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miR-21-5p 對川崎病內(nèi)皮細(xì)胞焦亡的作用及其機(jī)制研究

2024-04-25 06:27:54徐秀娟俞益萍
浙江醫(yī)學(xué) 2024年7期
關(guān)鍵詞:小鼠水平

徐秀娟 俞益萍

川崎病(Kawasaki disease,KD)是一種全身性的、伴有發(fā)熱的急性血管炎癥,好發(fā)于5 歲以下兒童。KD 可導(dǎo)致多種嚴(yán)重并發(fā)癥,如血栓、心肌炎和冠狀動脈瘤等,并可能造成永久性冠狀動脈損傷,嚴(yán)重危害患者健康甚至造成死亡[1-2]。眾所周知,炎癥和內(nèi)皮細(xì)胞損傷是導(dǎo)致KD 期間冠狀動脈內(nèi)皮功能障礙的重要原因[3]。研究表明,細(xì)胞焦亡是細(xì)胞損傷的一種特殊方式,與KD 的發(fā)生、發(fā)展相關(guān),抑制細(xì)胞焦亡已成為KD 的有效治療手段之一[4]。因此闡明KD內(nèi)皮細(xì)胞焦亡的發(fā)生、發(fā)展機(jī)制對于KD 的臨床防治和藥物開發(fā)具有重要意義。

miRNA 是一種長約22 nt 的內(nèi)源性非編碼RNA,具有調(diào)節(jié)基因表達(dá)的重要功能,并且已在多種疾病中被視作潛在的生物標(biāo)志物[5]。miRNA 也與KD 的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)。研究發(fā)現(xiàn)KD 患者血漿中miR-21 表達(dá)水平升高是KD 的危險(xiǎn)因素[6],此外一些miRNA 也被發(fā)現(xiàn)參與KD 患者血管內(nèi)皮細(xì)胞功能的損傷[7]。miR-21-5p 在多種疾病中發(fā)揮作用[8-9],并且可以通過凋亡[10]、自噬[11]、銅死亡[12]等多種途徑影響疾病進(jìn)展。然而,目前有關(guān)miR-21-5p 是否影響KD 期間內(nèi)皮細(xì)胞焦亡及其可能的調(diào)控機(jī)制少見報(bào)道。因此,本研究聚焦miR-21-5p 對KD 內(nèi)皮細(xì)胞焦亡的作用及其機(jī)制,以期為KD 的診治提供新的潛在靶點(diǎn)和實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

1 材料和方法

1.1 實(shí)驗(yàn)動物和細(xì)胞 6 周齡雄性C57BL/6 小鼠16只,體重20~22 g,由杭州醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動物中心提供。小鼠飼養(yǎng)于杭州醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動物中心SPF 級實(shí)驗(yàn)動物房中,溫度(24±2)℃,濕度(50±5)%,12 h 明暗循環(huán)光照系統(tǒng),自由進(jìn)食和飲水,并在正式實(shí)驗(yàn)前適應(yīng)性喂養(yǎng)1 周。小鼠冠狀動脈內(nèi)皮細(xì)胞(mouse coronary artery endothelial cells,MCAECs)(批號:CP-M081)、小鼠單核巨噬細(xì)胞白血病細(xì)胞RAW264.7(批號:CL-0190)均購自武漢普諾賽生命科技有限公司。本研究經(jīng)浙江省實(shí)驗(yàn)動物中心實(shí)驗(yàn)動物福利倫理委員會審查通過(批準(zhǔn)文號:ZJCLA-IACUC-20010177)。

