







中圖分類號 R965;R285 文獻標志碼 A 文章編號 1001-0408(2025)05-0529-06
DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2025.05.04
摘要 目的 研究歐前胡素(IMP)對乳腺癌多柔比星(DOX)耐藥的逆轉(zhuǎn)作用及可能機制。方法 采用MTT法考察IMP最大無毒質(zhì)量濃度(100 μg/mL)與DOX不同質(zhì)量濃度(12.5、25、50、75、100 μg/mL)聯(lián)用對MCF-7/DOX細胞增殖的影響;將MCF-7/DOX細胞分為空白對照組(1‰ 二甲基亞砜)、DOX 組(50 μg/mL)、IMP+DOX 組(100 μg/mL IMP+50 μg/mL DOX)和IMP 組(100μg/mL),檢測各組細胞中多藥耐藥蛋白1(MDR1)、多藥耐藥相關(guān)蛋白1 的mRNA及其蛋白表達水平;采用轉(zhuǎn)錄組測序技術(shù)及基因本體(GO)富集分析、京都基因與基因組百科全書(KEGG)通路富集分析篩選IMP改善乳腺癌DOX耐藥相關(guān)的通路和靶點,并進行驗證。結(jié)果 與單用DOX 比較,IMP 與DOX 聯(lián)用后,DOX 對MCF-7/DOX 細胞的半數(shù)抑制濃度從81.965 μg/mL 下降至43.170 μg/mL,耐藥逆轉(zhuǎn)倍數(shù)為1.90;且聯(lián)用可顯著下調(diào)MDR1 的mRNA表達(P<0.05)。GO富集分析和KEGG通路富集分析結(jié)果顯示,IMP逆轉(zhuǎn)乳腺癌DOX耐藥主要與調(diào)節(jié)解毒、多生物過程、細胞殺傷等生物過程有關(guān),主要涉及p53 信號通路,關(guān)鍵靶點為組成型光形態(tài)建成蛋白1(COP1)、細胞周期蛋白E1(CCNE1)、生長停滯和DNA損傷誘導蛋白45A(GADD45A)及GADD45B。驗證實驗結(jié)果顯示,與DOX組比較,IMP+DOX 組細胞中COP1 的mRNA表達有上調(diào)趨勢,但CCNE1、GADD45A及GADD45B的mRNA 表達均顯著下調(diào)(P<0.05)。結(jié)論 IMP 逆轉(zhuǎn)乳腺癌DOX 耐藥的作用可能與調(diào)控p53 信號通路中COP1、CCNE1、GADD45A及GADD45B的表達有關(guān)。
關(guān)鍵詞 歐前胡素;乳腺癌;多柔比星耐藥;轉(zhuǎn)錄組學;p53 信號通路
乳腺癌是女性最常見的惡性腫瘤,已成為全球女性癌癥死亡的主要原因[1]。目前,對乳腺癌的治療方法主要有手術(shù)治療、放療、化療等。多柔比星(doxorubicin,DOX)是一種蒽環(huán)類抗生素,對乳腺癌以及多種惡性腫瘤有效,是臨床應(yīng)用廣泛的抗癌化療藥。然而,部分患者在經(jīng)DOX 治療后會出現(xiàn)耐藥性,使其應(yīng)用受到限制[2]。因此,尋找化療增敏劑、改善乳腺癌耐藥是亟待解決的關(guān)鍵問題。
歐前胡素(imperatorin,IMP)是一種天然的呋喃香豆素,存在于白芷、大戟和當歸根等多種中藥中,具有抗腫瘤、抗炎、抗氧化和保護心血管等多種藥理作用[3]。近年來,IMP 作為潛在的抗癌藥物引起了人們的關(guān)注。IMP 可抑制肝癌、結(jié)腸癌、肺癌等多種不同腫瘤細胞的生長,其作用機制主要包括抑制腫瘤細胞增殖、侵襲、遷移,誘導腫瘤細胞凋亡、自噬和阻滯腫瘤細胞周期[3]。有研究發(fā)現(xiàn),IMP 可拮抗藥物外排蛋白的功能[4],增強DOX、紫杉醇、吉西他濱等化療藥物對腫瘤耐藥細胞的細胞毒作用[5―6],靶向髓樣細胞白血病蛋白1(myeloidcell leukemia-1,MCL-1)逆轉(zhuǎn)肝癌細胞對順鉑的耐藥性[7],靶向MCL-1 促進非特異性免疫T 淋巴細胞誘導CD 133+肺癌細胞凋亡[8]。上述研究提示,IMP具有抑制多種腫瘤細胞耐藥的作用,然而關(guān)于其對乳腺癌DOX耐藥是否有逆轉(zhuǎn)作用尚不明確。因此,本研究以人乳腺癌DOX耐藥株MCF-7/DOX為研究對象,考察IMP對乳腺癌DOX耐藥的影響,通過轉(zhuǎn)錄組學篩選IMP 對乳腺癌DOX耐藥的關(guān)鍵靶點,分析IMP 改善乳腺癌DOX耐藥的生物學途徑及相關(guān)信號通路,并對關(guān)鍵靶點進行驗證,旨在為闡明IMP 緩解乳腺癌DOX耐藥的作用及可能機制提供參考。
