袁博,張昕輝,張燦燦,李歡送
(徐州市中心醫院,江蘇徐州221009)
術前靜滴思美泰對肝癌切除患者術后肝功能的影響及其機制探討
袁博,張昕輝,張燦燦,李歡送
(徐州市中心醫院,江蘇徐州221009)
目的觀察術前靜滴思美泰(S-腺苷蛋氨酸)對肝癌切除患者術后肝功能的影響,并探討其機制。方法將60例原發性肝癌患者隨機分為A、B組各30例,A組術前3 d連續靜滴思美泰,B組不用。兩組采用肝門間歇阻斷法切肝,記錄術中切除肝臟大小、肝門阻斷時間、出血量,術后均常規保肝治療。分別于術前第3天及術后第1、3、5天取空腹靜脈血,檢測肝功能(ALT、AST、LDH)。術中切取肝組織,ELISA法檢測氧化應激指標[丙二醛(MDA)、銅鋅超氧化物歧化酶(Cu-Zn SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)]。結果兩組術中切除肝臟大小、肝門阻斷時間、出血量比較,差異無統計學意義(P均>0.05)。兩組術前第3天血清ALT、AST、LDH比較,差異無統計學意義(P均>0.05)。兩組術后血清ALT、AST、LDH均升高,術后第1天達高峰后逐漸降低,術后第5天接近術前水平;A組術后血清ALT(第1、3、5天)、AST(第1、3天)、LDH(第1天)水平均低于B組,差異有統計學意義(P均<0.05)。與B組比較,A組術中肝組織勻漿中MDA水平降低而Cu-Zn SOD、GSH-Px水平升高(P均<0.05)。結論術前靜滴思美泰對肝癌切除患者術后肝功能有保護作用,可能與其抑制氧化應激損傷有關。
原發性肝癌;S-腺苷蛋氨酸;急性肝損害;肝功能;丙二醛;超氧化物歧化酶;谷胱甘肽過氧化物酶
肝切除術后常并發肝功能損傷,主要是由于肝門血流阻斷導致的缺血再灌注后氧化應激反應造成的[1];另外,手術切除、擠壓等可導致肝細胞質膜破裂,線粒體轉運功能障礙。內源性肝細胞保護劑谷胱甘肽(GSH)在線粒體中合成,線粒體功能障礙必然導致GSH合成減少,抗氧化作用減弱,肝功能損害逐步加重。肝臟外科術后常規保肝治療已成規范,而術前使用保肝藥物尚無明確規范。在臨床工作中,思美泰(S-腺苷蛋氨酸)在膽汁淤積性肝病、酒精性肝病、非酒精性肝纖維化、慢性病毒性肝炎等疾病中的治療作用已得到證實[2~4]。2012年8月~2016年12月,我們對肝門阻斷下原發性肝癌切除術患者術前靜滴思美泰,觀察其對患者術后肝功能的影響,并探討其機制。
1.1 臨床資料 選擇同期徐州市中心醫院收治的原發性肝癌患者60例,經病史、實驗室檢查、B超、CT、MRI等確診。患者中男52例、女8例,年齡36~68歲;腫瘤直徑(3.1±7.8)cm,肝功能Child-Pugh A級或接近A級;無廣泛肝外轉移,符合根治性手術切除標準。將患者術前隨機分為A、B組各30例,其性別、年齡腫瘤直徑及肝功能Child-Pugh分級具有可比性。
1.2 治療方法 A組術前3 d連續靜滴思美泰150 mg/d,B組不使用思美泰。兩組均于常溫下行肝門間歇阻斷法切肝,記錄術中切除肝臟大小、肝門阻斷時間、出血量。術后均生理鹽水100 mL+注射用復方甘草酸單銨160 mg保肝治療,另予抗生素預防感染、奧美拉唑預防應激性潰瘍及補液支持等治療,血清白蛋白<30 g/L者予靜脈補充人血白蛋白或血漿。
1.3 肝功能檢測方法 于術前第3天和術后第1、3、5天,由肘部靜脈抽空腹血,常規測定血清肝功生化指標(ALT、AST、LDH)。
1.4 肝組織氧化應激指標檢測方法 術中切除部分肝臟組織標本,制備勻漿,取上清液,使用ELISA試劑盒檢測氧化應激指標,包括丙二醛(MDA)、銅鋅超氧化物歧化酶(Cu-Zn SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)。