1.2 試劑與儀器 DMEM 培養(yǎng)基(批號:12491015)、FBS(批號:12484028)、青霉素-鏈霉素(批號:15070063)、BCA 蛋白質(zhì)測定試劑盒(批號:23235)均購自賽默飛世爾科技(中國)有限公司;干酪乳桿菌(lactobacillus casei,LC)(批號:TS277920)和MRS 肉湯培養(yǎng)基(批號:TYSW33345)均購自寧波泰斯拓生物技術(shù)有限責(zé)任公司;miR-21-5p 模擬物(miR-21-5p mimics)、mimics 陰性對照物(miR-NC)、miR-21-5p 抑制劑(miR-21-5p inhibitor)和inhibitor 陰性對照物(inhibitor-NC)均購自蘇州吉瑪基因股份有限公司;Lipofectamine?2000 轉(zhuǎn)染試劑(批號:11668500)購自美國賽默飛世爾科技公司;乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)試劑盒(批號:AKCO003M)購自北京盒子生工科技有限公司;細(xì)胞計(jì)數(shù)試劑盒(cell counting kit-8,CCK-8)(批號:40203ES60)購自上海翌圣生物科技股份有限公司;TaqMan MicroRNA 反轉(zhuǎn)錄試劑盒(批號:4366596)購自美國Thermo Fisher Scientific 公司;qRT-PCR 試劑盒(批號:RR82LR)購自日本TAKARA公司;MCC950(批號:HY-12815)購自美國MedChem-Express 公司;超敏ECL 化學(xué)發(fā)光試劑盒(批號:P0018S)購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;含NLR家族Pyrin 域蛋白3(recombinant NLR family,and Pyrin domain containing protein 3,NLRP3)(批號:15101S)、凋亡相關(guān)斑點(diǎn)樣蛋白(apoptosis-related speckle-like protein,ASC)(批號:67824T)、含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白 水 解 酶-1(cysteinyl aspartate specific proteinase 1,caspase-1)(批號:24232S)、消皮素D 蛋白(gasdermin D,GSDMD)p30(批號:39754S)、IL-1β(批號:12242T)、IL-18(批號:57058S)均購自美國Cell Signaling Technology 公司;caspase-1 前體(pro-cysteinyl aspartate specific proteinase 1,pro-caspase-1)(批號:ab32499)購自艾博抗(上海)貿(mào)易有限公司。離心機(jī)(型號:Sorvall MTX 150)、CO2培養(yǎng)箱(型號:Forma?Ⅱ)、生物安全柜(型號:1300 系列A2)均購自美國Thermo Fisher 公司;熒光定量PCR 儀(型號:CFX96 Touch?)、酶標(biāo)儀(型號:imark)、電泳儀(型號:Universal 164-5070)均購自美國BIO-RAD 公司;熒光倒置顯微鏡(型號:TiS)購自日本尼康公司;多功能化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)(型號:ChemiScope 6200)購自上海勤翔科學(xué)儀器有限公司。

1.3 LC 細(xì)胞壁提取物(lactobacillus casei cell wall extract,LCWE)的制備 將LC 在乳酸桿菌MRS 肉湯培養(yǎng)基中培養(yǎng)48 h,使用PBS 洗滌。加入4% 十二烷基硫酸鈉(odium dodecyl sulfate,SDS)在37 ℃條件下孵育過夜,裂解細(xì)菌,用PBS 洗滌細(xì)胞壁片段,并與RNase、DNase 和胰蛋白酶孵育。將細(xì)胞壁片段超聲處理2 h,并在冰浴中冷卻。超聲處理后,細(xì)胞壁片段在4 ℃,6 000 r/min(半徑16 cm)離心20 min。上清液在4 ℃,6 000 r/min(半徑16 cm)離心1 h。以鼠李糖含量為基礎(chǔ),采用比色苯酚-硫酸法測定LCWE 濃度。

1.4 動物分組和KD 小鼠模型構(gòu)建 采用隨機(jī)數(shù)字表法將小鼠分為KD 組和PBS 組,每組8 只。KD 組小鼠單次腹腔注射0.5 mg/kg LCWE 構(gòu)建KD 小鼠模型,PBS組小鼠單次腹腔注射等量無菌PBS 作為對照。注射后14 d,采用隨機(jī)數(shù)字表法每組抽取6 只小鼠進(jìn)行冠狀動脈組織樣本采集。

1.5 細(xì)胞培養(yǎng)與KD 體外細(xì)胞模型構(gòu)建 MCAECs和RAW264.7 均接種于含有10%FBS 和1%青霉素-鏈霉素的DMEM 培養(yǎng)基中,放在CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。用1 μg/mL LCWE 刺 激RAW264.7 細(xì) 胞12 h 后,將RAW264.7 細(xì)胞的條件培養(yǎng)基與MCAECs 共孵育12 h,構(gòu)建KD 體外細(xì)胞模型[13]。

1.6 KD 小鼠模型觀測指標(biāo)

1.6.1 冠狀動脈組織病理學(xué)檢測 以頸椎脫臼法處死小鼠,打開胸腔,取出心臟,取小鼠冠狀動脈組織,常規(guī)石蠟包埋和切片,HE 染色,光學(xué)顯微鏡下觀察冠狀動脈組織病理學(xué)變化并拍照。

