鄭 瑞 陳葆國 顏衛華 李伯利 章衛國 干靈紅
IL-21主要是由活化的CD4+T細胞和NKT細胞分泌,屬于γc(共同γ鏈)細胞因子家族成員之一[1~3]。至今有不少關于白介素(IL)-21對鼠和人NK細胞生物學調節的研究。曾發現IL-21和IL-15體外共同培養的鼠NK細胞,其增殖受到抑制,IL-21也并非NK細胞早期成熟必須的細胞因子[4]。IL-21可以通過增強鼠NK細胞殺傷活性對NKG2D配體陽性的腫瘤細胞有抑制作用,但也有研究表明IL-21通過下調人primary NK和CD8+T細胞表面NKG2D/DAP10的表達,而抑制primary NK細胞通過NKG2D介導的細胞毒作用[5,6]。可見IL-21對NK細胞功能的調節可能因種群差異存在差異。因此本文通過rhIL-21對NK-92MI細胞生物學活性調節的研究,進一步探討IL-21對NK細胞的免疫調節作用。
1.材料:rhIL-21及Human IFN-γMini ELISA Development Kit購自美國PeproTech公司,細胞毒活性檢測試劑盒CytoTox 96?Non-Radioactive Cytotoxicity Assay購自美國Promega公司,PE標記鼠anti-hNKG2D購自R&D公司,TRizol Reagent購自美國Invitrogen公司,Revert AidTMFirst Strand cDNA Synthesis Kit購自加拿大Fermentas(MBI)公司,凋亡檢測試劑盒購自聯科生物 AnnexinV/PI apoptosis kit,胎牛血清、新生牛血清、馬血清、RPMI-1640及α-MEM基礎培養基均購自美國GIBCO公司。引物由上海基康是生物技術有限公司合成。NK-92MI細胞(惡性非霍奇金淋巴瘤患者外周血NK細胞系NK-92經穩定轉染hIL-2后得到)及K-562細胞(人慢性髓系白血病細胞系)均為本室保存。
2.細胞培養:NK-92MI細胞培養:在α-MEM培養基中加入終濃度為12.5%的胎牛血清和12.5%的馬血清,于37℃、含5%CO2和95%濕度的孵箱常規培養;K-562細胞培養:于RPMI-1640培養基中加入10%的新生牛血清,常規傳代培養。
3.細胞增殖試驗:取處于對數生長狀態良好的NK-92 MI細胞,1200r/min×4min,離心。PBS洗1次,1m lα-MEM完全培養基懸起細胞,計數。調整細胞濃度為1×105/ml,備用。按rhIL-21藥物濃度實驗分4組,分別為0ng/ml,25ng/ ml,50ng/ml和100ng/ml組。配備含200ng/m l rhIL-21的α-MEM完全培養基1ml(取2μl100ng/μl的rhIL-21加入到1mlα-MEM完全培養基)于96孔板實驗各孔加入100μl的α-MEM完全培養基,取含200ng/ml rhIL-21的α-MEM完全培養基加入到第一組各孔,100微升/孔。輕混勻后分別取100微升/孔加入下一個稀釋度的各孔依次倍比2稀釋,3復孔/稀釋度,取NK92 MI細胞懸液100μl加入各相應孔。將96孔板置37℃、5%CO2孵箱中培養,分別在24、48和72h 3個藥物培養時間段收集細胞并計數。
4.細胞毒效應試驗:取生長狀態良好NK-92MI細胞,PBS洗滌兩次后,于100ml培養瓶中按2×105個/ml細胞濃度培養,一組加入終濃度為50ng/ml rhIL-21,一組未加藥物,在37℃、含5%CO2的孵箱常規培養48h。收集預處理后細胞,PBS洗滌3次,把兩組細胞濃度調為4×106個/毫升備用。取U型底96孔板,按CytoTox 96?Non-Radioactive Cytotoxicity Assay試劑盒操作步驟,設靶細胞自然釋放孔、培養基背景孔、靶細胞最大釋放孔、體積校正孔及效應細胞自然釋放孔。取準備好的NK-92MI細胞加入96孔板,以倍比稀釋法設立6個效應細胞濃度梯度,體積50微升/孔。再取準備好的生長狀態良好的靶細胞K-562(2×105個/毫升)50μl加入到相應各孔,使效靶比分別為20∶1、10∶1、5∶1、2.5∶1、1.25∶1共5個濃度梯度,每個梯度4個復孔。在37℃、含5%CO2的孵箱常規培養4h后,以每孔10μl裂解液加入到靶細胞最大釋放孔和體積校正孔,再孵育45min后,取出250g×4min離心,收集上清50微升/孔,移入另一平底96孔板,再加入反應液50微升/孔,避光室溫孵育30min,490nm讀取吸光度值。通過檢測上清中LDH含量計算NK-92MI對K-562細胞的細胞毒活性。細胞毒效應計算公式:細胞毒(%)=(實驗組-效應細胞自發釋放-靶細胞自發釋放)/(靶細胞最大釋放-靶細胞自發釋放)×100%。
5.流式細胞術(FACS)檢測:以50ng/m l rhIL-21預處理NK-92MI細胞48h,同時設PBS對照組(即未加藥組)。收集細胞用PBS洗滌兩次,離心后,用300μl PBS重懸細胞混勻,平分為3管,一管加入anti-IgG-PE/IgG-FITC同型對照熒光標記抗體,一管加入anti-Granzyme B-PE熒光標記抗體,另一管加入anti-hNKG2D-PE熒光抗體,室溫孵育30min,PBS洗滌兩次,細胞用500μl PBS懸起,上機分析。同樣方法培養細胞48h和72h,按AnnexinV/PIapoptosis kit操作步驟檢測rhIL-21對NK-92MI細胞凋亡影響。
6.RT-PCR檢測目的基因的表達:分時收集50ng/ml預處理0、6、12和24h的NK-92MI細胞,PBS洗滌2兩次,細胞計數板計數,每次取同等量細胞,用TRizol試劑盒抽取細胞總mRNA。反轉錄反應取2μl mRNA,總體系為20μl,合成cDNA。PCR反應體系為25μl:2.5μl 10×Buffer,1.5μl 25mmol/L MgCl2,0.5μl dNTP,0.5μl cDNA,各0.5μl上下游引物,0.5μl Taq DNA聚合酶,18.5μl去離子水。反應條件:94℃10min; 94℃1min、56℃45s、72℃45s共38個循環;72℃min;4℃ Hold。取4μl PCR產物用1.3%瓊脂糖凝膠電泳分析,結果用Quantity one軟件進行灰度分析,對目的基因進行半定量。各引物如表1。

