李繼發 王世金 郭恒照 (濟寧市任城區兗礦集團第三醫院,山東 濟寧 707)
2型糖尿病是一種自然免疫和低度炎癥性疾病,細胞因子是導致代謝綜合征的主要原因,而炎癥是胰島素抵抗的觸發因素〔1〕。甚至在亞臨床階段,慢性炎癥就參與了胰島素抵抗綜合征的發生〔2〕。在整個炎癥網絡中,核因子 κB(NF-κB)是研究的熱點之一。NF-κB抑制蛋白(I-κB)激酶/NF-κB炎癥通路活化是導致胰島素抵抗和糖尿病的重要機制之一〔3〕。張冬梅等〔4〕研究表明,藻藍蛋白在腦缺血損傷中具有抗炎和神經保護作用,但其在2型糖尿病病理生理過程中是否具有抗炎作用尚未見報道。為此,本實驗建立2型糖尿病大鼠,試圖應用藻藍蛋白進行干預,研究其對胰島細胞功能的影響和機制。
1.1 動物模型 健康雄性Wistar大鼠30只,體重120~140 g,由青島市藥檢所實驗動物中心提供〔SCXK(魯)20030010〕。動物均于實驗前置于實驗室適應環境1 w,自由飲食,室溫(23±2)℃,自然光照,相對濕度50% ~70%。隨機分為對照組、模型組和治療組各10只。對照組10只大鼠喂以普通飼料,其余2組均喂以高糖高脂飼料(15%豬油、20%蔗糖、13%蛋黃粉、2%膽酸鈉、59%普通飼料),飼養4 w后禁食12 h,以30 mg/kg的劑量一次性腹腔注射1%鏈脲佐菌素(STZ)檸檬酸緩沖液,對照組大鼠同步注射同劑量的檸檬酸緩沖液。注射4 w后分別剪尾取血,測空腹血糖(FBG),以血糖值≥7.0 mmol/L視為糖尿病模型建立成功〔5〕,其中16只造模成功。
1.2 干預措施 糖尿病模型成功后開始干預治療。藻藍蛋白粉劑(中國科學院海洋研究所提供)暗室分裝后-20℃保存,加蒸餾水稀釋至濃度為10%的混懸液,按500 mg/kg體重灌胃,每天1次,連續10 d。對照組和病模型組同步給予等體積的生理鹽水,連續灌胃10 d。
1.3 FBG測定 各組動物分別在造模前、造模后、治療后測定FBG(mmol/L)。測前,大鼠禁食、禁水12 h,次日鼠尾靜脈取血,用自動血糖儀(強生醫療器材有限公司,穩豪型)測定FBG。
1.4 標本采集及處理 治療結束后,各組大鼠10%水合氯醛腹腔注射麻醉,4%多聚甲醛心臟灌注固定,取胰腺組織,常規梯度酒精脫水,二甲苯透明,石蠟包埋,LEICA2135石蠟切片機連續切片,厚度5 μm,每隔10片取1片,每個標本取6片,分別裱于涂有多聚賴氨酸的載玻片上,室溫保存備用。
1.5 細胞凋亡檢測 TUNEL試劑盒由武漢博士德生物公司提供。取上述切片置于60℃烤箱1 h,常規脫蠟,蒸餾水浸泡2 min,按試劑盒說明書操作,DAB顯色,光鏡下細胞核出現片狀棕黃色顆粒者為陽性著色,即凋亡細胞。部分切片不加探針,以0.1 mol/L PBS替代染色,不出現陽性著色。在光鏡(400倍)下觀察,每張切片隨機選取4個視野,計數每個視野100個胰島細胞中凋亡細胞所占的百分比的均數即為凋亡指數(AI)。
1.6 免疫組化染色 NF-κB p65和I-κB親和純化抗體、即用型SABC試劑盒、DAB顯色試劑盒,均由武漢博士德生物公司提供。取上述切片置于60℃烤箱烤片1 h,常規脫蠟,蒸餾水浸泡2 min,嚴格按試劑盒說明書操作,DAB顯色,光鏡下特異性染色為棕黃色粗顆粒。部分切片不加一抗以0.1 mol/L PBS替代染色,不出現陽性著色。在光鏡(400倍)下觀察,每張切片隨即選擇4個視野,計數每個視野內胰島細胞團中NF-κB和I-κB的陽性細胞數及胰島細胞的總數。
1.7 統計學處理 采用SPSS11.5軟件,計量資料結果以表示,兩組間比較采用t檢驗,多組間比較采用方差分析。
2.1 FBG 造模前各組大鼠FBG無統計學差異,造模后大鼠FBG較對照組明顯升高(P<0.05)。經藻藍蛋白治療后,大鼠FBG較模型組顯著下降(P<0.05)。見表1。
表1 各組大鼠FBG比較(,mmol/L)

表1 各組大鼠FBG比較(,mmol/L)
與對照組比較:1)P<0.05;與模型組比較:2)P<0.05
造模前 造模后 治療后對照組組別 n 10 3.28±0.43 3.48±0.50 3.91±0.71模型組 8 3.33±0.23 9.15±1.201) 8.94±0.901)治療組 8 3.15±0.31 9.75±1.251) 7.05±0.871)2)
2.2 胰島細胞凋亡 對照組大鼠胰島可見少量散在的凋亡陽性細胞,模型組大鼠胰島邊界模糊,陽性細胞較對照組明顯增多(P<0.05),治療組大鼠胰島邊界較清晰,凋亡陽性細胞較模型組顯著減少(P<0.05)。見表2和圖1。
表2 各組大鼠胰島細胞AI、NF-κB和I-κB表達的比較()