1 材料
1.1 主要儀器
本研究所用的主要儀器包括SpectraMax Plus384 型全波長酶標儀(美國Molecular Devices 公司),T100TMThermal Cycler 型PCR 儀、CFX96TM 型Real-Time PCR儀、Mini-PROTEAN?Tetra Cell 型電泳系統(tǒng)(美國Bio-Rad公司),MI52-N型倒置生物顯微鏡(廣州市明美光電技術(shù)有限公司),WJ-Ⅲ型二氧化碳細胞培養(yǎng)箱(上海新苗醫(yī)療器械制造有限公司)等。
1.2 主要藥品與試劑
IMP 對照品(批號PS000723,純度>98.0%)購自成都普思生物科技股份有限公司;鹽酸DOX原料藥(批號827G033,純度≥99%)購自北京索萊寶科技有限公司;MTT試劑(批號EZ7890B104)購自德國BioFroxx 公司;總RNA提取試劑盒、反轉(zhuǎn)錄試劑盒、熒光定量PCR試劑盒(批號分別為AM91949A、AM62046A、AMF1769A)均購自日本Takara公司;兔源多藥耐藥相關(guān)蛋白1(multidrugresistance-associated protein 1,MRP1)單克隆抗體(批號Ab260038)購自英國Abcam 公司;鼠源多藥耐藥蛋白1(multidrug resistance protein 1,MDR1)單克隆抗體、β-肌動蛋白(β-actin)單克隆抗體(批號分別為sc-55510、sc-47778)均購自美國Santa Cruz 公司;辣根過氧化物酶(HRP)標記的山羊抗兔二抗及山羊抗小鼠二抗(批號分別為H681481011、H681006001)均購自杭州華安生物技術(shù)有限公司;MEM培養(yǎng)基(批號MA0217-Nov-08H)購自大連美侖生物技術(shù)有限公司;胎牛血清(批號A121028)購自美國Gemini 公司;RIPA 裂解緩沖液、BCA 蛋白濃度測定試劑盒、ECL 發(fā)光試劑盒及顯影定影試劑盒(批號分別為112023240207、070721211202、022823230802、042420201023)均購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司。
1.3 細胞
人乳腺癌耐DOX細胞株MCF-7/DOX 購自中國科學院細胞庫。
2 方法與結(jié)果
2.1 細胞培養(yǎng)
參考文獻[9]方法培養(yǎng)MCF-7/DOX細胞。
2.2 IMP對MCF-7/DOX細胞活力的影響
參考文獻[9]方法,采用MTT 法考察12.5、25、50、100、200 μg/mL 的IMP 對MCF-7/DOX 細胞活力的影響,每個質(zhì)量濃度設(shè)置6 個復孔;以含1‰二甲基亞砜(DMSO)的培養(yǎng)基為空白對照。藥物作用48 h 后,采用酶標儀于492 nm 波長處檢測各孔光密度(optical density,OD)值并計算細胞存活率。細胞存活率(%)=藥物孔OD 值/空白對照孔OD 值×100%。采用GraphPadPrism 8.0 軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析;符合正態(tài)分布的定量資料以x±s 表示,采用單因素方差分析進行多組間比較,進一步組間兩兩比較采用Tukey 檢驗;檢驗水準α=0.05。結(jié)果見圖1。
由圖1 可知,與空白對照比較,200 μg/mL 的IMP可顯著降低MCF-7/DOX 細胞存活率(P<0.05),而12.5~100 μg/mL 的IMP 對該細胞存活率無明顯影響(P>0.05)。因此,本研究選用100 μg/mL 作為最大無毒質(zhì)量濃度繼續(xù)后續(xù)實驗。
