王 晶 單立冬 趙紅如
間充質(zhì)干細(xì)胞移植治療帕金森病的研究進(jìn)展
王晶單立冬趙紅如
帕金森病(PD)是一種以靜止性震顫、肌強(qiáng)直、運(yùn)動遲緩為主要癥狀,常見于中老年的慢性進(jìn)行性神經(jīng)系統(tǒng)退行性疾病,多樣化的治療途徑,如針對DA和其它神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng)的新型藥物、神經(jīng)營養(yǎng)因子、基因療法及干細(xì)胞治療等[1,2]均有緩解疾病的潛力。由于DA能神經(jīng)元丟失部位較集中,PD特別適合細(xì)胞和基因治療。研究表明不同來源的干細(xì)胞[3,4]、誘導(dǎo)多能干細(xì)胞[5]在一定的培養(yǎng)條件下均能向DA能神經(jīng)元分化。大多數(shù)干細(xì)胞治療PD動物模型的實(shí)驗(yàn)研究均基于DA能神經(jīng)元干細(xì)胞可以發(fā)展為替代病變的神經(jīng)元[3,6],但較多研究表明間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)也能保護(hù)和刺激受損DA能神經(jīng)元細(xì)胞[7,8]。本文闡述MSCs的特性及其在PD模型治療中的作用機(jī)制。
MSCs是一類多能干細(xì)胞,源于發(fā)育早期的中胚層和外胚層。主要存在于結(jié)締組織和器官間質(zhì)中,以骨髓組織中含量最為豐富。該細(xì)胞具有如下特性:(1)自我更新和多向分化潛能 在一定培養(yǎng)條件下,MSCs除具有分化為中胚層細(xì)胞潛能外,還可以突破胚系壁壘,跨系分化為神經(jīng)元樣細(xì)胞和星形膠質(zhì)細(xì)胞等。MSCs連續(xù)傳代培養(yǎng)和冷凍保存后仍具有多向分化潛能及干細(xì)胞特性。(2) MSCs組織來源豐富、取材方便、易進(jìn)行體外擴(kuò)增、供者來源幾乎無限制性,不涉及相關(guān)的倫理問題。(3)低免疫原性能夠逃避受者免疫系統(tǒng)反應(yīng),并能夠誘導(dǎo)外周免疫耐受。(4)MSCs能夠遷移。在損傷腦研究中發(fā)現(xiàn)MSCs能遷移到損傷處[9]。(5)MSCs致瘤率較低。(6)MSCs體外基因轉(zhuǎn)染率高,并能穩(wěn)定高效表達(dá)外源基因等優(yōu)點(diǎn)。
2.1MSCs移植治療PD 大量PD動物模型實(shí)驗(yàn)已經(jīng)證實(shí)MSCs可以保護(hù)DA能神經(jīng)元,重要的是可以促進(jìn)神經(jīng)元的再生[8,10]。LiY[11]是第一位證實(shí)移植BMSCs至MPTP誘導(dǎo)的PD大鼠模型后行為恢復(fù)。而在6-OHDA誘導(dǎo)的DA神經(jīng)元丟失后,也可以觀察到移植的BMSCs生存能力和遷移明顯增加。Offen等[12]將BMSCs誘導(dǎo)為能表達(dá)DA能神經(jīng)元標(biāo)記的細(xì)胞,并將其移植至6-OHDA誘導(dǎo)的PD模型中,大多數(shù)移植的細(xì)胞能在紋狀體內(nèi)存活,表達(dá)酪氨酸羥化酶(TH)增加,促進(jìn)動物行為恢復(fù)。Delcroix等[13]用DA誘導(dǎo)的人MSCs亞群結(jié)合藥物活性微載體移植至PD大鼠內(nèi),能夠保護(hù)和修復(fù)黑質(zhì)紋狀體通路并促進(jìn)行為康復(fù)。
2.2MSCs作為載體在治療PD的潛能 由于神經(jīng)營養(yǎng)因子不能通過血腦屏障,向腦內(nèi)移植MSCs能穩(wěn)定存活并分泌所需神經(jīng)營養(yǎng)因子的細(xì)胞,將使臨床應(yīng)用MSCs治療PD成為可能。MSCs體外基因轉(zhuǎn)染率高,并能穩(wěn)定高效表達(dá)外源基因等優(yōu)點(diǎn),因此是體外基因治療的一個理想的載體。雖然移植MSCs能明顯改善PD動物模型的運(yùn)動功能障礙,但其功效和生存力有限。近幾年基因修飾和轉(zhuǎn)導(dǎo)MSCs治療PD研究得到廣泛關(guān)注。大量研究[14]證明通過MSCs傳遞生長因子的蛋白或基因能有效的保護(hù)PD動物的DA能神經(jīng)元,特別是神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞源性神經(jīng)營養(yǎng)因子和神經(jīng)秩蛋白。