劉蘭泉
摘要:牛皰疹病毒-4(BoHV-4)是丙型皰疹病毒科的新成員,對奶牛血管內皮細胞、乳腺組織、子宮內膜、胎兒組織均有很強的親和力,對牛的繁殖機能具有不同程度的影響。綜述BoHV-4對牛繁殖的影響,旨在為其致病機理的研究提供依據。
關鍵詞:牛皰疹病毒-4;繁殖;影響
中圖分類號: S852.65+3文獻標志碼: A文章編號:1002-1302(2016)05-0311-02
牛皰疹病毒-4(Bovine herpesvirus,BoHV-4)是導致牛生殖障礙的主要病毒之一,該病毒在細胞中的培養和生長特性(宿主范圍窄、復制周期長等)與巨細胞病毒(CMV)相似,感染組織培養細胞后均形成高密度包涵體和巨細胞,因此被歸入乙型皰疹病毒亞科[1]。BHV-4具有皰疹病毒共有的一般形態特征,病毒粒子直徑約為150 nm,有囊膜核衣殼,呈立體對稱的正20面體。該病毒對乙醚、氯仿、丙酮等脂溶劑均很敏感[1]。目前,BoHV-4可感染牛、綿羊、山羊、豚鼠、貓、獅子等[2],導致其生殖障礙。
1BoHV-4的病毒生物學
BoHV-4主要在黏膜上皮細胞內增殖,通過被感染的單核細胞在生物體內傳播。在感染的急性階段,病毒主要在血液淋巴細胞內增殖;感染后7~8周,病毒的增殖速度最快[3]。該病毒對子宮內膜和內皮細胞具有顯著的親和力,并以此方式侵入各種組織和器官。BoHV-4不僅感染子宮和乳腺,在脾臟、膀胱、中樞神經系統、神經節、肝臟、肺臟、鼻腔黏膜、淋巴結、胸腺、扁桃體、小腸中也可分離到[4]。BoHV-4對分裂細胞的親和力較高,可穿過胎盤屏障在胎兒內大量復制。首次感染后,病毒潛伏在淋巴細胞和巨噬細胞內,建立潛伏感染,病毒復制可被應激或地塞米松治療重新激活[5]。
2BoHV-4的流行病學
1963年,Bartha等首次從患有呼吸系統疾病和結膜炎的犢牛體內分離到BoHV-4[6];此后,很多國家相繼分離到該病毒。在全球動物中,BoHV-4血清陽性率為4.2%~30.0%[7],在某些豬群的發病率甚至高達80%。動物的年齡顯著影響其血清陽性率,于2~3歲后急劇升高。野生動物似乎不參與BoHV-4的傳播[8]。
3BoHV-4的致病性
BoHV-4已被發現與多種疾病直接相關,如腹膜炎、不孕、流產、子宮炎、陰道炎、睪丸炎、乳腺炎、腹瀉(與隱孢子蟲有關)、新生兒猝死、肺炎、小牛眼部疾病、腦炎、皮膚損傷、滑膜炎、蹄葉炎[9],但在健康動物體內也能分離到該病毒。模型試驗表明,接種BoHV-4后妊娠雌性發展為陰道炎、子宮內膜炎或流產;與此相反,試驗感染牛通常無癥狀或僅有輕微的臨床癥狀。BoHV-4可與其他傳染因子協同致病,感染BoHV-4的病例中75%已被鑒定出含有細菌、真菌或其他病毒。基于流行病學觀察BoHV-4對生殖的影響,與健康動物相比,患子宮炎的動物具有更高的血清陽性率、流產及不育癥發病概率[10]。
3.1子宮炎
BoHV-4在子宮內膜細胞中復制會引起細胞病變效應[2],在患有子宮炎(定義為子宮內感染,發生于產犢后 21 d)、子宮內膜癌的動物體內,以及被感染動物的陰道、子宮、腹膜液、血液中均可分離到BoHV-4。生殖器液體病毒排出可能在產后持續長達21 d。在子宮內膜炎(定義為產后子宮炎癥超過21 d,對健康不產生任何影響)病例體內也分離到了該病毒[11]。在疾病的急性期,32%~86%的奶牛體內檢測不到BoHV-4抗體。在牛場,患嚴重子宮炎的母牛體內可分離到BoHV-4,藥物治療后癥狀并無緩解。經產母牛中子宮炎的患病率可達到59%。Wellemans等報道,牛人工感染BoHV-4后死亡率很高,10頭感染牛中4頭于病毒攻擊后17~72 d死亡[12]。