1.6.2 小鼠冠狀動脈組織中焦亡相關(guān)蛋白NLRP3、ASC、caspase-1、pro-caspase-1、GSDMD p30、IL-1β 和IL-18 蛋白表達(dá)水平檢測 采用Western blot 法。使用RIPA 裂解緩沖液提取小鼠冠狀動脈組織的總蛋白,采用BCA 法檢測蛋白質(zhì)濃度。通過SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白質(zhì)并轉(zhuǎn)移至聚偏二氟乙烯膜。將膜在5%脫脂牛奶中室溫封閉15 min,與一抗[NLRP3(1∶1 000)、ASC(1∶1 000)、caspase-1(1∶1 000)、procaspase-1(1∶1 000)、GSDMD p30(1∶1 000)、IL-1β(1∶1 000)、IL-18(1∶1 000)]在4 ℃下孵育過夜,然后用二抗在室溫下孵育1 h,使用超敏ECL 化學(xué)發(fā)光試劑盒使蛋白條帶可視化,通過Image J 軟件分析蛋白的相對表達(dá)水平。

1.6.3 小鼠冠狀動脈組織中miR-21-5p 表達(dá)水平檢測 采用qRT-PCR 法。通過Trizol 法提取小鼠冠狀動脈組織的總RNA,并檢測其濃度和純度。使用反轉(zhuǎn)錄試劑盒將RNA 反轉(zhuǎn)錄為cDNA。反應(yīng)體系為5×Evo M-MLVRT Master Mix 2 μL,RNA(1 000 ng,根據(jù)濃度加入相應(yīng)體積),RNase free water 補(bǔ)齊到10 μL;反應(yīng)條件為37 ℃15 min,85 ℃5 s,4 ℃,反應(yīng)結(jié)束。使用qRT-PCR 試劑盒在熒光定量PCR 儀上進(jìn)行檢測。反應(yīng)體系為SYBR Gree Mix 5 μL,cDNA 1 μL,正向引物0.5 μL,反向引物0.5 μL,純水補(bǔ)齊到10 μL。反應(yīng)條件為95 ℃預(yù)變性5 min,95 ℃變性30 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,循環(huán)數(shù)為40。最后,采用2-ΔΔCt法計(jì)算miRNA 相對表達(dá)水平。

1.7 KD 體外細(xì)胞模型觀測指標(biāo)

1.7.1 細(xì)胞分組處理 (1)根據(jù)是否使用LCWE 處理RAW264.7 細(xì) 胞,將MCAECs 分為LCWE 組和對 照 組;(2)在使用LCWE 處理RAW264.7 細(xì)胞的基礎(chǔ)上,根據(jù)轉(zhuǎn)染miR-21-5p inhibitor 或inhibitor-NC,將MCAECs分為LCWE+inhibitor-NC 組和LCWE+miR-21-5p inhibitor 組。(3)在使用LCWE 處理RAW264.7 細(xì)胞的基礎(chǔ)上,用或不用NLRP3 抑制劑MCC950(終濃度10 μmmol/L,處 理 時(shí) 間 為1 h)預(yù) 處 理;在LCWE 和MCC950 處理的基礎(chǔ)上,轉(zhuǎn)染miR-21-5p mimics 或miR-NC,根據(jù)以上處理將MCAECs 分為LCWE 組、LCWE+MCC950 組、LCWE+MCC950+miR-NC 組和LCWE+MCC950+miR-21-5p mimics 組。

1.7.2 細(xì)胞轉(zhuǎn)染 將MCAECs 置于含10%FBS 的DMEM 培養(yǎng)基中,待細(xì)胞生長至約70%~80%融合度時(shí),更換無血清培養(yǎng)基培養(yǎng)6 h。使用LipofectamineTM2000 轉(zhuǎn)染試劑分別將inhibitor-NC、miR-21-5p inhibitor、miR-NC 和miR-21-5p mimic 加入內(nèi)皮細(xì)胞培養(yǎng)物中孵育6 h 后,更換正常培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)48 h。

1.7.3 細(xì)胞活力檢測 采用CCK-8 法。將MCAECs 以每孔5×103個(gè)細(xì)胞的密度接種到96 孔板中。使用LCWE 刺激后,向培養(yǎng)基中添加10 μL CCK-8 溶液3 h。使用分光光度計(jì)測量波長450 nm 處的光密度(optically denser, OD)值。細(xì)胞活力計(jì)算公式:細(xì)胞活力=(OD實(shí)驗(yàn)組-OD空白組)/OD空白組×100%

1.7.4 細(xì)胞miR-21-5p 表達(dá)水平檢測 采用qRT-PCR法。使用Trizol 法提取各組細(xì)胞的總RNA,并檢測其濃度和純度。其余步驟參照1.6.3。

