謝湘竹,趙水平,于碧蓮,鐘巧青
目前認為,炎性反應參與了動脈粥樣硬化的發生發展過程[1]。脂肪細胞和脂肪組織不僅參與脂質和能量代謝,而且還參與了炎性反應,兩者在動脈粥樣硬化形成過程中的作用極其重要。氧化型低密度脂蛋白(oxLDL)具有致動脈粥樣硬化作用,還在局部慢性炎性反應中起一定的作用[2]。他汀類藥物具有獨立于降膽固醇以外的多效性作用[3-5]。本文旨在研究阿托伐他汀對oxLDL刺激狀態下脂肪細胞炎性因子表達的影響,并探討其可能的作用機制。
1.1 材料 3T3-L1前脂肪細胞株購自中國科學院上海生命科學研究院,高糖DMEM培養基購自美國Sigma公司,胰蛋白酶購自美國Gibco公司,胎牛血清購自杭州四季青生物工程材料有限公司,胰島素、地塞米松、3-異丁基-1-甲基黃嘌呤(IBMX)、oxLDL購自美國Sigma公司,阿托伐他汀原粉由北京紅惠制藥公司饋贈,TRIzol購自美國Invitrogen公司,逆轉錄試劑盒購自美國Promega公司,引物由北京奧科生物技術有限責任公司合成,核因子-κB(NF-κB)活性檢測試劑盒購自Active Motif公司。
1.2 方法
1.2.1 3T3-L1前脂肪細胞培養、誘導分化與鑒定:根據3T3-L1前脂肪細胞培養和誘導分化方案[6],用完全培養基(高糖DMEM+10%胎牛血清)在37℃、5%CO2培養箱中培養細胞,2 d換液1次。待細胞生長至完全融合后2 d(第0天)時開始誘導分化,將培養液換成含0.5 mmol/L IBMX、0.25 μmol/L 地塞米松和10 mg/L胰島素的完全促分化液。48 h后,撤去IBMX和地塞米松,換成只含有10 mg/L胰島素的促分化液,2 d換液1次。至第9天,>95%的3T3-L1細胞分化成為成熟脂肪細胞,經油紅O染色法鑒定,顯微鏡下脂肪細胞中脂滴呈亮紅色。
1.2.2 藥物干預:脂肪細胞分化成熟后,用含0.2%去脂肪酸牛血清白蛋白(BSA)的無血清培養液饑餓療法24 h后,分別用不同濃度阿托伐他汀(0、0.1、1.0、10.0 μM)干預,18 h 后,再加入含50 μg/ml ox-LDL培養基孵育1 h。提取培養上清液及細胞,-70℃凍存備用。饑餓療法后未予任何干預的脂肪細胞為空白對照組。
1.2.3 腫瘤壞死因子-α(TNF-α)濃度測定:使用小鼠TNF-α酶聯免疫(ELISA)試劑盒,按說明測定脂肪細胞培養上清液中TNF-α的濃度。
1.2.4 TNF-α及過氧化物酶體增殖物激活受體-γ(PPAR-γ)mRNA表達水平的測定:用TRIzol一步法提取總RNA,應用巢式逆轉錄聚合酶鏈反應(RTPCR)法檢測 TNF-α及 PPAR-γmRNA表達水平。TNF-α引物序列為:上游 5'-GCCACCACGCTCTTCTG-3',下游 5'-GGTGTGGGTGAGGAGCA-3',產物342 bp;PPAR-γ引物序列為:上游5'-TGGAGCCTAAGTTTGAGTTTGC-3',下游為 5'-TGACGATCTGCCTGAGGTCTG-3',產物249 bp;內參GAPDH引物序列為:上游 5'-ACCACAGTCCATGCCATCAC-3',下游5'-TCCACCACCCTGTTGCTGTA-3',產 物 439 bp。PCR擴增條件為:94℃預變性3 min,94℃變性50 s,50℃(TNF-α)、56℃(PPAR-γ)、58℃(GAPDH)退火1 min,72℃ 延伸 1 min,循環 36 次,72℃ 終末延伸10 min。產物經1%瓊脂糖凝膠電泳成像后,分析各組目的基因及GAPDH基因灰度值,以兩者的比值代表TNF-α和PPAR-γmRNA的表達水平。
1.2.5 核蛋白提取及NF-κB活性檢測:使用細胞核蛋白和細胞漿蛋白抽提試劑盒提取核蛋白,BCA法定量,-70℃保存備用,ELISA檢測NF-κB活性。
1.3 統計學方法 應用SPSS 12.0軟件包進行統計分析,主要統計指標均進行正態性檢驗,計量資料以均數±標準差表示,多個樣本間比較采用Oneway ANOVA檢驗,LSD方法進行。主要實驗數據來自3次以上重復實驗,α=0.05為檢驗水準。
2.1 TNF-α濃度 oxLDL刺激使3T3-L1脂肪細胞分泌TNF-α增加,而阿托伐他汀呈濃度依賴性抑制oxLDL刺激下脂肪細胞 TNF-α的分泌。50μg/ml oxLDL刺激下 TNF-α的分泌水平為(8.93±3.26)pg/ml,在0.1、1.0、10.0 μM 阿托伐他汀的干預下,oxLDL刺激下脂肪細胞TNF-α的分泌水平分別為(6.72 ±2.59)pg/ml,(4.68 ±1.31)pg/ml,(4.09 ±1.42)pg/ml。與 oxLDL 刺激組比較,1.0及10.0 μM阿托伐他汀干預組TNF-α水平均降低,差異有統計學意義(P <0.05)。10.0與0.1 μM 阿托伐他汀干預組比較差異有統計學意義(P<0.05)。見圖1。