Teresa等[14]研究腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子轉(zhuǎn)導(dǎo)的MSCs移植至PD的大鼠模型中的作用,經(jīng)移植后6-OHDA誘導(dǎo)損傷的大鼠移植鄰近區(qū)TH陽性細(xì)胞數(shù)明顯增加,TH免疫熒光染色發(fā)現(xiàn)GDNF轉(zhuǎn)導(dǎo)的BMSCs 在DA變性壞死的紋狀體內(nèi)能誘導(dǎo)顯著的營養(yǎng)效應(yīng),提示移植細(xì)胞可能分泌神經(jīng)營養(yǎng)因子能使殘余的多巴胺能神經(jīng)末梢芽生。Shi等[15]把TH和GDNF轉(zhuǎn)染的BMSCs分別移植至6-OHDA 損傷的大鼠腦內(nèi),均明顯減少阿樸嗎啡誘導(dǎo)的大鼠旋轉(zhuǎn)行為。與未修飾的BMSCs比較,神經(jīng)生長因子修飾的BMSCs對PD鼠的行為恢復(fù)有更明顯效果。
3.1MSCs旁分泌因子對神經(jīng)元的保護(hù)和修復(fù) MSCs能分泌一系列的生長因子、神經(jīng)營養(yǎng)因子和細(xì)胞因子[16]。將人MSCs分別移植至大鼠腦內(nèi),發(fā)現(xiàn)移植的MSCs可刺激內(nèi)源性神經(jīng)營養(yǎng)因子的表達(dá)增加[17]。Shintani等[18]發(fā)現(xiàn)MSCs的條件培養(yǎng)基也能明顯減少6-OHDA損傷的DA神經(jīng)元死亡。此外,有研究顯示移植入PD模型腦中的MSCs可分化為神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞并促進(jìn)GDNF的分泌,從而減輕6-OHDA的神經(jīng)毒性[19]。
3.2MSCs與宿主細(xì)胞的相互作用 除了對宿主DA神經(jīng)元的作用外,移植的MSCs分泌的營養(yǎng)因子能作用內(nèi)源性的神經(jīng)干細(xì)胞,膠質(zhì)細(xì)胞和血管,促進(jìn)神經(jīng)組織修復(fù)和功能康復(fù)。體外研究顯示MSCs能發(fā)出促進(jìn)神經(jīng)干細(xì)胞和小膠質(zhì)細(xì)胞分化的信號,并能促進(jìn)宿主自身的神經(jīng)干細(xì)胞的增殖和遷移[20]。Cova等[20]將人MSCs移植至6-OHDA損傷的紋狀體,增強(qiáng)腦室下區(qū)的神經(jīng)再生,推測移植的MSCs與內(nèi)源性神經(jīng)干細(xì)胞的相互作用對于DA神經(jīng)元的修復(fù)至關(guān)重要。除此以外,Park等[21]認(rèn)為MSCs移植至PD模型可促進(jìn)腦室下區(qū)和黑質(zhì)紋狀體的神經(jīng)再生,增加神經(jīng)干細(xì)胞向DA神經(jīng)元的分化,由此推測移植的MSCs對內(nèi)生性神經(jīng)干細(xì)胞很可能通過分泌皮生長因子與其在腦室下區(qū)的受體起作用。
3.3旁分泌因子的抗凋亡作用 缺血和受損傷的大腦,在移植BMSCs后細(xì)胞凋亡減少和神經(jīng)元的存活率增加,細(xì)胞增殖能力加強(qiáng)。給予蛋白酶體抑制劑MG-13導(dǎo)致DA神經(jīng)元進(jìn)行性丟失,而移植人MSCs明顯緩解TH陽性細(xì)胞的減少和capase-3活性降低[22]。此外,有研究者發(fā)現(xiàn)MSCs對6-OHDA的神經(jīng)保護(hù)作用部分是通過SDF-1的抗凋亡作用介導(dǎo)。
3.4MSCs免疫調(diào)節(jié)及抗炎作用機(jī)制 炎癥和小膠質(zhì)細(xì)胞增殖是PD發(fā)病機(jī)制之一,研究表明激活的小膠質(zhì)細(xì)胞出現(xiàn)在PD的早期且與DA的降解有關(guān),且促炎性因子水平升高。而MSCs在免疫系統(tǒng)有雙重作用,既可抑制免疫又可激活免疫反應(yīng),同種異體MSCs移植至大鼠PD模型引起細(xì)胞免疫應(yīng)答;另一方面,其可對免疫細(xì)胞產(chǎn)生廣泛的抑制作用。細(xì)胞間的相互接觸可促使具有不同免疫調(diào)節(jié)作用的因子釋放,包括白介素6、腫瘤壞死因子、前列腺素、肝細(xì)胞生長因子、巨噬細(xì)胞集落刺激因子、吲哚胺2、3加雙氧酶等[23]。通過合成IL-1受體拮抗劑,分泌抗TNF刺激基因/蛋白6,釋放PGE2發(fā)揮抗炎作用。
