mg/L 6-BA + 6 g/L瓊脂（pH = 5.8）培養基中，30 d后所有莖段兩端均產生大量翠綠飽滿的愈傷組織，誘導率為100%（圖1）。

在此培養基上繼續培養2個月時，發現有20個莖段的愈傷組織分化開始形成芽，分化率為4.4%（圖2A，B），有40個莖段的愈傷組織開始分化出根，分化率為8.9%（圖2C，D）。

2.4" 芽的生長及葉的出現

茉莉花莖段愈傷組織在原培養基上不繼代繼續培養至第6個月時，此時更多愈傷組織分化出芽和根，芽和根的分化率分別為8.0%和11.6%。有些芽開始出現葉的雛形，部分分化了芽的愈傷組織產生了根（圖3）。

2.5" 完整植株的形成

茉莉花莖段培養至8個月后，分化出更多的芽和根，芽和根的分化率分別為10.7%和12.2%。短莖上的葉片展開（圖4A）；部分芽伸長生長為莖，莖上生節，節上長葉（圖4B）；同時莖逐漸長粗，葉片逐漸長大展開（圖4C）；分化形成的芽上也開始分化出根，形成完整的植株（圖4 D-F）。

2.6" 植株的衰老

茉莉花莖段繼續培養至12個月時，芽和根繼續分化，芽和根的分化率分別達到11.6%和13.8%。此時部分愈傷組織開始出現褐化，一些植株的葉片也出現黃化（圖5）。

3討論與小結

茉莉花是一種木本植物，由于木本植物生長周期較長且次生代謝物較多，生命活動更復雜，因此建立再生體系較為困難，再生條件的穩定性和普適性差［26-27］。在木本植物的組織培養中，外植體的消毒是決定組培成功的關鍵因素之一［28］。消毒效果差，則污染率高，無法提供足夠的材料進行下一步的組培研究；但是消毒處理過重，則會導致材料的生命力減弱甚至死亡。在前人的研究中，施用于茉莉花外植體的消毒劑主要包括氯化汞、次氯酸鈉、84消毒液［19-20，29］。然而，氯化汞目前處于國家管控，不方便使用；次氯酸鈉或84消毒液被多次報道應用于茉莉花外植體的消毒［19-21，24］，且發現與表面活性劑進行組合其消毒效果極好［25，29］，但未曾探索過表面活性劑使用濃度對外植體消毒的影響。本研究在使用前人報道的應用頻率最高的84消毒液的基礎上，設置了不同的84消毒液濃度、Tween-20用量，發現采用20% 84消毒液中添加0.1 mL Tween-20處理12 min的消毒方式，成活率最高可以達到89.3%，高于僅使用消毒液的效果［19-20，30］，這與盧瑩［25］、張月等［29］在茉莉花中的研究結果一致，也與鄒永梅等［31］對萬壽菊外植體的消毒探索，以及張瑞越等［32］對油菜種子的消毒研究中發現的結論一致。同時，本研究發現外植體成活率并未隨著Tween-20使用量的增加而增加，說明Tween-20只是起到清潔外植體表面，去除表面的污垢、油脂和雜質［33］的作用，其使用量并不會直接影響外植體的成活率。

外植體的選擇是影響植物再生體系建立的重要條件之一，不同部位的外植體在組織培養中具有不同的再生潛力。在茉莉花的組織培養及快繁中，盡管有報道過以茉莉花種子獲得的下胚軸為外植體，直接通過不定芽途徑建立高效再生體系［34］，

但茉莉花的種子極難獲得。因此，目前主要使用的外植體包括花瓣、帶芽的莖段、節間莖段、葉片［19-25，29］，相比莖段，花瓣作為外植體取材與消毒比較難控制同時愈傷組織誘導更為困難［20］，葉片長出的愈傷組織易褐化，產生愈傷組織的能力也不如莖段［25］，因此莖段是目前使用最多的一種外植體。本研究基于前人的研究結果選擇了節間莖段作為外植體，相比帶芽的莖段材料更易獲得、材料數量更多，且結合適宜的消毒方式，成活率最高可達89.3%，能較好的在將來的實踐中廣泛應用。

