符爽,孫開來,富偉能
(中國醫科大學1.基礎醫學院遺傳學教研室,沈陽110001;2.附屬盛京醫院血液研究室,沈陽110022)
MYCT1新轉錄本的克隆與表達分析
符爽1,2,孫開來1,富偉能1
(中國醫科大學1.基礎醫學院遺傳學教研室,沈陽110001;2.附屬盛京醫院血液研究室,沈陽110022)
目的確定MYCT1基因的轉錄起始點并克隆該基因新的轉錄本,探討該基因的結構和功能。方法利用已知MYCT1的保守序列,應用5′-RACE技術確定轉錄起始點位置,結合3′-RACE拼接得到新轉錄本的精確全長;然后利用生物信息學軟件對新轉錄本與MYCT1的cDNA序列及氨基酸序列進行對比分析;最后利用RT-PCR的方法分析新轉錄本的細胞表達譜。結果成功克隆得到長1 106 bp的新轉錄本MYCT1-TV,其轉錄起始點位于ATG上游140 bp處。MYCT1-TV與MYCT1在結構上無明顯差異,并廣泛表達于各個細胞系。結論MYCT1轉錄起始點的確定和新轉錄本MYCT1-TV的克隆,為進一步研究MYCT1基因的轉錄調控機制及基因功能奠定了實驗基礎。
MYCT1;MYCT1-TV;喉癌;RACE
MYCT1(Myc target 1)是本研究室前期應用實體瘤培養、常規G顯帶、FISH及電子雜交的方法從喉鱗狀細胞癌(laryngeal squamous cell carcinoma,LSCC,以下簡稱喉癌)中克隆得到的新基因,曾命名MTLC(c-Myc target from laryngeal cancer cells),Gen-Bank登錄號為AF_527367[1]。
MYCT1基因定位于染色體6q25,全長約21 kb,含2個外顯子,其mRNA序列長約1 006 bp,編碼含235個氨基酸的蛋白質。本研究組在前期研究中通過生物信息學方法,預測該基因轉錄起始點位于ATG上游47 bp處[1],但未經實驗證實。進一步研究MYCT1基因的結構并確定其轉錄起始點,對了解該基因的功能和闡明其轉錄調控機制具有重要意義。本研究利用已知MYCT1的保守序列,以正常人外周血RNA為模板,應用5′-RACE(5′-rapid amplification of cDNA ends)的方法確定了MYCT1的轉錄起始點,并結合3′-RACE克隆得到MYCT1新的轉錄本,通過生物信息學的方法對比分析2個轉錄本的結構,并檢測新轉錄本在不同細胞系中的表達情況,為明確MYCT1的結構和功能奠定了實驗基礎。
1.1 實驗材料與試劑
細胞系:人喉癌Hep2細胞、人胚腎HEK293細胞、人肝癌Bel7402細胞、人宮頸癌HeLa細胞、人高分化胃癌BGC823細胞、人中分化胃癌SGC7901細胞、人低分化胃癌MKN1細胞、人胃黏膜上皮GES1細胞(購自中科院上海細胞庫)。
主要試劑:反轉錄試劑盒、膠回收試劑盒、pMD18-T載體、JM109感受態細胞及PCR相關試劑購自TaKaRa公司,全血RNA提取試劑盒購自Galen Biopharm公司,無內毒素質粒小提中量試劑盒購自Tiangen公司,SMARTTMRACE cDNA Amplification Kit購自Clontech公司。
培養基:LB培養基(自配),其中胰蛋白胨和酵母提取物為Sigma公司產品,RPMI1640培養基、胎牛血清為Gibco公司產品。
1.2 實驗方法
1.2.1 全血RNA的提取及RNA質量的鑒定:取2 mL正常人新鮮抗凝血加入6 mL紅細胞裂解液1× RLB,顛倒混勻。室溫放置10 min,期間可輕彈顛倒混勻。離心后棄紅色上清,留下完整白細胞團在管底。按Galen Biopharm公司試劑盒說明書步驟進行全血RNA的提取。將電泳槽沖洗干燥后用0.1% DEPC處理水浸泡過夜,取2 μL加樣緩沖液與3 μL RNA溶液混勻后于l%的瓊脂糖凝膠電泳,4℃冰箱中130 V電泳27 min。
1.2.2MYCT1基因轉錄起始點的確定及新轉錄本的克隆:以MYCT1的保守序列為模板,按照RACE試劑盒說明書要求設計模板特異性引物(GSP)和巢式PCR引物(NGSP)。引物序列如下:GSP1:5′-CATAGGCAGGTGGGGGCGGTGTT-3′;GSP2:5′-TATCCATGGCAATCGGGCTGGTACT-3′;NGSP1:5′-TGGACCAGTAGTCAGGACGGCTCAGA-3′;NGSP2:5′-AGTGGCTGTGAACGTCGAAGCAACC-3′。然后分別進行5′-和3′-RACE擴增,分別以設計的GSP1、GSP2為5′-RACE和3′-RACE的特異引物,與UPM(試劑盒自帶)進行cDNA 5′端和3′端的一次擴增,然后分別以NGSP1、NGSP2為巢式PCR的特異引物,與NUP(試劑盒自帶)進行cDNA 5′端和3′端的二次擴增。分別將5′端和3′端的擴增產物回收純化后,克隆至pMD18-T載體,轉化大腸桿菌JM109感受態細胞,挑選陽性克隆送南京金斯瑞生物技術有限公司測序。
1.2.3 RT-PCR驗證RACE結果:為了排除RACE受基因組污染的可能性,采用RT-PCR的方法對RACE結果的真實性進行驗證。設計上下游引物擴增拼接后得到的cDNA全長,以5′-RACE cDNA為模板進行PCR擴增。引物序列如下:Forward,5′-GAACAC AAGTATATGAGGGGTTG-3′;Reverse,5′-AGTCAC ATTGGAAGTAAATGAGGATTG-3′,反應體系與說明書一致。
PCR反應條件為:95℃4 min→(95℃30 s、60℃15 s、72℃2 min20 s)×35 cycles→72℃7 min→4℃∞。將擴增產物回收純化,經連接轉化后,挑取陽性克隆送南京金斯瑞生物技術有限公司測序。
1.2.4 RT-PCR實驗檢測MYCT1新轉錄本在各細胞系中的表達水平:分別收集5×106個Bel7402、Hep2、HeLa、BGC823、SGC7901、MKN1、GES1和HEK293細胞,用Trizol方法提取細胞總RNA,按照試劑盒說明書反轉錄成cDNA。以上述提取的各細胞系的總cDNA為模板,以正常人外周血中MYCT1-TV的mRNA表達水平作為陽性對照,通過PCR的方法檢測MYCT1-TV在各細胞系的表達水平。MYCT1-TV引物序列:Forward,5′-TAATAACACAACAAGTTTA GGGAGT-3′;Reverse,5′-AGTCACATTGGAAGTAA ATGAGGATTG-3′,產物大小為929 bp。β-actin引物序列:Forward,5′-CTCTTCCAGCCTTCCTTCCT-3′;Reverse,5′-CACCTTCACCGTTCCAGT TT-3′,產物大小為511 bp。
2.1MYCT1新轉錄本的獲得及結構分析
2.1.1 總RNA的鑒定結果:從外周血提取的總RNA經1%瓊脂糖凝膠電泳可見28 S、18 S和5.8 S rRNA 3條清晰的帶(圖1),OD260/OD280的比值約為1.90,濃度約為0.2 g/L,表明抽提的RNA質量較好,可以用于后續實驗。

