不同濃度粒巨細胞集落刺激因子及白介素-4對樹突狀細胞體外誘導培養的影響

王曉婧，梅曉冬

（安徽醫科大學附屬省立醫院、安徽省立醫院呼吸內科，合肥 230001）

·基礎研究·

不同濃度粒巨細胞集落刺激因子及白介素-4對樹突狀細胞體外誘導培養的影響

王曉婧，梅曉冬

（安徽醫科大學附屬省立醫院、安徽省立醫院呼吸內科，合肥 230001）

目的探討不同濃度小鼠粒／巨噬細胞集落刺激因子（GM-CSF）和白介素-4（IL-4）對小鼠骨髓源性樹突狀細胞培養的影響，探索樹突狀細胞誘導培養的適宜條件。方法采用細胞裂解法分離得到Balb／c小鼠骨髓單個核樣細胞，分為多組，分別加入不同濃度GM-CSF和IL-4，并設置空白對照組，共培養7 d，每天觀察各組細胞形態，隔天拍照。第7天收集細胞，使用流式細胞法檢測細胞表面樹突狀細胞標志分子CD11c的表達率。結果低濃度GM-CSF及IL-4可培養出高純度小鼠骨髓源性樹突狀細胞，高濃度GM-CSF及IL-4可導致細胞死亡，GM-CSF和IL-4的合理細胞誘導濃度范圍分別為5～100μg／L和2.5～50μg／L。結論合適濃度的GM-CSF及IL-4可誘導小鼠骨髓單個核樣細胞向樹突狀細胞分化，獲得大量樹突狀細胞。

樹突細胞；細胞培養技術；巨噬細胞集落刺激因子；白細胞介素4

圖1 骨髓來源單個核樣細胞培養顯微鏡下細胞形態(×400)

圖2 合適濃度的細胞因子誘導培養7 d時細胞高表達CD11c的流式細胞圖

樹突狀細胞（DC）在組織內廣泛分布，但其數量極少，如在血液中只占血液細胞總數的不到1%。如何獲得大量的DC就成為進行DC相關研究首先必須解決的問題。目前獲取DC的方法有多種。主要有免疫磁珠直接篩選（MACS）和體外誘導法［1］。磁珠分選法費用昂貴且操作步驟復雜，最終分離到的DC數量又較有限，實驗成本較高。體外誘導法相對較為經濟方便。此方法系對采集的單核細胞或骨髓干細胞，用粒細胞／巨噬細胞集落刺激因子（GM-CSF）、白細胞介素4（IL-4）等細胞因子進行體外定向誘導分化，得到未成熟的DCs，再根據研究需要使用不同抗原刺激得到成熟的DC。本文探索采用不同濃度細胞因子誘導DCs生成的效果，確定誘導培養DC的合適細胞因子濃度，為進一步研究DCs創造必要條件。

1 材料與方法

1.1 主要試劑及儀器 重組小鼠GM-CSF、重組小鼠IL-4購自美國PerproTech公司，RPMI 1640培養液、胎牛血清（FBS）購自美國Hycolon公司，紅細胞裂解液購自Beyotime公司，熒光抗體PE anti-mouse CD11c美國eBioscience公司。

1.2 實驗動物 清潔級雌性Balb／c小鼠，6周齡，體質量20～25 g，由安徽醫科大學實驗動物中心提供，飼養于安徽省立醫院動物實驗中心。

1.3 骨髓細胞的制備 頸椎脫位法處死小鼠，無菌狀態下取股骨和脛骨，浸泡在RPMI-1640培養基中。用1 mL注射器吸取RPMI-1640培養液，從骨干的一端刺入骨髓腔，反復沖洗，直至骨變白，將骨髓沖洗至15mL離心管中，離心，1 200 r／min，共5min，棄去上清，以1∶5加入預溫的無菌紅細胞裂解液，反復吹打混勻，于室溫下靜置2 min溶解紅細胞后，再次離心，1 200 r／min，共5 min，棄上清。用RPMI-1640培養液洗滌2次，以完全RPMI-1640（含10% FBS，20萬U／L青霉素，20萬U／L鏈霉素）重懸，分裝于細胞培養板中，將細胞培養板放入37℃，5% CO2的孵箱中培養4 h，去除未貼壁細胞，以完全1640調整細胞濃度為1×106／mL，加入24孔培養板中，并在每孔中加入完全培養基2 mL，再加入不同濃度rmGM-CSF及IL-4，將細胞培養板放入37℃，含5%CO2的孵箱中繼續培養，隔天半量換液，同時補足相同濃度細胞因子，繼續培養至第7天，用吸管輕輕吹打后收集所有懸浮細胞。

其中按照培養基中所含細胞因子濃度不同共分為6組，每組設3個復孔。第1組：GM-CSF終濃度為5μg／L，IL-4終濃度為2.5μg／L，第2組GM-CSF終濃度為10μg／L，IL-4終濃度為5μg／L，第3組：GM-CSF終濃度為30μg／L，IL-4終濃度為15μg／L，第4組：GM-CSF終濃度為100μg／L，IL-4終濃度為50μg／L，第5組：GM-CSF終濃度為200μg／L，IL-4終濃度為100μg／L，第6組為空白對照組，培養基中未加入細胞因子。

1.4 細胞形態學觀察 每天用光學倒置相差顯微鏡動態觀察培養DC形態學變化，并于第0，3，5，7天拍攝細胞照片。

1.5 DC流式細胞儀檢測細胞表型 收集上述各組的細胞，離心，1 200 r／min，共5 min，棄上清，PBS漂洗2次，每組細胞用PBS調至濃度l×105個／mL，分裝于3個小管中，每管100μL，分別加入4μLPE抗鼠CD11c，于4℃避光標記30 min，PBS洗滌細胞2次，最后用400μL的PBS懸浮細胞，流式細胞儀分析DC的CD11c的陽性表達率。