2.3 IMP與DOX聯(lián)用對MCF-7/DOX細胞增殖的影響
將細胞以8 000 個/孔的密度接種于96 孔板中,培養(yǎng)24 h 后加藥。細胞分為空白對照組、DOX不同質(zhì)量濃度組、IMP(100 μg/mL)+DOX不同質(zhì)量濃度組,每組設(shè)置6 個復孔。根據(jù)本課題組前期研究[9]將DOX質(zhì)量濃度設(shè)定為12.5、25、50、75、100 μg/mL,空白對照組加入1.5‰DMSO。藥物作用48 h 后,采用MTT法測定各孔OD值,計算細胞增殖抑制率,并計算藥物對細胞的半數(shù)抑制濃度(half maximal inhibitory concentration,IC50)和耐藥逆轉(zhuǎn)倍數(shù)(reverse fold,RF)。細胞增殖抑制率(%)=(空白對照組OD值-藥物組OD值)/空白對照組OD 值×100%;RF=DOX 單用組IC50/IMP 和DOX 聯(lián)用組IC50。結(jié)果顯示,DOX不同質(zhì)量濃度組、IMP+DOX不同質(zhì)量濃度組細胞的增殖均受到不同程度影響,且細胞增殖抑制率隨著DOX質(zhì)量濃度的升高而升高。DOX單獨使用時,其對MCF-7/DOX細胞的IC50為81.965 μg/mL;DOX 和IMP 聯(lián)用時,其對細胞的IC50 下降為43.170μg/mL,RF為1.90。
2.4 IMP與DOX聯(lián)用對MCF-7/DOX細胞耐藥相關(guān)基因表達的影響
參考文獻[9]方法,將MCF-7/DOX細胞以1×105個/皿的密度接種于直徑35 mm的培養(yǎng)皿中,培養(yǎng)24 h 后,隨機分為空白對照組(1‰DMSO)、DOX 組(50 μg/mL)、IMP+DOX 組(100 μg/mL IMP+50 μg/mL DOX)和IMP組(100 μg/mL),每組設(shè)置6 個復孔。藥物作用48 h 后,按照Trizol 試劑盒說明書方法提取細胞中總RNA,并對其進行純度和質(zhì)量檢驗。取1 μg RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,并以cDNA為模板采用熒光定量PCR儀進行擴增[引物序列由本課題組自行設(shè)計,由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,引物序列及產(chǎn)物長度見表1]。PCR反應(yīng)體系(20 μL)如下:cDNA 模板2 μL,PCR 試劑10 μL,正、反向引物各1 μL,dd H2O 6 μL。擴增條件如下:95 ℃預變性30 s;95 ℃變性10 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,共40 個循環(huán)。以GAPDH為內(nèi)參,采用雙標準曲線法計算目的基因MDR1、MRP1 的相對表達量,并以空白對照組為參照進行歸一化處理。按“2.2”項下方法進行數(shù)據(jù)分析。結(jié)果(表2)顯示,與空白對照組比較,DOX組、IMP+DOX組細胞中MDR1、MRP1 的mRNA以及IMP 組細胞中MDR1 的mRNA表達均顯著下調(diào)(P<0.05);與DOX 組比較,IMP+DOX 組細胞中MDR1 的mRNA表達進一步下調(diào)(P<0.05)。
2.5 IMP與DOX聯(lián)用對MCF-7/DOX細胞耐藥相關(guān)蛋白表達的影響
