邱少波,梁 燕,劉 萍
隨著人口老齡化,冠心病的發病率和死亡率逐年增高,雖然通過溶栓、經皮冠狀動脈介入治療術等各種心肌保護技術,降低了死亡率,但心肌缺血再灌注損傷(myocardial ischemia reperfusion injury,MIRI)仍無法完全避免。而心肌細胞凋亡是多種心血管疾病發生發展中重要的細胞學基礎,大量研究表明,在眾多心臟疾病中如心力衰竭、心律失常、心肌病、心肌梗死等都有心肌細胞凋亡的發生[1]。大量的動物實驗研究發現,心肌細胞凋亡與MIRI有著密切關系,且凋亡在心肌細胞再灌注過程中起著關鍵作用[2]。中藥復方冠心康具有抗心肌缺血和緩解心絞痛的作用[3],并能顯著縮短豚鼠模擬缺血早期和再灌注早期心肌90%動作電位時程[4],在此研究基礎上,本實驗采用大鼠 MIRI模型,觀察中藥復方冠心康對大鼠MIRI心肌細胞凋亡因子Bcl-2、Bax表達的影響,并探討其作用機制。
1.1 實驗動物 SPF級SD雄性大鼠,體重200 g~250 g,共40只,購于上海斯萊克實驗動物有限公司,動物許可證號SYXK(滬)2010-0095。所有動物飼養于上海中醫藥大學附屬龍華醫院SPF級動物實驗中心。
1.2 實驗藥物 冠心康由黃芪、全瓜蔞、薤白、益母草、丹參、制半夏組成,均購于上海中醫藥大學附屬龍華醫院藥劑科,并煎成湯劑。鹽酸地爾硫卓片(恬爾心),浙江亞太藥業股份有限公司生產,產品批號20110303。
1.3 主要試劑 Bcl-2、Bax多克隆抗體為美國Santa Cruz公司產品,En Vision試劑(HRP/Rabbit)即用型丹麥Dako公司產品,Tunel試劑盒、蘇木素-伊紅均購自南京建成科技有限公司,3%戊巴比妥鈉、10%甲醛溶液等均為上海威奧生物科技有限公司提供。
1.4 主要儀器 小動物呼吸機:上海奧爾科特技術有限公司;多導電生理儀:Power Lab生物信號采集分析系統為澳大利亞埃德儀器國際貿易有限公司產品;切片機:德國Lico公司產品,型號:RM2145;微波爐:格蘭仕 WD800SL-4Ⅱ;隔水式恒溫培養箱:GNP-9270上海精宏實驗設備有限公司;電熱恒溫水浴鍋:DK-S22上海精宏實驗設備有限公司。
1.5 實驗分組 隨機分為4組:假手術組、MIRI模型組、冠心康組、鹽酸地爾硫卓組。
1.6 給藥時間和方法 術前灌胃7 d,每日灌胃1次。冠心康按生藥13 g/(kg·d)灌胃給藥。鹽酸地爾硫卓按30 g/(kg·d)灌胃給藥。假手術組和MIRI模型組分別于相同時間給予等容積的生理鹽水灌胃。
1.7 動物模型的建立及評價 于末次給藥1 h后,通過結扎大鼠左冠狀動脈前降支30 min,再灌注2 h,制備大鼠MIRI模型,以往已有實驗證實此缺血再灌注時間足以引起心肌細胞凋亡[5,6]。
將大鼠稱重量,3%戊巴比妥鈉,0.15mL/100 g,經腹腔注射麻醉后,仰臥固定。氣管插管,連接小動物呼吸機,呼吸頻率70次/min~80次/min,潮氣量8 mL~12 mL,呼吸氣比為1∶2,呼吸壓力1.5 k Pa~2.5 k Pa,同時用多導電生理儀Ⅱ導聯記錄心電圖。胸部脫毛,在心臟搏動最明顯處鈍性分離肌肉開胸,鈍性分離第3、4肋骨間肌肉,用眼科開瞼器打開視野,剪開胸膜、心包膜,充分暴露心臟。在左心耳下(相當于肺動脈圓錐與左心耳之間,距主動脈根部2.5 mm~3 mm處),用4-0帶線縫合針線穿過一小束心肌,將硅膠管置于結扎線與血管之間,拉緊結扎線,使硅膠管壓迫冠狀動脈左前降支而至閉塞,亦便于切斷結扎線再通。結扎后左室壁局部變蒼白,心電圖出現QRS波群變寬大畸形者為結扎成功。缺血30 min后,松解結扎線實現冠脈再灌注。再灌注后,可見左室壁蒼白部分逐漸紅潤,心電圖上寬大畸形的QRS波群變窄,波幅下降,提示再灌注成功。假手術組同樣手術但不結扎冠脈。
1.8 取材及檢測指標 造模成功后,將大鼠處死,剪取心臟,生理鹽水沖洗,在MIRI區域取材,作為組織標本。用10%甲醛液固定12 h,梯度酒精脫水,二甲苯透明,石蠟包埋切片,檢測指標如下。
1.8.1 心肌組織病理學 切片厚度為4μm,常規蘇木素-伊紅(HE)染色。
1.8.2 心肌細胞凋亡的原位標記檢測 采用TUNEL法并嚴格按照試劑盒說明書操作。細胞核中有棕黃色顆粒者為陽性細胞,即凋亡細胞。每張切片隨機選擇5個非重疊視野(400倍),計數陽性染色的心肌細胞數及心肌細胞總數,計算細胞凋亡指數(AI),AI=陽性細胞數/心肌細胞總數×100%。