圖1 RNA完整性電泳圖Fig.1 Agar electrophoresis of RNA integrity
2.1.2 5′/3′-RACE巢式PCR檢測結果:5′端經巢式PCR擴增得到長約690 bp和1 400 bp的2個DNA片段,3′端經巢式PCR擴增得到長約750 bp、1 200 bp、1 800 bp、2 500 bp和3 000 bp的5個DNA片段(圖2)。

圖2 巢式PCR產物電泳檢測結果Fig.2 Result from electrophoresis detection of nested PCR products
2.1.3MYCT1全長cDNA的拼接及轉錄起始點的鑒定結果:將巢式得到的7個片段經過連接轉化后送測序鑒定。根據測序結果,我們將5′序列和3′序列進行了拼接,并與Blast進行比對,結果得到1個全長為1 106 bp的MYCT1新的轉錄本(圖3),命名為MYCT1-TV(myc target 1 transcript variant 1),并提交GenBank數據庫,獲得GenBank登錄號GU997693,并確定此轉錄本的轉錄起始點為cDNA的第一個堿基“G”。

圖3 拼接后的MYCT1?TV cDNA序列Fig.3 MYCT1?TV cDNA sequence after splicing
2.1.4 拼接后MYCT1-TVcDNA序列鑒定結果:參照我們所設計的PCR引物,RT-PCR產物大小理論上應為1 074 bp(除去polyA尾長度)。經RT-PCR檢測,我們獲得大小為1 000 bp左右的單一條帶(圖4),與預期相符,將產物膠回收后克隆至pMD18-T載體,連接、轉化后,篩選陽性質粒送測序,提取插入序列進行Blast分析,顯示克隆的片段確系MYCT1-TV的cDNA序列。