BoHV-4也可在健康無癥狀的動物生殖器樣品中檢測到。BoHV-4在產犢時被重新激活,可能與血液中的高皮質醇水平及該時期的各種應激有關。此外,在患有子宮炎動物的子宮液中分離到BoHV-4后,還分離到了化膿隱秘桿菌、大腸桿菌、鏈球菌屬、檸檬酸桿菌屬等細菌。在感染BoHV-4 的22頭患有子宮炎的病牛中,19頭同時分離到了細菌和 BoHV-4[12]。子宮內同時分離出的致病菌、BoHV-4以及試驗接種的有限成功病例表明,BoHV-4感染是細菌發展的誘發因素。BoHV-4現已被認為是產后子宮炎癥發展的輔助因子。牛產犢后,子宮腔被大腸桿菌、化膿性鏈球菌等環境中的細菌短暫污染,這些細菌通過TLR受體被子宮內膜上皮細胞識別,誘導炎癥性細胞因子的合成。這些細胞因子招募巨噬細胞等多形核細胞,從血液進入子宮內膜間質層。在慢性感染的動物體內,巨噬細胞是BoHV-4定居的部位,因此也被招募進入已發炎的子宮壁。生長于子宮內的細菌所產生的炎性分子激活了病毒復制,病毒的細胞病變效應導致子宮內膜細胞被感染和溶解[13]。BoHV-4通過2條途徑增加了炎癥的嚴重程度,即LPS刺激巨噬細胞產生腫瘤壞死因子,在子宮內膜間質細胞活化NF-kB途徑,增強了BoHV-4的復制和IL-8的產生;病毒復制也能誘導IL-8的合成,IL-8會促進子宮腔內白細胞的滲出[14-15]。IL-8是最有效的中性粒細胞趨化及活化因子。TNFα和IL-8促進中性粒細胞介導的組織損傷,刺激中性粒細胞的脫顆粒和脂質代謝,以及活性氧和蛋白酶的胞外釋放。單純試驗接種BoHV-4一般只引起輕微癥狀,這可能與細菌和高血皮質醇水平對產犢過程中BoHV-4復制的影響有關[13]。
3.2流產
部分流行病學資料可表明BoHV-4與奶牛流產的關系。在比利時,有流產史奶牛的BoHV-4血清陽性率(17.2%)顯著高于健康奶牛(10.0%)[16]。感染BoHV-4已被證明是流產的危險因素[17],該病毒主要存在于流產胎兒的脾淋巴細胞、單核細胞中,偶爾在肝枯否氏細胞、腎小管中被發現,并被證明在胎盤上皮內復制,除了引起胎盤炎性浸潤外沒有任何特征性組織學病變。BoHV-4通過破壞胎盤細胞引發胎盤炎癥,改變與妊娠有關的免疫平衡,導致動物流產[18]。
3.3不孕不育
血清BoHV-4陽性率高的牛大多發生不孕,69%的母牛檢測到BoHV-4抗體,人工授精3~14次后僅有44%的奶牛受孕[19]。據報道,屠宰場中不育母牛子宮內的BoHV-4檢出率為87%[10]。
3.4胚胎移植
建立胚胎移植可預防牛感染BoHV-4。BoHV-4緊密附著于透明帶上,不會感染胚胎細胞,除非透明帶斷裂。體外產生的胚胎即時孵化后很難感染BoHV-4,而13%的胚泡細胞在相似條件下會感染BoHV-1。可見,無論在體內或體外,BoHV-4均不會對胚胎發育造成風險[20]。
3.5公牛生殖器疾病
比利時學者首次從患有無精癥睪丸炎的公牛體內分離到BoHV-4。該病毒可潛伏在睪丸和單核細胞內,被重新激活后通過鼻和眼部排泄,因此精子成為病毒傳播的潛在載體[21]。
3.6乳腺疾病
在臨床或亞臨床乳腺炎病例中已分離到BoHV-4,甚至在健康牛的乳汁中也分離到了該病毒。然而,在患有臨床型乳房炎牛所產的牛奶中,該病毒含量比健康牛所產牛奶高 6.4%。據Kalman等報道,93%的亞臨床乳房炎奶牛排泄BoHV-4,而健康奶牛僅為6%[22]。該病毒存在于乳腺細胞和乳腺組織中。在子宮內膜、乳腺上皮細胞中,BoHV-4入侵與細胞變性、脫落、化膿性炎癥有關。該病毒已在乳腺膿皰性皮炎、乳腺慢性潰瘍性皮炎的皮膚中被發現[17]。
BoHV-4對乳腺的致病作用尚不明確。單個乳房內接種病毒(連同鼻內接種)引起的亞臨床乳房炎占感染者的50%,但并未引起臨床型乳房炎。金黃色葡萄球菌、乳房鏈球菌等乳腺內細菌的感染,會引起病毒在乳腺免疫細胞、乳腺導管上皮細胞內激活和復制。該病毒還可增加初始細菌性乳腺炎的嚴重程度和持續時間。病毒通過免疫抑制作用(感染單核細胞)及破壞血管內皮導致乳腺炎的發展。在乳腺中與子宮中相似,BoHV-4不是主要的致病因子[17],只會引發亞臨床型乳房炎。
4結論
BoHV-4廣泛存在于牛體內,致病力有限,但其連同細菌感染會加劇子宮、陰道、乳腺的某些臨床疾病。迄今尚無BoHV-4的可用疫苗,針對該病毒的治療方法僅包括支持療法和控制細菌生長繁殖。盡管BoHV-4可導致奶牛致死性子宮炎,但其致病機理尚不明確,有待進一步研究。
參考文獻:
[1]陳弟詩,郭萬柱,李雯,等. 牛皰疹病毒-4研究進展[J]. 動物醫學進展,2011,32(6):127-134.