1.8.3 免疫組化檢測Bcl-2、Bax的表達 按照En Vision法進行免疫組化檢測,簡要步驟為:石蠟切片常規脫蠟至水,PBS沖洗3 min×3次,用p H6.0的0.01 mol/L檸檬酸緩沖液熱誘導修復(微波3檔,20 min),然后室溫自然冷卻,PBS沖洗3 min×3次,經0.3%H2O2室溫下20 min后,PBS沖洗3 min×3次,后經20%正常羊血清室溫孵育30 min,滴加一抗Bcl-2或Bax后37℃孵育2 h,PBS沖洗3 min×3次,之后用En Vision試劑37℃30 min,PBS沖洗3 min×3次,DAB顯色8 min~12 min,蘇木素染色,熱水藍化,在顯微鏡250倍下用圖形分析系統定量觀察。
2.1 心肌組織病理學改變 HE染色(光學顯微鏡×200倍):假手術組心肌細胞排列整齊,細胞核居中,細胞膜完整,細胞著色均勻;MIRI模型組心肌細胞排列紊亂,部分區域有斷裂,細胞核固縮,細胞著色不均勻,區域性水腫變性明顯;冠心康組心肌細胞排列基本整齊,細胞著色相對均勻,水腫變性不明顯;鹽酸地爾硫卓組心肌細胞排列疏松,細胞著色不均勻,水腫變性稍明顯。
2.2 心肌細胞凋亡指數 光鏡下觀察,心肌細胞核呈藍色,而心肌凋亡陽性細胞的細胞核為深淺不一的棕褐色。結果顯示:與假手術組比較,MIRI模型組心肌細胞凋亡指數值顯著升高,差異有統計學意義(P<0.01);與 MIRI模型組比較,冠心康組和鹽酸地爾硫卓組明顯降低,差異有統計學意義(P<0.01)。詳見表1。
表1 各組大鼠心肌細胞凋亡指數比較(±s) %

表1 各組大鼠心肌細胞凋亡指數比較(±s) %
與假手術組比較,1)P<0.01;與 MIRI模型組比較,2)P<0.01
組別 n 10 9.8±2.7 MIRI模型組 10 31.5±7.81)鹽酸地爾硫卓組 10 14.9±5.62)冠心康組 10 12.3±2.32)凋亡指數假手術組
2.3 心肌細胞凋亡因子Bcl-2、Bax的表達 抑制凋亡因子Bcl-2在MIRI后表達明顯降低,冠心康組和鹽酸地爾硫卓組表達則明顯升高,差異均有統計學意義(P<0.01)。而促凋亡因子Bax在MIRI后表達明顯升高,冠心康組和鹽酸地爾硫卓組表達則明顯降低,差異均有統計學意義(P<0.01)。詳見表2。
表2 各組心肌組織中Bcl-2、Bax的表達(±s) μm2

表2 各組心肌組織中Bcl-2、Bax的表達(±s) μm2
與假手術組比較,1)P<0.01;與 MIRI模型組比較,2)P<0.01
Bcl-2 Bax假手術組 10 292 007.7±32 530.3 86 718.9±9 927.5組別 n MIRI模型組 10 184 933.5±17 160.71)190 052.4±52 243.71)鹽酸地爾硫卓組 10 260 398.0±39 590.82)100 477.3±13 751.32)冠心康組 10 280 428.2±40 493.02) 92 511.0±15 950.92)
MIRI可誘導心肌細胞壞死,同時也可導致心肌細胞凋亡。1994年Gottlieb等[7]首先在兔心臟上發現再灌注損傷促進了細胞凋亡。隨著分子心臟病學研究的不斷深入,越來越多的證據表明細胞凋亡基因的調控在MIRI的病理生理過程中發揮著重要作用。
目前研究的凋亡調控基因主要為Bcl-2家族、Caspase家族、細胞色素C、凋亡誘導因子、p53等。其中Bcl-2基因家族是心肌細胞凋亡過程中極其重要的調節因子[8]。Bcl-2家族蛋白根據其功能主要分為兩大類:抑細胞凋亡因子,以Bcl-2、Bcl-x L為代表;促細胞凋亡因子,以Bax、Bad、Bak、Bid為代表。Bcl-2基因家族成員自身或與Bax彼此之間可形成二聚體或多聚體,通過蛋白-蛋白相互作用調節細胞的存活或凋亡。Bcl-2蛋白主要定位于線粒體外膜,起抑制凋亡的作用。而具有促凋亡作用的Bax蛋白則主要定位細胞質,當細胞受到凋亡因子的誘導,便向線粒體轉位。Bcl-2和Bax相互競爭,間接調節蛋白酶和核酸酶活性,從而雙相調節細胞凋亡。當Bax表達占優勢時促進細胞凋亡,而Bcl-2表達占優勢時則阻止細胞凋亡,因此有學者將 Bcl-2和 Bax稱為心肌細胞的“死亡開關”[9,10]。
冠心病在祖國醫學中屬于“胸痹”范疇,責之于本虛標實。MIRI是冠心病的一個病理環節,常見臨床表現主要為胸痛、胸悶、短氣、乏力等。中醫病機以氣虛痰濁血瘀多見。中藥復方冠心康以《金匱要略》中栝樓薤白半夏湯為基礎加減化裁而成。全方以黃芪為君,丹參、益母草為臣,補氣生血、活血祛瘀;佐以全瓜蔞、薤白、半夏,燥濕化痰、通陽解穢。前期研究發現其具有明顯的調脂、抗心肌缺血、緩解心絞痛的作用,深入研究發現本方可進一步開放離體大鼠MIRI心肌KATP通道,可明顯增加Ca2+-Mg2+-ATP酶、Na+-K+-ATP酶活性,抑制 Ca2+超載、減輕Ca2+內流;能夠明顯促進超氧化物歧化酶(SOD)的產生,有效清除氧自由基作用[11,12]。本實驗采用大鼠 MIRI模型,發現中藥復方冠心康組心肌細胞凋亡指數顯著降低,同時,抑凋亡因子Bcl-2的表達明顯升高,而促凋亡因子Bax的表達則明顯降低。