表1 各PCR引物序列及擴增片段長度
7.ELISA 檢測IFN-γ的分泌:試驗于96孔板中進行,檢測50ng/m l rhIL-21藥物在不同時間對NK-92MI細胞分泌IFN-γ的影響。體積為200微升/孔,每個時間梯度(12h,24h和48h)3個復孔,同時設培養基(含12.5%胎牛血清和12.5%馬血清的α-MEM)和常規NK-92MI細胞培養對照組,于37℃、含5%CO2的孵箱培養。按 Human IFN-γMini ELISA Development Kit實驗步驟進行,檢測490nm吸光度值。
8.統計學方法:所有數據均采用SPSS 13.0統計軟件分析,計量資料描述用均數±標準差±s)表示,統計分析前各組數據均進行方差齊性檢驗,多組間數據比較采用One-way ANOVA方差分析,組間兩兩比較采用LSD統計方法,兩組間比較采用兩組間獨立樣本t檢驗(細胞殺傷實驗采用配對資料t檢驗),P<0.05為差異具有顯著性。
1.RhIL-21對NK-92MI細胞增殖的影響:實驗數據顯示,隨培養時間的延長實驗組及對照組細胞均有不同程度的增殖(One-way ANOVA方差分析,結果顯示各組P均<0.05)。同時觀察到隨培養時間的延長各組之間細胞的增殖并不同步,實驗組較對照組細胞生長緩慢,特別是在培養72h之后,差異更為顯著(P=0.000),可見rhIL-21抑制了NK-92MI細胞的正常增殖,但并未看到呈藥物濃度梯度依賴性抑制,統計學顯示各實驗組之間差別無統計學意義(P<0.05)。結果如表2所示。