[2]Donofrio G,Herath S,Sartori C,et al. Bovine herpesvirus 4 is tropic for bovine endometrial cells and modulates endocrine function[J]. Reproduction,2007,134(1):183-197.
[3]Egyed L,Ballagi-Pordány A,Bartha A,et al. Studies of in vivo distribution of bovine herpesvirus type 4 in the natural host[J]. Journal of Clinical Microbiology,1996,34(5):1091-1095.
[4]Izumi Y,Tsuduku S,Murakami K,et al. Characterization of bovine herpesvirus type 4 isolated from cattle with mastitis and subclinical infection by the virus among cattle[J]. The Journal of Veterinary Medical Science,2006,68(2):189-193.
[5]Dubuisson J,Thiry E,Bublot M,et al. Experimental infection of bulls with a genital isolate of bovine herpesvirus-4 and reactivation of latent virus with dexamethasone[J]. Veterinary Microbiology,1989,21(2):97-114.
[6]Bartha A,Juhász M,Liebermann H. Isolation of a bovine herpesvirus from calves with respiratory disease and keratoconjunctivitis:a preliminary report[J]. Acta Veterinaria Academiae Scientiarum Hungaricae,1966,16(3):357-358.
[7]Graham D A,Mcneill G J,Calvert V,et al. Virological and serological evidence of bovine herpesvirus type 4 in cattle in Northern Ireland[J]. The Veterinary Record,2005,157(18):539-543.
[8]Wellenberg G J,Van Rooij E M,Maissan J,et al. Evaluation of newly developed immunoperoxidase monolayer assays for detection of antibodies against bovine herpesvirus 4[J]. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology,1999,6(4):447-451.
[9]Montagnaro S,Ciarcia R,Pagnini F,et al. Bovine herpesvirus type 4 infection modulates autophagy in a permissive cell line[J]. Journal of Cellular Biochemistry,2013,114(7):1529-1535.
[10]Fábián K,Makrai L,Sachse K,et al. An investigation of the aetiological role of bovine herpesvirus 4 in bovine endometritis[J]. Veterinary Journal,2008,177(2):289-292.
[11]Monge A,Elvira L,Gonzalez J V,et al. Bovine herpesvirus 4-associated postpartum metritis in a Spanish dairy herd[J]. Research in Veterinary Science,2006,80(1):120-125.
[12]Nak Y,Dagalp S B,Cetin C,et al. Course and severity of postpartum
metritis cases following antibiotic and PGF2α administration in postpartum metritis cows infected with BoHV-4[J]. Transboundary and Emerging Diseases,2011,58(1):31-36.
[13]Jacca S,Franceschi V,Colagiorgi A,et al. Bovine endometrial stromal cells support tumor necrosis factor alpha-induced bovine herpesvirus type 4 enhanced replication[J]. Biology of Reproduction,2013,88(5):135.
[14]Sheldon I M,Cronin J,Goetze L,et al. Defining postpartum uterine disease and the mechanisms of infection and immunity in the female reproductive tract in cattle[J]. Biology of Reproduction,2009,81(6):1025-1032.
[15]Donofrio G,Capocefalo A,Franceschi V,et al. The chemokine IL8 is up-regulated in bovine endometrial stromal cells by the BoHV-4 IE2 gene product,ORF50/Rta:a step ahead toward a mechanism for BoHV-4 induced endometritis[J]. Biology of Reproduction,2010,83(6):919-928.
[16]Czaplicki G,Thiry E. An association exists between bovine herpesvirus-4 seropositivity and abortion in cows[J]. Preventive Veterinary Medicine,1998,33(1/2/3/4):235-240.
[17]Wellenberg G J,Bruschke C J,Wisselink H J,et al. Simultaneous intramammary and intranasal inoculation of lactating cows with bovine herpesvirus 4 induce subclinical mastitis[J]. Veterinary Microbiology,2002,86(1/2):115-129.
[18]Deim Z,Szeredi L,Egyed L. Detection of bovine herpesvirus 4 DNA in aborted bovine fetuses[J]. Canadian Journal of Veterinary Research,2007,71(3):226-229.
[19]Gür S,Doan N. The possible role of bovine herpesvirus type-4 infection in cow infertility[J]. Animal Science Journal,2010,81(3):304-308.
[20]Donofrio G,Galli C,Lazzari G,et al. Interaction of a green recombinant bovine herpesvirus 4 with in vitro-produced bovine embryos[J]. Veterinary Research Communications,2003,27(5):415-424.
[21]Egyed L,Sassi G,Tibold J,et al. Symptomless intrauterine transmission of bovine herpesvirus 4 to bovine fetuses[J]. Microbial Pathogenesis,2011,50(6):322-325.
[22]Kálmán D,Jánosi S,Egyed L. Role of bovine herpesvirus 4 in bacterial bovine mastitis[J]. Microbial Pathogenesis,2004,37(3):125-129.