3.5轉(zhuǎn)分化與融合機(jī)制 大多數(shù)MSCs誘導(dǎo)方案利用不同的化學(xué)合成物、生長因子及信號分子,通過與小膠質(zhì)細(xì)胞、神經(jīng)元或神經(jīng)干細(xì)胞、星形膠質(zhì)細(xì)胞共培養(yǎng),促進(jìn)MSCs分化為神經(jīng)元細(xì)胞。某些特定基因(如BDNF)過表達(dá)也可促進(jìn)MSCs的轉(zhuǎn)分化。然而關(guān)于移植MSCs后轉(zhuǎn)分化為神經(jīng)元的潛力有待進(jìn)一步評估。體內(nèi)研究MSCs分化神經(jīng)細(xì)胞的能力,經(jīng)過遷移分化,所觀察的源自MSCs分化的數(shù)量和膠質(zhì)細(xì)胞相當(dāng)少,不足以修復(fù)一個損傷的組織結(jié)構(gòu)[24]。也有研究表明MSCs能與宿主神經(jīng)細(xì)胞發(fā)生少見細(xì)胞融合的作用[25]。故認(rèn)為轉(zhuǎn)分化或MSCs與宿主神經(jīng)元融合可能是誘導(dǎo)功能恢復(fù)的次要因素。
盡管MSCs越來越受到人們重視,但將其廣泛用于臨床PD患者的治療仍有許多問題亟待解決。(1)MSCs雖取材方便、來源廣、免疫原性弱等方面優(yōu)于神經(jīng)干細(xì)胞,可自體移植避免免疫排斥反應(yīng),但是目前掌握的研究資料不多,尚無充分的證據(jù)表明其是更理想的種子細(xì)胞。且移植的MSCs存活時間較短,未來的策略旨在通過針對凋亡通路提高體內(nèi)MSCs存活能力及持續(xù)分泌神經(jīng)營養(yǎng)因子水平。(2)MSCs是細(xì)胞靶向治療PD的最佳載體。MSCs能透過血腦屏障并傾向性遷移至損傷部位,基因修飾治療仍在研究中,應(yīng)選擇合適的移植方法并保證MSCs良好的遷移能力。(3)選擇合適的移植方案以保證臨床收益最大,需要考慮的因素包括移植細(xì)胞的保存方式、移植數(shù)量、靶點(diǎn)選擇、免疫抑制劑的應(yīng)用及其療效等,這些均有待于進(jìn)一步研究。
此外,精確的生物安全性和有效性的研究是焦點(diǎn)。在考慮利用基因方法改造的MSCs時存在生物安全問題,攜帶神經(jīng)營養(yǎng)因子或其他因子的基因載體隨機(jī)整合冒有插入整合的風(fēng)險。然而非病毒載體及目標(biāo)基因傳遞的快速發(fā)展能解決這個安全問題。另一方面治療時間窗對于神經(jīng)退行性病變的患者是非常重要的,在今后研究中需要確定。總之,移植MSCs或經(jīng)基因修飾的MSCs對PD治療有較大幫助,但其作用機(jī)制仍需更深入研究。
1 Rafieh A,Soraya M,Mahmoudreza H.Cell Therapy in Parkinson's Disease.Archives of Neuroscience,2014,1(2):43~50.
2 Wakeman DR,Dodiya HB,Kordower JH.Cell transplantation and gene therapy in Parkinson's disease.Mt Sinai J Med,2011,78:126~158.
3 Barzilay R,Kan I,Ben-Zur T,et al.Induction of human mesenchymal stem cells stem cells into dopamine-producing cells with different differentiation protocols.Stem Cells Dev, 2008, 17: 547~554.
4 Kriks S, Shim JW, Piao J, et al. Dopamine neurons derived from human ES cells efficiently engraft in animal models of Parkinson's disease. Nature, 2011, 480:547~551.
5 JonathanA S,Xiping Z,Jinchong X, et al. Proneural transcription factor atoh1 drives highly efficient differentiation of human pluripotent stem cells into dopaminergic neurons. stem Cells Transl Med,2014,3(8):888~898.