細胞接種、分組和加藥同“2.4”項下。藥物作用48 h后,提取細胞中總蛋白,采用BCA試劑盒測定總蛋白濃度,100 ℃下加熱6 min 進行蛋白變性。取10 μg 蛋白樣品經(jīng)10%SDS-PAGE 凝膠電泳(100 V 恒壓)分離,電泳結(jié)束后,在90 V恒壓下轉(zhuǎn)至PVDF膜,采用5% 牛血清白蛋白室溫封閉1 h;加入MDR1(稀釋比例1∶500)、MRP1(稀釋比例1∶1 500)、β-actin(稀釋比例1∶500)一抗,4 ℃孵育過夜;以PBST 漂洗,加入HRP 標記的山羊抗兔二抗(稀釋比例1∶20 000)、山羊抗小鼠二抗(稀釋比例1∶10 000),室溫孵育1 h;以PBST 再次漂洗,利用ECL 發(fā)光液顯影,采用Image J 軟件分析各蛋白條帶灰度值,并以目的蛋白與內(nèi)參蛋白(β-actin)條帶灰度值的比值表示目的蛋白的表達水平(結(jié)果以空白對照組為參照進行歸一化處理)。按“2.2”項下方法進行數(shù)據(jù)分析。結(jié)果(表2、圖2)顯示,與空白對照組比較,IMP+DOX 組細胞中MDR1、MRP1 蛋白及IMP 組細胞中MDR1 蛋白的表達均顯著下調(diào)(P<0.05)。
2.6 轉(zhuǎn)錄組學實驗篩選IMP 逆轉(zhuǎn)乳腺癌DOX耐藥的關(guān)鍵靶點
2.6.1 RNA測序及cDNA文庫構(gòu)建
細胞接種、分組和加藥同“2.4”項下。藥物作用48 h后,每組收集3 個樣本,快速凍存于液氮中,采用干冰保存運輸至北京百邁客生物科技有限公司進行RNA 測序,并通過PCR富集得到cDNA文庫。將轉(zhuǎn)錄組測序所得的“Raw Data”過濾,得到“Clean Data”,并將后者與指定的參考基因組進行序列比對,得到“Mapped Data”,然后通過插入片段長度檢測、隨機性檢驗等進行cDNA文庫質(zhì)量評估。
2.6.2 生物信息學分析
根據(jù)轉(zhuǎn)錄本在各樣本中的表達量進行差異表達分析:采用DESeq2_EBSeq 軟件篩選差異表達基因(differentiallyexpressed genes,DEGs),篩選標準為錯誤發(fā)現(xiàn)率(1 discovery rate,F(xiàn)DR)<0.01 且︱log2FC︱≥2[式中,F(xiàn)C 為差異倍數(shù)(fold change)][10]。采用R 包cluster‐Profiler 對DEGs進行基因本體(gene ontology,GO)富集分析和京都基因與基因組百科全書(Kyoto Encyclopediaof Genes and Genomes,KEGG)通路富集分析,通過CytoScape 3.7.2軟件將結(jié)果進行可視化展示。
DEGs 分析結(jié)果(圖3)顯示,與空白對照組比較,DOX 組細胞中上調(diào)基因1 134 個,下調(diào)基因91 個;與DOX組比較,IMP+DOX組細胞中上調(diào)基因641 個,下調(diào)基因998 個。
GO富集分析結(jié)果表明,所有DEGs 被注釋到60 個功能類別中,包括24 個生物過程、19 個細胞組分、17 個分子功能,詳見表3(該表僅列出了每個功能類別的前10項)。
KEGG 通路富集分析結(jié)果顯示,與空白對照組比較,DOX組細胞中有500 個DEGs,涉及核糖體、溶酶體、抗原加工和呈遞、吞噬體以及p53 信號通路等270 條信號通路;與DOX 組比較,IMP+DOX 組細胞中有514 個DEGs,涉及叉頭框蛋白O(forkhead box protein O,F(xiàn)oxO)、絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated proteinkinase,MAPK)以及p53 等271 條信號通路。選取排前20 名的信號通路繪制可視化氣泡圖,詳見圖4。由圖4可知,在空白對照組和DOX組、DOX組和IMP+DOX組DEGs 富集得到的前20 條信號通路中,p53 信號通路為二者共有,因此,本研究進一步對與p53 信號通路相關(guān)的DEGs進行可視化分析。結(jié)果發(fā)現(xiàn),空白對照組和DOX組、DOX組和IMP+DOX組之間存在共同的DEGs,分別為COP1、CCNE1、GADD45A和GADD45B。
2.7 關(guān)鍵靶點的基因表達驗證