綜上所述,中藥復方冠心康可明顯減輕大鼠心肌缺血再灌注損傷,其作用機制是通過調控心肌細胞的凋亡基因而發揮保護作用,但是,中藥復方的作用機制是多靶點的,是否還通過其他機制起到保護作用,仍需要進一步深入探討研究。
[1] Richard RN,Douglas LM.Apoptosis and the heart:A decade of progress[J].Mol Cell Cardiol,2005,38(1):1-2.
[2] Lamendola P,Di Monaco A,Barone L,et al.Mechanisms of myocardial cell protection from ischemia/reperfusion injury and potential clinical implications[J].G Ital Cardiol(Rome),2009,10(1):28-36.
[3] 劉萍,章怡祎,張靜生.中藥復方對損傷人血管內皮細胞表達細胞間黏附分子的影響[J].中國臨床康復,2006,10(27):54-57.
[4] 韓向暉,張娜,劉萍,冠心康對豚鼠缺血再灌注心室乳頭肌電生理特性的影響[J].上海中醫藥雜志,2009,43(3):58-62.
[5] McCully JD,Wakiyama H,Hsieh YJ,et al.Differential contribution of necrosis and apoptosis in myocardial ischemia-reperfusion injury[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2004,286(5):H1923-H1935.
[6] Das S,Cordis GA,Maulik N,et al.Pharmacological preconditioning with resveratrol:A role of CREB-dependent Bcl-2 signaling via adenosine A3receptor activation[J].Am J Physioi Heart Cirl Physiol,2005,288(1):H328-H335.
[7] Gottlieb RA,Burleson KO,Kloner RA,et al.Reperfusion injury induces apoptosis in rabbit cardiomyocytes[J].J Clin Invest,1994,94(4):1621-1628.
[8] Kostyak JC,Hunter JC,Korzick DH.Acute PKCdelta inhibition limits ischemia-reperfusion injury in the aged rat heart:Role of GSK-3beta[J].Cardiovasc Res,2006,70(2):325-334.
[9] Gross ER,Hsu AK,Gross GJ.The JAK/STAT pathway is essential for opioid-induced cardioprotection:JAK2 as a mediator of STAT3,Akt,and GSK-3 beta[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2006,291(2):H827-H834.
[10] Bao W,Behm DJ,Nerurkar SS.Effects of p38 MAPK inhibitor on angiotensinⅡ-dependent hypertension,organ damage,and superoxide anion production[J].J Cardiovasc Pharmacol,2007,49(6):362-368.
[11] 陳富榮,張娜,劉萍.冠心康對大鼠缺血心肌細胞ATP敏感鉀通道亞基Kir6.1、Kir6.2、SUR2A、SUR2B表達的影響[J].中西醫結合學報,2010,8(5):458-464.
[12] 張娜,陳富榮,章怡祎,等.冠心康對大鼠缺血心肌細胞ATP敏感鉀通的影響[J].中國中西醫結合雜志,2010,30(11):1186-1189.