1.7.5 細(xì)胞NLRP3、ASC、caspase-1、pro-caspase-1、GSDMD p30、IL-1β 和IL-18 蛋白表達(dá)水平檢測 采用Western blot 法。使用RIPA 裂解液提取各組細(xì)胞蛋白,BCA 法檢測蛋白質(zhì)濃度。其余步驟參照1.6.2。

1.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用GraphPad Prism 9.0 統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)量資料兩組間比較采用兩獨(dú)立樣本t檢驗(yàn);多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用Tukey檢驗(yàn)。P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 兩組小鼠冠狀動脈組織中細(xì)胞焦亡相關(guān)蛋白和miR-21-5p 表達(dá)水平比較 HE 染色結(jié)果顯示,KD 組小鼠冠狀動脈發(fā)生明顯病變,可見冠狀動脈血栓形成,纖維組織增生,內(nèi)膜增厚,內(nèi)壁欠光滑,伴炎性細(xì)胞浸潤(圖1A),表明KD 模型構(gòu)建成功。Western blot 結(jié)果顯示,KD 組小鼠冠狀動脈組織中NLRP3、ASC、caspase-1、GSDMD p30、IL-1β 和IL-18 蛋白表達(dá)水平均明顯高于PBS 組(圖1B),提示KD 小鼠NLRP3炎癥小體介導(dǎo)的細(xì)胞焦亡增強(qiáng)。同時(shí),qRT-PCR 結(jié)果顯示,與PBS 組相比,KD 組小鼠冠狀動脈組織中miR-21-5p 表達(dá)水平升高(t=19.800,P<0.001)(圖1C)。

圖1 KD 小鼠冠狀動脈中的組織損傷、焦亡相關(guān)蛋白和miR-21-5p 表達(dá)變化(A:兩組小鼠冠狀動脈組織病理學(xué)形態(tài)變化的HE 染色圖;B:兩組小鼠冠狀動脈組織中焦亡相關(guān)蛋白表達(dá)的電泳圖;C:兩組小鼠冠狀動脈組織中miR-21-5p表達(dá)水平比較,aP<0.01)

2.2 細(xì)胞觀測指標(biāo)

2.2.1 LCWE 組和對照組細(xì)胞活力和miR-21-5p 表達(dá)水平比較 CCK-8 檢測結(jié)果表明,與對照組相比,LCWE 組細(xì)胞活力明顯降低(t=8.303,P<0.001),說明細(xì)胞模型構(gòu)建成功(圖2A)。與動物實(shí)驗(yàn)一致,qRT-PCR結(jié)果顯示,與對照組相比,LCWE 組細(xì)胞中miR-21-5p表達(dá)水平明顯升高(t=9.733,P<0.001)(圖2B),提示miR-21-5p 很可能與KD 密切相關(guān)。

圖2 LCWE 組和對照組細(xì)胞活力和miR-21-5p 表達(dá)水平比較(A:LCWE 組和對照組細(xì)胞活力比較;B:LCWE 組和對照組細(xì)胞miR-21-5p 表達(dá)水平比較)

2.2.2 LCWE+inhibitor-NC 組和LCWE+miR-21-5p inhibitor 組中miR-21-5p 表達(dá)水平和NLRP3 炎癥小體激活水平比較 qRT-PCR 結(jié)果顯示,與LCWE+inhibitor-NC 組相比,LCWE+miR-21-5p inhibitor 組miR-21-5p表達(dá)水平降低(t=7.019,P=0.002),這表明miR-21-5p inhibitor 被成功構(gòu)建及轉(zhuǎn)染(圖3A)。Western blot 結(jié)果顯示,與LCWE+inhibitor-NC 組相比,LCWE+miR-21-5p inhibitor 組NLRP3 和ASC 蛋白表達(dá)水平明顯降低(圖3B),這表明下調(diào)miR-21-5p 可以抑制LCWE 刺激內(nèi)皮細(xì)胞中NLRP3 炎癥小體激活。

圖3 LCWE+inhibitor-NC 組和LCWE+miR-21-5p inhibitor 組中miR-21-5p 表達(dá)水平和NLRP3 激活水平比較(A:LCWE+inhibitor-NC 組和LCWE+miR-21-5p inhibitor 組細(xì)胞miR-21-5p 表達(dá)水平比較,與LCWE+inhibitor-NC 組比較,aP<0.01;B:LCWE+inhibitor-NC 組和LCWE+miR-21-5p inhibitor 組細(xì)胞NLRP3、ASC 蛋白表達(dá)的電泳圖)