表2 不同濃度rh IL-21對NK-92M I增殖的影響
2.rhIL-21對NK-92MI細胞凋亡的影響:鑒于結果1所示,不同劑量rhIL-21對NK-92MI細胞的增殖有不同程度的抑制,我們選擇既能發揮藥效又不至于過度抑制細胞生長的劑量(50ng/ml)進行后續試驗研究。在50ng/ml rhIL-21培養NK-92MI 48h和72h后,Anexin V和PI染色顯示,實驗組和對照組細胞凋亡率的差別無統計學意義(48h,P=0.947; 72h,P=0.325),且不隨培養時間的延長而增加,即50ng/ml rhIL-21并未增加NK-92MI細胞的凋亡。結果如表3所示。

表3 rh IL-21對NK-92M I凋亡的影響(%)
3.rhIL-21對NK-92MI細胞細胞毒效應的影響:以50ng/ml濃度的rhIL-21預處理NK-92MI 48h后,觀察NK-92MI細胞毒效應的改變。結果顯示在效靶比為5∶1、2.5∶1、1.25∶1時,50ng/ml能增強NK-92MI細胞的細胞毒活性(P<0.05)。結果如圖1所示。

圖1 rh IL-21對NK-92M I細胞毒效應的影響
4.rhIL-21對NK-92MI細胞相關基因表達的影響:RT-PCR結果顯示,50ng/ml rhIL-21能夠促進NK細胞細胞毒效應相關基因如顆粒酶-B (274bp)、穿孔素(511bp)、IFN-γ(339bp)以及NK細胞表面活化型受體NKG2D基因(416bp)mRNA的表達,且均呈時間依賴性表達增強(P<0.05),見圖2,用Quantity one軟件分析目的基因與β-actin的灰度比值見表4。

圖2 RT-PCR鑒定NK-92M I細胞活化相關基因表達
5.rhIL-21對NK-92MI細胞表面NKG2D受體及胞質顆粒酶-B蛋白的調節:50ng/m l rh IL-21處理NK-92MI細胞48h后,細胞表面NKG2D受體的平均熒光強度及胞質顆粒酶-B蛋白的表達均明顯增強(NKG2D,P=0.00;顆粒酶-B,P=0.00),如圖3及表5所示。

表4 不同時間目的基因的表達量變化

圖3 流式細胞術檢測NK-92M I細胞表面NKG2D受體及胞內顆粒酶-B的表達

表5 NKG2D及顆粒酶-B蛋白平均熒光強度的變化
6.rhIL-21對NK-92MI細胞IFN-γ分泌的影響:根據 ELISA標準曲線公式(y=755.81x2-721.46x+139.66,r2=0.9551)計算相應吸光度值對應的IFN-γ濃度。隨培養時間的延長,兩組細胞分泌IFN-γ水平均有升高(實驗組P=0.000,對照組P=0.000)。但與對照組比較,50ng/ml rhIL-21藥物處理組細胞分泌IFN-γ的能力在24h和48h時,均明顯高于對照組(24h P=0.020,48h P=0.002);而在12h時兩組相比,分泌IFN-γ水平無顯著性差異(P=0.173),如圖4所示。