1.6 流式細胞圖分析 采用Flowjo流式細胞圖分析軟件分析流式圖。

1.7 統計學處理 采用SPSS 13.0軟件，所有數據用±s表示，資料組間比較采用χ2檢驗。

2 結果

2.1 倒置顯微鏡觀察 每只小鼠可獲得骨髓細胞數（2.4～3.6）×107個，置于37℃，含5%CO2的孵箱中培養4 h后，部分細胞貼壁，培養液中可見大量的懸浮細胞，去除懸浮細胞后繼續培養24 h，倒置顯微鏡下觀察可見細胞貼壁生長，體積小，多為圓形，第2組及第3組可見細胞集落形成。第3天，各組細胞體積增大，部分細胞呈半懸浮狀態，呈梭形，蝌蚪狀，不規則形，第4、5組細胞數量減少，可見細胞碎片。第5天時可見1，2，3組懸浮細胞增多，部分細胞可見棘突，培養至第7天，第1、2、3、4組細胞集落分散，大量細胞懸浮，細胞表面可見多個突起，為未成熟DC，而第5組細胞稀疏，部分出現空泡，無典型DCs，見圖1。

2.2 流式細胞儀檢測細胞表型 培養第7天時，收集各組細胞經臺竇藍染色法檢測，各組活細胞率大于90%，提示培養細胞生理狀態正常。流式細胞儀檢測細胞表面CD11c分子結果顯示第1、2、3、4組培養，CD11c表達陽性的細胞比例分別為（89.67± 8.66）%，（90.51±9.49）%，（93.34±5.16）%，（56.73±6.27）%，第5組及第6組分別為0%，11.23%，第1～4組與5、6兩組間差異有統計學意義（P＜0.05），見圖2。圖示為第2組流式細胞結果，CD11c陽性細胞比例達到90.5%。結果顯示，本研究所采用的方法，能高效誘導骨髓單個核樣細胞分化為樹突狀細胞。所使用的刺激因子濃度較為合理。

3 討論

DC是體內重要的抗原提呈細胞，在腫瘤免疫、器官移植免疫及抗感染免疫中至關重要，和DC相關的許多臨床研究正在開展［1-4］。尤其在腫瘤免疫方面，DC疫苗已經成為一種新的腫瘤治療方法，已有文獻報道將DC腫瘤疫苗已用于非小細胞肺癌的I期臨床研究［5］，并獲得了良好的治療效果。因此如何能簡單、高效獲得大量高純度DC是很多研究的前提條件。目前已有文獻報道中GM-CSF和IL-4的誘導劑量差別很大，在2μg／L至500μg／L之間［6-9］。本研究探索了小鼠DCs體外培養中細胞因子的最適宜濃度，結果發現高濃度的細胞因子會導致細胞凋亡，GM-CSF和IL-4適宜濃度范圍分別為5～100μg／L和2.5～50μg／L，在該濃度范圍中，低濃度與較高濃度細胞因子誘導培養出的未成熟DC數量及純度上無明顯差別，能獲得較高純度的DC。CD11c是DC表面所特有的標志性蛋白，在未成熟和成熟DC表面均有高表達。實驗室研究中常用CD11c陽性與否來判斷所研究的細胞是否是DC。本研究中誘導培養得到的細胞，其CD11c的陽性率能高達90%以上，顯示本研究所使用的細胞因子誘導濃度較為合理，誘導得到的細胞絕大多數為DC。研究結果提示本實驗方法可行，為DC細胞相關研究，提供了可靠的DC細胞獲得手段，為進一步研究DC建立了良好基礎。

（本文圖1，2見插圖2-1）

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Generation of dendritic cells with appropriate concentration of granu Iocyte-macrophage coIony-stimu Iating factor and interleukin-4

WANG Xiaojing，MEI Xiaodong（Department of Respiratory，Anhui Provincial Hospital，Hefei230001，China）

MEIXiaodong，Email：hfmχd＠sina.com

ObjectiveTo investigate the appropriate concentration range ofmurine granulocyte-macrophage colony-stimulating factor（GM-CSF）and interleukin-4（IL-4）in incubating mouse bone marrow monocytes-like cellsand proper conditions for dendritic cell differentiation.Methods The progenitor of dendritic cellswere isolated from bone marrow of Balb／cmice，and incubated in different dose ofmouse granuIocyte-macrophage coIony-stimu Iating factor and interleukin-4 for continuously seven days，themorphology of cells in each group were observed undermicroscope and snapped with digital camera every other day.The expression of CD11c was detected with flow cytometry.ResultsMorphological observation revealed thatmouse bonemarrow monocytes-like cells changed remarkably when cultured with low dose of cytokine.Cells became large and showed dendritic protruding on their surface.Furthermore，most cells were CD11c positive when detected by flow cytometry.The appropriate GM-CSF and IL-4 dose rangewere5 μg／L～100μg／L and 2.5μg／L～50μg／L respectively，while cytokines of overhigh concentration cause cell death.ConclusionDendritic cells can be derived from bonemarrowmonocytes-like cellswith appropriate dose of GM-CSF and IL-4 treatmentwith High purity DCs.

Dendritic cells；Cell culture techniques；Macrophage colony-stimulating factor；Interleukin-4

R329.24

A

10.3969／J.issn.1672-6790.2014.02.017

2013-05-05）

2013年度安徽省自然科學基金項目（1308085MH115）

王曉婧，碩士在讀，Email：ahslyywxj＠gmail.com

梅曉冬，主任醫師，碩士生導師，Email：hfmxd＠sina.com