6 Ganz J,Lev N,Melamed E,et al.Cell replacement therapy for Parkinson's disease: how close are we to the clinic?Expert. Rev. Neurother,2010,11(9):1325~1339.
7 Glavaski Joksimovic A,Virag T,MangatuTA,et al.Glial cell line-derived neurotrophic factor-secreting genetically modified human bone marrow-derived mesenchymal stem cells promote recovery in a rat model of Parkinson's disease.J Neurosci. Res,2010,88(12):2669~2681.
8 Bouchez G,Sensebe L,Vourc'h P,et al.Partial recovery of dopaminergic pathway after graft of adult mesenchymal stem cells in a rat model of Parkinson's disease. Neurochem Int, 2008, 52(7):1332~1342.
9 Deng J, Zou ZM,Zhou TL,et al. Bone marrow mesenchymal stem cells can be mobilized into peripheral blood by G-CSF in vivo and integrate into traumatically injured cerebral tissue. Neurol Sci, 2011,32(4):641~643.
10 Blandini F, Cova L, Armentero MT,et al.Transplantation of undifferentiated human mesenchymal stem cells protects against 6-hydroxydopamine neurotoxicity in the rat. Cell Transplant, 2010,19(2):203~217.
11 LiY,ChenJ,ZhangL,et al.Intracerebral transplantation of bone marrows cells a1methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine mouse model of Parkinson's disease. Neurosci. Lett,2002,316(2):67~70.
12 Offen D, Barhum Y, Levy YS,et al. Intrastriatal transplantation of mouse bone marrow-derived stem cells improves motor behavior in a mouse model of Parkinson's disease. J. Neural Transm, 2007, (Suppl):133~143.
13 Delcroix GJ, Garbayo, E Sindji L,et al.The therapeutic potential of human multipotent mesenchymal stromal cells combined with pharmacologically active microcarriers transplanted in hemiparkinsonian rats.Biomaterials,2011, 32(6):1560~1573.
14 Teresa C,Moloney, Gemma E,et al. Potential of rat bone marrowderived mesenchymal stem cells as vehicles for delivery of neurotrophins to the Parkinsonian rat brain.Brain Reseach, 2013,1359(4):33~43.
15 Shi D,Chen G, Wei D,et al.The effect of lentivirus-mediated TH and GDNF genetic engineering mesenchymal stem cells on Parkinson's disease rat model. Neurol.Sci, 2011, 32(1):41~51.
16 Chang ML, Shao JW, Tung HT,et al.Neurotrophic and neuroprotective potential of human limbus-derived mesenchymal stromal cells. Cytotherapy,2014,16(10): 1371~1383.
17 Wakabayashi K, Nagai A, Sheikh AM,et al. Transplantation of human mesenchymal stem cells promotes functional improvement and increased expression of neurotrophic factors in a rat focal cerebral ischemia model. J. Neurosci. Res, 2009, 88(5): 1017~1025.
18 Shintani A, Nakao N, Kakishita K,et al. Protection of dopamine neurons By bone marrow stromal cells. Brain Res, 2008, 1186(1):48~55.
19 Blandini F,Cova L,Armentero MT,et al. Transplantation of undifferentiated human mesenchymal stem cells protects against 6-hydroxydopamine neurotoxicity in the rat. Cell Transplant, 2010,19(2): 203~217.
20 Cova L, Armentero MT, Zennaro E,et al. Multiple neurogenic and neurorescue effects of human mesenchymal stem cell after transplantation in an experimental model of Parkinson's disease. Brain Res, 2010,1311:12~27.
21 Park HJ, Shin JY, Lee BR,et al .Mesenchymal stem cells augment neurogenesis in the subventricular zone and enhance differentiation of neural precursor cells into dopaminergic neurons in the substantia nigra of a parkinsonian model. Cell Transplant,2012,21: 1629~1640.
22 Park HJ, Lee PH, Bang OY, et al. Mesenchymal stem cells therapy exerts neuroprotection in a progressive animal model of Parkinson's dis ease.J.Neurochem,2008,107(1): 141~151.
23 Prockop DJ, Oh JY. Mesenchymal stem stromal cells (MSCs): role as guardians of inflammation. Mol. Ther, 2012, 20(1):14~20
24 Alexanian AR, Maiman DJ, Kurpad SN, et al. In vitro and in vivo characterization of neurally modified mesenchymal stem cells induced by epigenetic modifiers and neural stem cell environment. Stem Cells Dev, 2008,17:1123~1130.
25 Opez-IglesiasP,Blazquez-MartinezA,F(xiàn)ernandez-DelgadoJ, et al. Short and long term fate of human AMSC subcutaneously injected in mice. Stem cells, 2011, 3(6): 53~62.
215000 蘇州大學(xué)第一附屬醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科