本研究以MS培養基作為基本培養基，發現MS培養基培養外植體可縮短愈傷組織形成的時間，與甘煌燦等［19］、趙玉宏［34］的研究結果一致，與李聰聰等［22］、孫艷妮等［24］、張月等［29］的研究結果有所差異。本試驗選擇了細胞分裂素6-BA和植物生長素NAA這2種植物生長調節劑，并通過設置不同濃度6-BA和NAA，篩選出最適宜的誘導培養基（MS + 30 g/L蔗糖+ 1.5 mg/L NAA +1.5 mg/L 6-BA + 6 g/L瓊脂），與張曉軍［30］、趙玉宏［34］發現的6-BA和NAA配合使用誘導效率較高一致；與甘煌燦等［19］的研究結果有所差異。

前人研究表明，組培過程中需要不停繼代以保持愈傷組織或不定芽的活性［35-36］，本研究前期也曾持續繼代以保持芽的活性，但隨著換瓶次數的增加，愈傷組織、芽或根會逐漸褐化或停止生長。因此，本研究首次嘗試不繼代的培養方式從莖段愈傷組織獲得完整再生植株，這與趙玉宏［34］的研究結果有所差異，具體原因還需要進一步研究。

培養12個月后，長期不繼代瓶內空間有限、植株數量過多、營養不足，導致一些植株出現了葉片枯黃、愈傷組織褐化的情況。因此可在第8個月已有完整植株形成時進行繼代或移栽處理，或減少單個組培瓶里接種的外植體數量。

綜上所述，本研究以茉莉花節間莖段為外植體，在前人研究的基礎上優化了外植體消毒方式，篩選了適宜的培養基，并通過長期（8個月）持續不繼代的培養方式從莖段愈傷組織獲得完整再生植株。這個結果相較前人僅停留在愈傷組織誘導根或芽，或是快繁的研究是一個突破，為后期通過轉化的茉莉花愈傷組織獲得再生植株打下堅實基礎，對突破茉莉花遺傳轉化體系建立的瓶頸有重要意義。

參考文獻：

［1］蔣慧穎，馬玉仙，黃建鋒，等. 茉莉花茶保健功效及相關保健產品研究現狀［J］.山西農業大學學報（自然科學版），2016，36（8）： 604-608.

［2］陸寧，宛曉春，潘冬. 茉莉花茶香氣成分與品質之間關系的初步研究［J］.食品科學，2004，25（6）： 93-97.

［3］林慧玥，萬新龍，杜永均，等. 丁香精油和茉莉花精油對抑郁癥小鼠的治療效果及其作用機制［J］.溫州醫科大學學報，2018，48（5）： 330-337.

［4］梅宇，梁曉. 2018年中國茉莉花茶產銷形勢通報［J］.中國茶葉加工，2019（4）： 21-25.

［5］劉仲華. 茉莉花茶產業概況與創新發展［J］.中國茶葉，2021，43（3）：1-5.

［6］邱長玉.茉莉花遺傳多樣性及親緣關系的ISSR分析［D］.南寧：廣西大學，2008.

［7］周錦業，李春牛，盧家仕，等. 不同處理方式對茉莉花根插繁殖的影響［J］. 河南農業科學，2016，45（8）： 112-117.

［8］王健省，程琳琳，王旭，等. 不同生長素處理和營養液濃度對雙瓣茉莉水培扦插生根的影響［J］. 南方農業學報，2015，46（2）： 282-285.

［9］孫奇，黃夏夢. 茉莉花不同月份及生長調節劑扦插生根試驗研究［J］. 廣東蠶業，2022，56（9）： 4-6.

［10］車南福. 茉莉花壓條繁育技術簡介［J］. 蠶桑茶葉通訊，1981（4）： 24-37.

［11］李鵬飛，陳子豪，張敏娟，等. 西瓜遺傳轉化體系的優化［J］. 中國瓜菜，2024，37（3）：9-19.

［12］唐伶俐，徐龍蘭，徐永陽，等. 農桿菌介導的厚皮甜瓜遺傳轉化體系的建立［J］. 果樹學報，2024，41（3）： 533-542.