圖4 RT?PCR拼接后MYCT1?TV cDNA電泳圖Fig.4 Agar electrophoresis of MYCT1?TV cDNA after splicing by RT?PCR
2.1.5MYCT1-TV與MYCT1序列的比較分析:應用ExPASy proteomics server軟件,我們對MYCT1-TV的cDNA序列進行了分析,結果如圖5所示:MYCT1-TVcDNA全長1 106 bp,編碼包含187個氨基酸的蛋白質,蛋白分子量為20 835 Da,等電點為10.26,5′UTR長140 bp,3′UTR長370 bp,polyA尾長32 bp,其轉錄起始點位于MYCT1-TV的翻譯起始點ATG上游140 bp處(圖6A)。Blast分析結果顯示:MYCT1-TV-cDNA 5′旁側序列比MYCT1短,3′旁側序列比MYCT1長(圖6A);蛋白質序列的比較分析發現,MYCT1-TV編碼的氨基酸序列除了比MYCT1少48個氨基酸序列外,其余187個氨基酸序列與后者完全一致(圖6B),且經ExPASy proteomics server的分析結果顯示,減少的這48個氨基酸無明顯的結構域和功能域。

圖5 MYCT1?TV cDNA序列特征Fig.5 cDNA characteristics of MYCT1?TV
2.2MYCT1-TV在各細胞系中表達水平的檢測結果
RT-PCR結果顯示:MYCT1-TVmRNA在各細胞系中均有表達,在GES1和HEK293等正常細胞系中的表達水平顯著高于Hep2、HeLa、BGC823、SGC7901、Bel7402和MKN1等癌細胞系(P<0.01,圖7),MYCT1-TVmRNA在GES1和HEK293細胞系的表達水平與正常人外周血細胞相比無顯著差異(P>0.05,圖7),且在各腫瘤細胞中的表達也無顯著差異(P>0.05,圖7)。