2.2.3 LCWE+inhibitor-NC 組和LCWE+miR-21-5p inhibitor 組細(xì)胞焦亡相關(guān)蛋白表達(dá)、細(xì)胞活力和LDH 活性比較 Western blot 進(jìn)一步檢測發(fā)現(xiàn),與LCWE+inhibitor-NC 組相比,LCWE+miR-21-5p inhibitor 組caspase-1、IL-1β、IL-18 蛋白表達(dá)均明顯降低(圖4A)。CCK-8 結(jié)果表明,與LCWE+inhibitor-NC 組相比,LCWE+miR-21-5p inhibitor 組細(xì)胞活力升高(t=4.035,P=0.016)(圖4B)。同時(shí),與LCWE+inhibitor-NC 組相比,LCWE+miR-21-5p inhibitor 組LDH 活性降低(t=3.661,P=0.022)(圖4C)。以上結(jié)果說明,下調(diào)miR-21-5p 抑制LCWE 刺激內(nèi)皮細(xì)胞的焦亡。

圖4 LCWE+inhibitor-NC 組和LCWE+miR-21-5p inhibitor 組細(xì)胞焦亡相關(guān)蛋白表達(dá)、細(xì)胞活力和LDH 活性比較(A:LCWE+ inhibitor-NC 組和LCWE+miR-21-5p inhibitor 組細(xì)胞焦亡相關(guān)蛋白表達(dá)的電泳圖;B:LCWE+inhibitor-NC 組和LCWE+miR-21-5p inhibitor 組細(xì)胞活力比較,與LCWE+inhibitor-NC 組比較,aP<0.01;C:LCWE+inhibitor-NC 組和LCWE+miR-21-5p inhibitor 組細(xì)胞LDH 活性比較,與LCWE+inhibitor-NC 組比較,aP<0.05)

2.2.4 miR-21-5p 通過激活NLRP3 炎癥小體誘導(dǎo)內(nèi)皮細(xì)胞焦亡

2.2.4.1 LCWE+miR-NC 組和LCWE+miR-21-5p mimics 組miR-21-5p 表達(dá)水平比較 qRT-PCR 結(jié)果顯示,與LCWE+miR-NC 組相比,LCWE+miR-21-5p mimics組miR-21-5p 表達(dá)水平升高(t=13.740,P<0.001)(圖5A),表明miR-21-5p mimics 被成功構(gòu)建和轉(zhuǎn)染。

圖5 miR-21-5p mimics 通過激活NLRP3 炎癥小體誘導(dǎo)內(nèi)皮細(xì)胞焦亡(A:LCWE+miR-NC 組和miR-21-5p mimics 組細(xì)胞miR-21-5p 表達(dá)水平比較,與LCWE+miR-NC 組比較,aP<0.01;B:4 組細(xì)胞中焦亡相關(guān)蛋白表達(dá)的電泳圖;C:4 組細(xì)胞中LDH 活性比較,與LCWE 組比較,aP<0.01,與LCWE+MCC950+miR-NC 組比較,aP<0.01;D:4 組細(xì)胞活力比較,與LCWE 組比較,bP<0.01,與LCWE+MCC950+miR-NC 組比較,bP<0.01)

2.2.4.2 4 組細(xì)胞焦亡相關(guān)蛋白表達(dá)、細(xì)胞活力和LDH 活性比較 使用MCC950 進(jìn)行干預(yù),Western blot 結(jié)果顯示,MCC950 處理下調(diào)LCWE 刺激MCAECs 中NLRP3、ASC、caspase-1、GSDMD p30、IL-1β 和IL-18 的蛋白表達(dá),然而進(jìn)一步轉(zhuǎn)染miR-21-5p mimics 逆轉(zhuǎn)MCC950 的上述作用(圖5B)。同時(shí),CCK-8 和LDH 檢測發(fā)現(xiàn),與LCWE 組相 比,LCWE+MCC950 組細(xì)胞活力增加(t=5.613,P=0.005)、LDH 活性降低(t=6.173,P=0.004);然而與LCWE+MCC950+miR-NC 組相比,LCWE+MCC950+miR-21-5p mimics 組細(xì)胞活力降低(t=4.810,P=0.009),LDH 活性增加(t=7.444,P=0.002)(圖5C-D)。以上結(jié)果表明,miR-21-5p 通過激活NLRP3 炎癥小體促進(jìn)LCWE刺激的內(nèi)皮細(xì)胞焦亡。