采用熒光定量PCR 實驗驗證組成型光形態(tài)建成蛋白1(constitutively photomorphogenic 1,COP1)、細胞周期蛋白E1(cyclin E1,CCNE1)、生長停滯和DNA損傷誘導蛋白45A(growth arrest and DNA damage inducibleprotein 45A,GADD45A)、GADD45B等關(guān)鍵靶點的基因表達情況。其引物序列及產(chǎn)物長度見表1,具體測定方法同“2.4”項下,數(shù)據(jù)分析方法同“2.2”項下。
結(jié)果(表4)顯示,與空白對照組比較,DOX組細胞中COP1 的mRNA 表達顯著下調(diào)(P<0.05),CCNE1、GADD45B 的mRNA 表達顯著上調(diào)(P<0.05);IMP+DOX 組細胞中COP1、CCNE1、GADD45A、GADD45B的mRNA 表達均顯著下調(diào)(P<0.05);IMP 組細胞中COP1 的mRNA表達顯著下調(diào)(P<0.05)。與DOX組比較,IMP+DOX 組細胞中COP1 的mRNA 表達呈上調(diào)趨勢,但CCNE1、GADD45A、GADD45B 的mRNA 表達均顯著下調(diào)(P<0.05)。
3 討論
DOX屬于蒽環(huán)類抗生素,是臨床乳腺癌治療的常用一線化療藥物,但部分乳腺癌患者對蒽環(huán)類抗生素具有耐藥性,限制了該類藥物的臨床使用。ATP結(jié)合盒轉(zhuǎn)運蛋白(如MDR1 和MRP1 等)高表達是腫瘤細胞耐藥的主要原因,其可外排抗腫瘤藥物,減弱抗腫瘤藥物的細胞毒作用[11]。一些中藥單體成分如香豆素類化合物、黃酮類化合物可通過作用于MDR1 和MRP1 來增強蒽環(huán)類藥物的抗腫瘤作用[12]。現(xiàn)有研究顯示,IMP 不論單獨使用還是與蒽環(huán)類藥物聯(lián)用均可下調(diào)MDR1 表達,抑制MDR1 介導的藥物外排,逆轉(zhuǎn)腫瘤化療耐藥[5]。本研究結(jié)果顯示,IMP 可增強乳腺癌MCF-7/DOX 細胞對DOX的敏感性,且IMP 與DOX 聯(lián)用可協(xié)同降低細胞中MDR1、MRP1 的mRNA及其蛋白表達水平,逆轉(zhuǎn)MCF-7/DOX細胞的DOX耐藥。
研究表明,p53 是一種重要的腫瘤抑制因子,其被激活后可調(diào)控細胞周期阻滯、DNA修復、細胞凋亡等多種生物學過程,從而抑制腫瘤細胞的生長或惡性轉(zhuǎn)化[13]。已有研究證實,IMP 可通過調(diào)節(jié)p53 信號通路和胱天蛋白酶級聯(lián)反應(yīng)來誘導腫瘤細胞凋亡[14]。本研究選擇p53信號通路進行DEGs的KEGG通路富集分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn),空白對照組和DOX組、DOX組和IMP+DOX 組之間存在4 種共同的DEGs,分別為COP1、CCNE1、GADD45A和GADD45B。COP1 具有E3 泛素連接酶活性,其在乳腺癌中呈雙重作用——在雌激素受體α陽性乳腺癌患者中高表達,誘導細胞增殖;而在三陰性乳腺癌患者中低表達,導致他莫昔芬耐藥[15]。CCNE1 是細胞周期進程中的重要調(diào)控因子。研究顯示,CCNE1 在人乳腺癌帕博西尼耐藥細胞MCF7-palR 和T47D-palR 中高表達,沉默CCNE1 基因可恢復乳腺癌耐藥細胞對帕博西尼的敏感性[16]。GADD45 是DNA損傷修復的關(guān)鍵基因,GADD45表達水平的高低對不同類型腫瘤細胞的耐藥性會產(chǎn)生不同的影響。有研究顯示,上調(diào)伊馬替尼耐藥株人慢性髓系白血病細胞K562IR 中GADD45A 的表達,可增強其對伊馬替尼的敏感性[17];而高水平的GADD45B可增強前列腺癌細胞對化療藥物的敏感性[18]。也有研究認為,下調(diào)GADD45A的表達可增強黑色素瘤細胞對順鉑的敏感性[19],下調(diào)GADD45B的表達可提高人肺腺癌細胞PC-9 對吉非替尼的敏感性[20]。本研究結(jié)果顯示,IMP可通過調(diào)節(jié)p53 信號通路,作用于COP1、CCNE1、GADD45A及GADD45B靶點,發(fā)揮逆轉(zhuǎn)乳腺癌DOX耐藥作用。