圖6 MYCT1?TV和MYCT1的序列比較Fig.6 Comparison of MYCT1?TV and MYCT1sequences

圖7 MYCT1?TV在人各細胞系中mRNA的表達水平Fig.7 MYCT1?TV mRNA levels in different human cell lines
RACE是基于PCR技術,由已知的部分cDNA序列來獲得完整cDNA序列的一種方法,為Frohman在1985年首次報道[2]。該技術的出現解決了PCR擴增效率低和特異性差,不易得到完整的全長基因的問題。它可以從低豐度的轉錄本中快速擴增cDNA的 5′和3′末端。近年來對RACE技術進行了改進[3~5],SMART-RACE技術就是其中最經典、應用最廣泛的技術之一[6~10]。SMART技術最大限度地提高了在反轉錄反應中獲取全長cDNA的可能,只需一種引物和基因特異引物配對即可擴增出5′和3′RACE產物,而且只需cDNA第一鏈為模板,無需進行cDNA第二鏈的合成,也無需接頭的連接。對于只有少量起始材料的RNA,SMART-RACE也可以通過應用長距離PCR的方法,利用含poly(A)的RNA或總RNA甚至低豐度的轉錄產物作為起始材料來克隆全長cDNA[11],已成為目前公認的確定基因轉錄起始點、克隆基因cDNA精確全長的經典方法。
本研究利用GenBank數據庫中MYCT1的保守序列,通過SMART-RACE方法,從正常人外周血RNA中克隆獲得長1 106 bp的MYCT1的新的轉錄本MYCT1-TV,并精確定位了該基因的轉錄起始點位于MYCT1-TV基因ATG上游140 bp處。MYCT1-TV具有完整的開放閱讀框,且3′端有poly(A)加尾。開放閱讀框分析表明,該轉錄本編碼含187個氨基酸的蛋白質。氨基酸序列的比較結果發現,MYCT1-TV編碼的187個氨基酸完全是MYCT1編碼的235個氨基酸的一部分,且少的這48個氨基酸無明顯的結構域和功能域。表明2個轉錄本在結構上無明顯差異,但它們在功能上是否存在差異有待實驗進一步證實。
基因表達譜分析表明,MYCT1-TV在各個細胞系中均有表達,表明MYCT1-TV基因并不是喉部組織特異性基因,在其他組織細胞中也有表達,該基因可能對維持細胞的正常生理功能是必需的。另外,MYCT1-TV在腫瘤細胞中的表達水平顯著低于其在正常細胞系中的表達水平,這與MYCT1在喉癌[12]、胃癌[13]和乳腺癌[14]等腫瘤組織中表達下調的結果一致,表明其可能同樣發揮腫瘤抑制基因功能。
總之,MYCT1-TV基因轉錄起始點的確定和cDNA全長的克隆為研究該基因啟動子區的調控和基因功能奠定了基礎。
[1]邱廣斌,邱廣蓉,徐振明,等.6q25區域內一個新基因MTLC的克隆及特性分析[J].中華醫學遺傳學雜志,2003,20(2):94-97.
[2]徐燁,劉雅婷,代文瓊,等.幾種主要的RACE技術及應用[J].中國農業科技導報,2012,14(2):81-87.
[3]Yeku O,Frohman MA.Rapid amplification of cDNA ends(RACE)[J].Methods Mol Biol,2011,703:107-122.
[4]Dallmeier K,Neyts J.Simple and inexpensive three-step rapid amplification of cDNA 5′ends using 5′phosphorylated primers[J]. Anal Biochem,2013,434(1):1-3.
[5]Bower NI,Johnston IA.Targeted rapid amplification of cDNA ends(T-RACE)-an improved RACE reaction through degradation of nontarget sequences[J].Nucleic Acids Res,2010,38(21):e194.
[6]Li G,Luo H,Sun G,et al.Cloning and characterization of a novel apolipoprotein gene,apolipoprotein AV,in tree shrews[J].Mol Biol Rep,2013,40(9):5429-5438.
[7]Rampias TN,Fragoulis EG,Sideris DC.Efficient cloning of alternatively polyadenylated transcripts via hybridization capture PCR[J]. Curr Issues Mol Biol,2012,14(1):1-8.
[8]Zeng LG,Wang JH,Li YJ,et al.Molecular characteristics and expression of calmodulin cDNA from the freshwater pearl mussel,Hyriopsis schlegelii[J].Genet Mol Res,2012,11(1):42-52.
[9]Sun G,Li M,Li H,et al.Molecular cloning and SNP association analysis of chicken PMCH gene[J].Mol Biol Rep,2013,40(8):5049-5055.
[10]Cheng H,Kong W,Hou D,et al.Isolation,characterization,and expression analysis of CmMLO2 in muskmelon[J].Mol Biol Rep,2013,40(3):2609-2615.
[11]Tabansky I,Nurminsky DI.Mapping of transcription start sites by direct sequencing of SMART RACE products[J].Biotechniques,2009,34(3):482,485-486.
[12]Qiu GB,Hao DM,Gong LG,et al.MTLC gene was down-regulated in laryngeal cancer tissues and could promote apoptosis of Hep2 cells[J].Chin J Lab Med,2005,28(11):1178-1180.
[13]Qiu GB,Gong LG,Hao DM,et al.Expression of MTLC gene in gastric carcinoma[J].World J Gastroenterol,2009,9(10):2160-2163.
[14]歐陽小明,黃世章,梅開勇.MTLC基因在乳腺癌組織中的表達及其意義[J].中國煤炭工業醫學雜志,2006,9(7):695-696.
(編輯 王又冬)
Cloning and Expression Analysisofa Novel MYCT1Transcript
FUShuang1,2,SUNKai-lai1,FUWei-neng1
(1.DepartmentofMedicalGenetics,College ofBasic MedicalScience,China MedicalUniversity,Shenyang 110001,China;2.DepartmentofHematology Laboratory,Shengjing Hospital,China MedicalUniversity,Shenyang 110022,China)
ObjectiveTo identify the transcriptional start site and clone a novel transcript variant ofMYCT1(Myc target 1)for further study of its structure and function.MethodsTranscriptional start site was confirmed usingMYCT1conserved sequence by 5′-RACE method and a novelMYCT1isoform was cloned by splicing with 3′-RACE PCR product.Then,the cDNA or amino acid sequence betweenMYCT1and its isoform was compared using bioinformatics server.Finally,the expression profile of this novel transcript in different cell lines was detected through RT-PCR.Re?sultsA 1 106 bp transcript named MYCT1-TV(Myc target 1 transcript variant 1)was successfully cloned,and its transcriptional start site was confirmed which located at 140 bp upstream of the ATG start codon of MYCT1-TV.MYCT1-TV shows no obviously structural difference withMYCT1and is widely expressed in various cell lines.ConclusionThe transcriptional start site analysis and MYCT1-TV cloning provide an experimentalbasisforthe furtherexploration and understanding ofthe function and the transcriptionalregulation mechanism ofMYCT1.
MYCT1;MYCT1-TV;laryngeal squamous cell carcinoma;RACE
R394.3
A
0258-4646(2014)05-0388-05
國家自然科學基金(81372876);國家自然科學基金青年基金(81300420)
符爽(1983-),女,助理研究員,博士.
富偉能,E-mail:wnfu@mail.cmu.edu.cn
2014-01-06
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