圖1 不同濃度阿托伐他汀對TNF-α分泌的影響
2.2 TNF-αmRNA表達 與空白對照組比較,50μg/ml oxLDL刺激使 3T3-L1脂肪細胞 TNF-α mRNA 表達水平增高2.9 倍(0.633 ±0.157 vs0.218 ±0.078,P <0.001)。阿托伐他汀呈劑量依賴性抑制oxLDL刺激下脂肪細胞TNF-αmRNA表達,與ox-LDL刺激組比較,1.0和10.0μM阿托伐他汀的干預分別使脂肪細胞TNF-αmRNA的表達降低48.8%和56.5%(0.324 ± 0.098 vs 0.633 ± 0.157;0.275 ±0.097 vs 0.633 ±0.157,P <0.05)。10.0 與0.1 μM阿托伐他汀干預組比較差異有統計學意義(0.275±0.097 vs 0.502 ± 0.157,P <0.05)。見圖2。

圖2 不同濃度阿托伐他汀對TNF-αmRNA表達水平的影響
2.3 NF-κB活性 與空白對照組比較,50μg/ml oxLDL 刺激使NF-κB 活性增加1.65 倍(4.08 ±0.87 vs 1.54±0.44,P <0.05)。阿托伐他汀呈劑量依賴性抑制 oxLDL 刺激下 NF-κB 的活性。0.1、1.0 及10.0μM阿托伐他汀干預后,NF-κB活性分別為3.69± 0.79、2.93 ± 0.62 和 2.39 ± 0.51,其中10.0μM阿托伐他汀的干預使 NF-κB活性降低41.2%,與oxLDL刺激組比較,差異有統計學意義(P <0.05)。10.0與0.1 μM 阿托伐他汀干預組比較差異有統計學意義(P<0.05)。見圖3。

圖3 不同濃度阿托伐他汀對NF-κB活性的影響
2.4 PPAR-γmRNA表達 PPAR-γmRNA在分化成熟的3T3-L1脂肪細胞有較高水平的表達。與空白對照組比較,oxLDL刺激1 h PPAR-γmRNA表達水平無明顯變化(P>0.05)。與oxLDL刺激組比較,0.1及1.0 μM 阿托伐他汀干預后 PPAR-γ mRNA 表達輕度升高(1.51 ±0.64 vs 1.03 ±0.44,2.23 ±0.69 vs 1.03 ±0.44,P >0.05),而 10.0 μM阿托伐他汀的干預使PPAR-γmRNA的表達增加2.83倍(2.92 ± 0.96 vs 1.03 ± 0.44,P < 0.001)。10.0與0.1μM阿托伐他汀干預組比較差異有統計學意義(P<0.05)。見圖4。

圖4 不同濃度阿托伐他汀對PPAR-γmRNA表達水平的影響
動脈粥樣硬化是一種炎性疾病[7]。脂肪組織是低水平慢性炎性狀態的重要決定因素[8-9],可能與肥胖及其并發癥的進展有關[10-11]。有研究發現,高膽固醇血癥兔脂肪細胞TNF-α的分泌水平及皮下脂肪組織TNF-αmRNA的表達水平均明顯增高[12-13],且體外使用脂多糖(LPS)刺激脂肪細胞后其分泌的TNF-α水平亦明顯增高[14]。目前研究發現,LDL及ox-LDL均能明顯刺激人單核/巨噬細胞TNF-α的表達[13,15],具有明顯的促炎效應。本研究結果提示,oxLDL刺激也能造成脂肪細胞的體外炎性狀態。阿托伐他汀的抗炎效應已經得到肯定,并且認為,阿托伐他汀的抗動脈粥樣硬化作用與其抗炎效應密切相關。本研究發現,阿托伐他汀呈濃度依賴性抑制ox-LDL刺激下脂肪細胞TNF-α的分泌及表達。
阿托伐他汀抑制脂肪細胞分泌TNF-α的確切分子機制目前仍不十分清楚。大量研究顯示,他汀類的抗炎作用并不依賴于其對膽固醇水平的降低[3-5]。已有研究表明,阿托伐他汀及普伐他汀均能激活人單核細胞 PPAR-γ,抑制 NF-κB 活性,減少 TNF-α 的分泌[16-17],本研究觀察了阿托伐他汀對3T3-L1脂肪細胞PPAR-γ表達及NF-κB活性的直接影響,結果與報道一致。提示PPAR-γ與NF-κB等可能介導了他汀類藥物對單核細胞炎性過程的調節。
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