綜上所述,IMP 聯(lián)合DOX可增強MCF-7/DOX細胞對DOX 的敏感性,抑制細胞增殖,協(xié)同降低細胞中MDR1、MRP1 的mRNA及其蛋白表達水平。IMP 改善MCF-7/DOX細胞DOX耐藥的作用機制與調(diào)控p53 信號通路中COP1、CCNE1、GADD45A及GADD45B 的表達有關(guān)。
參考文獻
[ 1 ] SIEGEL R L,GIAQUINTO A N,JEMAL A. Cancer statistics,2024[J]. CA A Cancer J Clinicians,2024,74(1):12-49.
[ 2 ] AL-MALKY H S,AL HARTHI S E,OSMAN A M. Majorobstacles to doxorubicin therapy:cardiotoxicity anddrug resistance[J]. J Oncol Pharm Pract,2020,26(2):434-444.
[ 3 ] NASSER M I,ZHU S J,HU H Y,et al. Effects of imperatorinin the cardiovascular system and cancer[J]. BiomedPharmacother,2019,120:109401.
[ 4 ] WU C P,MURAKAMI M,LI Y C,et al. Imperatorin restoreschemosensitivity of multidrug-resistant cancer cellsby antagonizing ABCG2-mediated drug transport[J]. Pharmaceuticals(Basel),2023,16(11):1595.
[ 5 ] LIANG X L,JI M M,LIAO Z G,et al. Chemosensitizingeffect and mechanism of imperatorin on the anti-tumor activityof doxorubicin in tumor cells and transplantation tumormodel[J]. Korean J Physiol Pharmacol,2022,26(3):145-155.
[ 6 ] MA M J,SHI Y H,LIU Z D,et al. N6-methyladenosinemodified TGFB2 triggers lipid metabolism reprogrammingto confer pancreatic ductal adenocarcinoma gemcitabineresistance[J]. Oncogene,2024,43(31):2405-2420.
[ 7 ] HU J J,XU C L,CHENG B H,et al. Imperatorin acts as acisplatin sensitizer via downregulating Mcl-1 expressionin HCC chemotherapy[J]. Tumour Biol,2016,37(1):331-339.
[ 8 ] YOU C X,YANG Y,GAO B L. Imperatorin targets MCL-1 to sensitize CD133+ lung cancer cells to γδ -T cellmediatedcytotoxicity[J]. Cell Physiol Biochem,2018,49(1):235-244.
[ 9 ] 湯喜蘭,李洪銘,梁新麗,等. 苦瓜素Ⅰ抑制乳腺癌MCF-7/DOX 細胞多柔比星耐藥的研究[J]. 中國醫(yī)院藥學雜志,2021,41(13):1293-1298.