表2 各組大鼠胰島細胞AI、NF-κB和I-κB表達的比較()
與對照組比較:1)P<0.05;與模型組比較:2)P<0.05
組別 n AI(%) NF-κB(%) I-κB(%)10 6.00±1.63 15.7±1.83 78.5±2.55模型組 8 20.75±2.501) 38.3±3.811) 31.2±4.801)治療組 8 12.25±2.221)2) 20.6±3.201)2) 58.0±5.261)2)對照組
2.3 NF-κB和I-κB表達 對照組大鼠胰島細胞質NF-κB表達較強,顯棕黃色。糖尿病模型組大鼠胰島細胞核NF-κB表達顯著增強,細胞核呈明顯棕黃色著色,細胞質幾乎不著色。藻藍蛋白治療組大鼠胰島細胞核NF-κB表達較模型組明顯降低,細胞核呈淡黃色(圖2和表2)。對照組大鼠胰島細胞質呈深棕黃色著色,細胞核幾乎不著色。糖尿病模型組大鼠胰島細胞核、質表達明顯減弱。藻藍蛋白治療組大鼠胰島細胞質有棕黃色著色,較糖尿病組加深(圖3和表2)。

圖1 各組大鼠胰島凋亡細胞數量比較(TUNEL,×400)

圖2 各組大鼠胰島細胞NF-κB的表達(SABC,×400)

圖3 各組大鼠胰島細胞I-κB的表達(SABC,×400)
研究表明,大鼠胰腺是STZ毒性損傷的靶器官,STZ可以通過一氧化氮和自由基等途徑損傷胰島β細胞誘發糖尿病〔6〕,而自由基是激活NF-κB的因素之一。由此推測,糖尿病大鼠胰腺中有I-κB/NF-κB通路的活化。本實驗NF-κB免疫組化結果可見,正常組大鼠胰島細胞團中胰島細胞質呈明顯棕黃色著色,只局部胰島細胞核有著色,而糖尿病大鼠胰島細胞團中胰島細胞核呈明顯棕黃色著色,細胞質幾乎不著色。I-κB免疫組化結果顯示,正常組大鼠胰島細胞質呈深棕黃色著色,細胞核幾乎不著色,而糖尿病組大鼠胰島細胞核、質幾乎都不著色。這正體現了I-κB被降解后,激活的NF-κB從細胞質到細胞核的轉移過程。藻藍蛋白干預組大鼠NF-κB的免疫組化結果可見,胰島細胞核著淡棕黃色,著色程度較糖尿病組明顯減輕。I-κB的免疫組化結果顯示,藍藻蛋白干預組大鼠胰島細胞質有棕黃色著色,著色程度較糖尿病組加深。表明藥物干預后I-κB的活性可能有所恢復,NF-κB在胰島細胞核中的表達降低。這提示藻藍蛋白可能具有抑制I-κB/NF-κB通路活化的作用。
長期高血糖使胰島素需求不斷增加,β細胞處于持續活化狀態,一方面削弱胰島β細胞合成和分泌胰島素的功能,使葡萄糖刺激的胰島素分泌減少,甚至缺失;另一方面,長期高血糖加速β細胞凋亡,使有功能的β細胞數量減少,兩者共同作用加重了胰島β細胞功能的衰竭。導致β細胞凋亡的因素很多,例如胰淀素、葡萄糖、游離脂肪酸、細胞因子、一氧化氮、活性氧簇等〔7〕。沙鼠實驗發現隨著血糖的增高,β細胞的凋亡頻率逐步上升〔8〕。本實驗結果顯示,造模成功后,大鼠 FBG顯著升高,胰島凋亡細胞是明顯增多,經藻藍蛋白治療后,大鼠FBG較模型組顯著下降、胰島細胞凋亡數量明顯減少。推測藻藍蛋白可能作用于胰島β細胞,保護胰島β細胞,減少其凋亡,但其具體機制有待進一步研究。
1 Dandona P,Aljada A,Bandyopadhyay A.Inflammation:the link between insulin resistance,obesity and diabetes〔J〕.Trends Immunol,2004;25(1):4-7.
2 Festa A,D'Agostino R Jr,Howard G,et al.Chronic subclinical inflammation as part of the insulin resistance syndrome:the Insulin Resistance Atherosclerosis Study(IRAS)〔J〕.Circulation,2002;102(1):42-7.
3 Blaak EE.Fatty acid metabolism in obesity and type 2 diabetes mellitus〔J〕.Proc Nutr Soc,2003;62(6):753-60.
4 張冬梅,劉吉東,陳紅兵,等.藻藍蛋白對腦缺血再灌注后NF-κB和IL-6表達及神經細胞凋亡的影響〔J〕.中國海洋藥物,2005;24(1):6-10.
5 郭嘯華,志 紅,李 恒,等.高糖高脂飲食誘導的2型糖尿病大鼠模型及其腎病特點〔J〕.中國糖尿病雜志,2002;10(2):290-2.
6 Takasa N,Komiya I,Asawa T,et al.Streptozotocin and alloxan-induced H2O2generation and DNA fragmentation in pancreatic islets.H2O2as mediator for DNA fragmentation〔J〕.Diabetes,1991;40:1141-5.
7 Mandrup-Poulsen T.Apoptotic signal transduction pathways in diabetes〔J〕.Biochem Pharmacol,2003;66:1433-9.
8 Donath MY,Gross DJ,Cerasi E,et al.Hyperglycemia-induced beta-cell apoptosis in pancreatic islets of Psammomys obesus during development of diabetes〔J〕.Diabetes,1999;48:738-46.