3 討論

內(nèi)皮細(xì)胞位于組織和血液循環(huán)之間的交界處,是維持正常全身生理功能的關(guān)鍵因素之一。內(nèi)皮細(xì)胞的損傷會促進(jìn)多種心血管疾病和代謝疾病的發(fā)生[14]。目前,在KD 期間因內(nèi)皮細(xì)胞損傷而引發(fā)的多種嚴(yán)重心血管并發(fā)癥仍是世界性難題[15]。深入研究KD 中內(nèi)皮細(xì)胞損傷的潛在機(jī)制對臨床診療具有重要的理論價(jià)值和意義。

miRNA 與KD 密切相關(guān),一項(xiàng)生物信息學(xué)研究指出,KD 患者外周血中miR-355、miR-2911 可以作為KD診斷的生物學(xué)標(biāo)志物[16]。臨床研究也表明,miRNA-122 與KD 患者的系統(tǒng)性炎癥有關(guān)[17]。近年來,miR-21-5p 與心血管疾病之間的關(guān)系已得到廣泛研究。有臨床研究表明,急性腦梗死患者血清中miR-21-5p表達(dá)與血清中IL-6、IL-8 含量呈正相關(guān)[18]。另一項(xiàng)臨床研究顯示,中度組、重度組動脈粥樣硬化患者血清中miR-21-5p 水平明顯高于輕度組[19]。本研究發(fā)現(xiàn)KD 模型小鼠冠狀動脈組織和LCWE 刺激的MCAECs模型中miR-21-5p 表達(dá)水平均明顯升高,而抑制miR-21-5p 則有效改善LCWE 刺激的MCAECs 細(xì)胞活力降低。表明miR-21-5p 很可能在KD 中發(fā)揮重要調(diào)節(jié)作用。

細(xì)胞焦亡是一種炎性細(xì)胞死亡,主要特征是細(xì)胞膜穿孔、釋放促炎因子以及細(xì)胞裂解。越來越多的證據(jù)顯示,細(xì)胞焦亡會引發(fā)心血管系統(tǒng)損傷,進(jìn)而促進(jìn)多種心血管疾病進(jìn)展,例如動脈粥樣硬化、心肌缺血/再灌注損傷以及KD[20-21]。小鼠實(shí)驗(yàn)表明,NLRP3-IL-1β 通路是KD 主要驅(qū)動因素[22]。NLRP3 是一種免疫受體,可識別來自細(xì)胞損傷、死亡、病原體等的刺激,NLRP3 蛋白激活后募集ASC 蛋白,隨后ASC 蛋白募集pro-caspase-1,并誘導(dǎo)其活化為caspase-1,合成由NLRP3、ASC 和pro-caspase-1 組成的NLRP3 炎癥小體(多種蛋白質(zhì)組成的復(fù)合體,誘導(dǎo)細(xì)胞在炎性和應(yīng)激的病理?xiàng)l件下死亡),并分泌炎性細(xì)胞因子如IL-1β 和IL-18,促進(jìn)焦亡[23-24]。NLRP3 炎癥小體介導(dǎo)的細(xì)胞焦亡是經(jīng)典焦亡途徑之一。NLRP3 炎癥小體介導(dǎo)的焦亡會導(dǎo)致多種內(nèi)皮細(xì)胞的功能障礙[25]。研究發(fā)現(xiàn),在結(jié)直腸癌細(xì)胞中過表達(dá)miR-21-5p 能明顯上調(diào)細(xì)胞焦亡[26]。本研究發(fā)現(xiàn)KD 模型小鼠冠狀動脈組織中miR-21-5p 表達(dá)、NLRP3 炎癥小體以及細(xì)胞焦亡相關(guān)蛋白均明顯升高。而在LCWE 刺激的MCAECs 中,抑制miR-21-5p 下調(diào)NLRP3 炎癥小體以及細(xì)胞焦亡。本研究進(jìn)一步通過MCC950 和miR-21-5p mimics 處理證明了miR-21-5p 是通過促進(jìn)NLRP3 炎癥小體的激活進(jìn)而促進(jìn)KD 血管內(nèi)皮細(xì)胞焦亡。

綜上所述,本研究闡明了miR-21-5p 與NLRP3 炎癥小體介導(dǎo)的細(xì)胞焦亡在KD 疾病進(jìn)展中的作用,為KD 的診斷和治療提供了一個(gè)有力的靶點(diǎn),并且為KD的機(jī)制研究提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

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