［13］韓炘，楊柳燕，陳敏敏，等. 百合育種技術研究進展［J］. 植物遺傳資源學報，2024，25（5）： 763-776.

［14］林鴻生，華志華，張祥喜，等. 植物遺傳轉化技術與品種改良研究進展［J］.上海農業科技，2000（4）：7-9.

［15］閆婷，烏日恒，魯敏，等. 基于高遺傳轉化率及低幼苗玻璃化率的黑果枸杞葉片組合培養體系［J］. 西北植物學報，2024，44（1）： 53-62.

［16］李浩輝，劉彩月，張海文，等. 2022年度全球轉基因作物產業化發展現狀及趨勢分析［J］. 中國農業科技導報，2023，25（12）： 6-16.

［17］張惠敏，魏怡，李蓮蓮，等. 百合再生體系優化與鐵炮百合‘薩利’遺傳轉化體系的構建［C］，中國云南昆明： 2023.

［18］甘好，李菲，蔣甲福，等. 菊花CmHB15-1基因克隆及調控木質素合成功能分析［J］. 南京農業大學學報，2023，46（3）： 473-481.

［19］甘煌燦，賴呈純，朱育菁，等. 茉莉花愈傷組織的誘導及其繼代保持［J］. 福建農業學報，2013，28（10）： 976-980.

［20］莊哲煌，蔡漢權，陳丹生. 茉莉花愈傷組織誘導及懸浮細胞培養［J］. 長江蔬菜，2011（8）： 21-24.

［21］何麗斯.茉莉花（Jasminum sambac L.）對低溫脅迫的生理響應及離體快繁研究［D］. 南京：南京農業大學，2010.

［22］李聰聰，葉曉青，佘建明. 不同激素對雙瓣茉莉不定芽誘導及生長的影響［J］. 北方園藝，2014（6）： 95-100.

［23］蔡漢，陳曉強，熊作明，等. 茉莉花離體微繁及無糖生根技術［J］. 江蘇農業學報，2007（5）： 464-468.

［24］孫艷妮，湯訪評，房偉民，等. 茉莉花離體快繁體系的建立［J］. 浙江農業學報. 2009，21（4）： 390-394.

［25］盧瑩.雙瓣茉莉離體培養和遺傳轉化的初步研究［D］. 福州：福建農林大學，2018.

［26］陳銘秋，劉果，林彥，等. 木本植物組織培養及器官從頭再生的研究進展［J］. 桉樹科技，2023，40（4）： 85-96.

［27］胡欣荃，古今，楊姝琦，等. 木本植物再生和遺傳轉化的研究進展［J］. 分子植物育種，2023，21（16）： 5322-5329.

［28］張清鳳，李啟菊，馬梅見，等. 植物組織培養中的常見問題及對策［J］. 現代園藝，2022，45（10）： 177-179.

［29］張月，陳風，盧瑩，等. 茉莉花莖段遺傳轉化體系初步研究［J］. 亞熱帶植物科學，2020，49（5）： 358-362.

［30］張曉軍. 茉莉花離體器官發生及建立植株再生系統的研究［J］. 牡丹江師范學院學報（自然科學版），2000（Z1）： 6-7.

［31］鄒永梅，黃雪方. 不同消毒劑對萬壽菊外植體滅菌效果的影響［J］. 江蘇教育學院學報（自然科學版），2011，27（4）： 25-27.

［32］張瑞越，季勤，朱陽陽. 不同消毒劑對油菜種子消毒效果的比較［J］. 淮陰師范學院學報（自然科學版），2011，10（2）： 127-129.

［33］文天崇，乾朝陽，李布野. 植物組織培養外植體滅菌技術研究進展［J］. 現代農業科技，2024（13）： 72-76.

［34］趙玉宏. 茉莉花直接不定芽途徑高效再生體系的建立［J］. 湖北民族學院學報（自然科學版），2008，26（4）： 444-447.

［35］胡文鋒，鄭貴一，王海燕，等. ‘紅顏’草莓組培快繁技術試驗［J］. 湖北林業科技，2024，53（3）： 32-36.

［36］胡計紅. 屏南四季開花杜鵑古樹組培快繁體系的建立與優化［D］. 福州：福建農林大學，2019.