圖4 50ng/m l rh IL-21對IFN-γ分泌的影響
自Parrish-Novak等[1]報道IL-21對NK細胞的研究以來,有較多關于IL-21對人及鼠NK細胞增殖、免疫調節及抗腫瘤效應等各方面的研究。針對IL-21對NK細胞增殖的研究,有報道表明IL-21能抑制IL-15或IL-2活化的鼠NK細胞的增殖,并能促使NK細胞通過經典的凋亡途徑發生凋亡[4,7]。雖然種屬不同,但與本研究rhIL-21能不同程度抑制NK-92MI細胞增殖的結果相近。然而這種生長抑制不是NK-92MI細胞凋亡率增加的結果,本研究并未發現rhIL-21培養組和對照組在NK-92MI生長48h后,Annexin V+/PI+雙陽性細胞百分率的差異。這同Skak等[8]報道的,IL-21能促進人外周血純化的NK細胞的存活率結果相吻合,或者至少證明了IL-21不會促進人NK細胞的凋亡。
作為具有天然抗腫瘤活性的NK細胞,其細胞毒效應可受多種細胞因子的調節。研究IL-21對NK細胞細胞毒效應的影響,是IL-21對NK細胞各種免疫調節的綜合體現。本研究結果表明50ng/ml濃度的rhIL-21均能顯著增強NK-92MI細胞對靶細胞K-562的細胞毒效應,這與Skak等[8]的研究結果一致,盡管也有其他研究結果與此不同,但多數研究支持 IL-21能增強 NK細胞細胞毒效應的結論[5~8]。傳統理論認為NK細胞的活化是細胞表面活化型受體和抑制型受體綜合作用的結果,因此本實驗分別從基因和蛋白質水平上檢測了rhIl-21對NK-92MI細胞表面主要活化型受體NKG2D的調節。結果表明,50ng/ml的rhIl-21能逐漸增強NKG2D基因mRNA的表達,并能顯著增強培養48h后NK-92MI細胞表面NKG2D受體的平均熒光強度。Skak等[8]報道IL-21能增強外周血單個核細胞中NK細胞表面細胞毒效應受體NKp46、活化型受體NKG2D及抑制型受體CD94和NKG2A不同程度的表達上調,而最終表現為細胞毒活性的增強。而 Burgess等[6]曾報道IL-21通過下調純化人primary NK細胞表面NKG2D/DAP10的表達,而抑制primary NK細胞通過NKG2D和其配體介導的細胞毒活性。這種結果的差異是否由不同細胞系造成?有待于體內實驗或更多實驗進一步驗證。
RT-PCR結果顯示IFN-γ、穿孔素及顆粒酶的表達隨rhIL-21培養時間的延長而逐漸增強,且IFN-γ的分泌及顆粒酶蛋白表達水平也明顯增強。這進一步驗證了NK-92MI被rhIL-21活化后細胞毒效應的增強機制。IFN-γ是在細胞免疫中發揮關鍵調節作用的細胞因子,顯然rhIL-21促進NK-92MI細胞分泌的IFN-γ,進一步增強了細胞免疫能力。這有利于在腫瘤免疫中機體抗腫瘤免疫的能力,但也可能導致機體過度免疫而產生自身免疫性疾病。當然機體的免疫平衡的維持靠復雜的細胞因子網絡的調節。曾有研究表明高濃度的IFN-γ能下調人NK細胞活化型受體NKG2D基因及蛋白水平的表達,IL-21可以通過對轉錄因子Eomesodermin的抑制而下調CD4+T細胞分泌IFN-γ能力。
通過本實驗的研究,進一步認識了IL-21對人NK細胞免疫調節作用,然而對單純的體外實驗和細胞系研究并不能模擬人體復雜的微環境,實驗結果不能完全揭示疾病狀態下IL-21對NK細胞的調節。因此通過對自身免疫性疾病或腫瘤患者機體免疫狀態的檢測、細胞因子的分析及精細的體內實驗的研究,觀察IL-21在相關疾病中所扮演的角色,將對全面認識IL-21生物學活性非常重要。
1 Parrish-Novak J,Dillon SR,Nelson A,et al.Interleukin 21 and its receptor are involved in NK cell expansion and regulation of lymphocyte function[J].Nature,2000,408(6808):57-63
2 Coquet JM,Kyparissoudis K,PellicciDG,etal.IL-21 is produced by NKT cells and modulates NKT cell activation and cytokine production[J].J Immunol,2007,178(5):2827-2834
3 Habib T,Senadheera S,Weinberg K,et al.The common gamma chain (gamma c)is a required signaling component of the IL-21 receptor and supports IL-21-induced cell proliferation via JAK3[J].Biochemistry,2002,41(27):8725-8731
4 Kasaian MT,Whitters MJ,Carter LL,et al.IL-21 limits NK cell responses and promotes antigen-specific T cell activation:amediator of the transition from innate to adaptive immunity[J].Immunity,2002,16(4):559-569
5 Takaki R,Hayakawa Y,Nelson A,et al.IL-21 enhances tumor rejection through a NKG2D-dependent mechanism[J].J Immunol,2005,175(4):2167-2173
6 Burgess SJ,Marusina A I,Pathmanathan I,etal.IL-21 down-regulates NKG2D/DAP10 expression on human NK and CD8+T cells[J].J Immunol,2006,176(3):1490-1497
7 Brady J,Hayakawa Y,Smyth MJ,et al.IL-21 induces the functionalmaturation ofmurine NK cells[J].JImmunol,2004,172(4): 2048-2058
8 Skak K,Frederiksen KS,Lundsgaard D.Interleukin-21 activates human natural killer cells andmodulates their surface receptor expression[J].Immunology,2008,123(4):575-583