TANG X L,LI H M,LIANG X L,et al. Suppression ofmomordicin Ⅰ on the resistance of breast cancer MCF-7/DOX cells to doxorubicin[J]. Chin J Hosp Pharm,2021,41(13):1293-1298.
[10] 譚睿陟,鐘霞,王麗,等. 蛭龍活血通瘀膠囊對小鼠腦出血及長鏈非編碼RNA 和靶基因的影響[J]. 中國藥房,2022,33(12):1421-1429.
TAN R Z,ZHONG X,WANG L,et al. Effects of Zhilonghuoxue tongyu capsules on intracerebral hemorrhage,LncRNA and target genes in mice[J]. China Pharm,2022,33(12):1421-1429.
[11] ALKETBI L,AL-ALI A,TALAAT I M,et al. The role ofATP-binding cassette subfamily A in colorectal cancer progressionand resistance[J]. Int J Mol Sci,2023,24(2):1344.
[12] 吳杰,葉娟,曾智,等. 中藥單體對阿霉素增效減毒作用研究進展[J]. 中醫(yī)藥學報,2021,49(9):111-120.
WU J,YE J,ZENG Z,et al. Research progress on synergyand attenuation of adriamycin by Chinese medicine monomer[J]. Acta Chin Med Pharmacol,2021,49(9):111-120.
[13] HUANG J. Current developments of targeting the p53 signalingpathway for cancer treatment[J]. Pharmacol Ther,2021,220:107720.
[14] ZHENG Y M,LU A X,SHEN J Z,et al. Imperatorin exhibitsanticancer activities in human colon cancer cells viathe caspase cascade[J]. Oncol Rep,2016,35(4):1995-2002.
[15] TANG S C,LION Q,PEULEN O,et al. The E3 ligaseCOP1 promotes ERα signaling and suppresses EMT inbreast cancer[J]. Oncogene,2022,41(2):173-190.
[16] CAI Z J,WANG J R,LI Y D,et al. Overexpressed CyclinD1 and CDK4 proteins are responsible for the resistanceto CDK4/6 inhibitor in breast cancer that can be reversedby PI3K/mTOR inhibitors[J]. Sci China Life Sci,2023,66(1):94-109.
[17] 劉雪妮,王超,程艷紅,等. 慢病毒載體上調(diào)GADD45α增強伊馬替尼耐藥株K562IR 細胞的藥物敏感性[J]. 安徽醫(yī)科大學學報,2021,56(12):1920-1924.
LIU X N,WANG C,CHENG Y H,et al. Upregulation ofGADD45α by lentivirus vector enhances the drug-sensitivityof imatinib-resistant K562IR cells[J]. Acta Univ MedAnhui,2021,56(12):1920-1924.
[18] WANG Q,WU W H,GAO Z,et al. GADD45B is a potentialdiagnostic and therapeutic target gene inchemotherapy-resistant prostate cancer[J]. Front Cell DevBiol,2021,9:716501.
[19] LIU J,JIANG G Q,MAO P,et al. Down-regulation ofGADD45A enhances chemosensitivity in melanoma[J].Sci Rep,2018,8(1):4111.
[20] 胡皓,闕凱琳,彭昊,等. 下調(diào)生長阻滯和DNA損傷誘導蛋白45β表達對PC9 肺腺癌細胞的影響[J]. 中南大學學報(醫(yī)學版),2018,43(11):1209-1215.
HU H,QUE K L,PENG H,et al. Effect of downregulationof growth arrest and DNA damage inducibleprotein 45β on PC9 lung adenocarcinoma cells[J]. J CentSouth Univ Med Sci,2018,43(11):1209-1215.
(收稿日期:2024-08-26 修回日期:2025-02-17)
(編輯:林靜)
基金項目國家自然科學基金項目(No.82060733);江西省衛(wèi)生健康委科研課題(No.202311141);江西科技師范大學創(chuàng)新訓練項目(No.XJ202411318115);江西中醫(yī)藥大學校級課題(No.jzyjg-2023-07)