2.1 兩組手術情況比較 兩組均無手術而導致的死亡,術后常見并發癥均經積極處理后治愈。兩組術中切除肝臟大小、肝門阻斷時間、出血量比較,差異無統計學意義(P均>0.05)。見表1。

表1 兩組術中切除肝臟大小、肝門阻斷時間、出血量比較
2.2 兩組手術前后血清ALT、AST、LDH水平比較 兩組術前第3天血清ALT、AST、LDH比較,差異無統計學意義(P均>0.05)。兩組術后血清ALT、AST、LDH均升高,術后第1天達高峰后逐漸降低,術后第5天接近術前水平;A組術后血清ALT(第1、3、5天)、AST(第1、3天)、LDH(第1天)水平均低于B組,差異有統計學意義(P均<0.05)。見表2。

表2 兩組手術前后血清ALT、AST、LDH水平比較
注:與同組術前第3天比較,*P<0.05;與B組術后同時點比較,#P<0.05。
2.3 兩組術中肝組織勻漿中MDA、Cu-Zn SOD、GSH-Px水平比較 與B組比較,A組術中肝組織勻漿中MDA水平降低而Cu-Zn SOD、GSH-Px水平升高(P均<0.05)。見表3。

表3 兩組術中肝組織勻漿中MDA、Cu-Zn SOD、GSH-Px水平比較
注: 與B組比較,*P<0.05。
目前手術是治療肝癌的主要方法,而手術會導致肝損傷,甚至肝功能衰竭而死亡。多種因素均會影響肝功能,如肝硬化程度、Child-Pugh分級,肝臟切除的范圍、術中阻斷肝門時間、出血輸血等。缺血再灌注損傷是肝臟外科手術中普遍存在的問題,如何提高肝臟的自我保護能力,調動其內源性保護機制,是目前肝臟外科研究的熱點問題。目前,術前保肝治療尚未得到統一的認可。術前使用思美泰對肝癌切除患者術后肝功能是否有保護作用,是本研究的重點。
S-腺苷蛋氨酸是人體內重要的生理活性物質。在各種試驗模型中,發現腺苷蛋氨酸的抗膽汁淤積作用與下列機制有關:①促進腺苷蛋氨酸依賴性質膜磷脂的合成,降低膽固醇與磷脂比例,從而恢復細胞質膜的流動性[5]。②克服轉硫基反應障礙,促進內源性解毒過程中硫基的合成[6]。腺苷蛋氨酸對各類肝炎、肝硬化、梗阻性黃疸等急慢性肝病均有良好的作用,廣泛應用于臨床中。Karaa等[3]研究認為,慢性酒精性刺激聯合脂多糖可引起肝臟纖維化,而應用S-腺苷蛋氨酸可抑制氧化應激反應和肝星狀細胞活化,顯著減輕了肝臟纖維化,保護和修復了受損的肝功能。研究[8]發現,使用S-腺苷蛋氨酸在減輕梗阻性黃疸患者瘙癢癥狀、恢復總膽紅素和堿性磷酸酶方面明顯優于使用安慰劑者。
基礎研究認為,許多疾病的產生與由自由基和抗氧化劑的失衡有關。過量的自由基最終導致細胞膜、DNA、酶的損傷,引起細胞凋亡與惡變[9]。肝細胞在防御氧化應激損傷中有一系列的抗氧化機制,主要包括一些抗氧化酶(如SOD、GSH-Px、谷胱甘肽還原酶、6-磷酸葡萄糖脫氫酶等)、金屬結合蛋白(鐵蛋白、銅藍蛋白)和維生素等[10]。當自由基產生過多、過快,不能及時被抗氧化劑中和時,氧化應激損傷就發生了,相應的引起抗氧化防御功能的下降[11]。這種細胞環境容易引起肝功能異常,逐漸導致肝損傷。例如:缺血再灌注過程中,缺血、缺氧的環境下極易引起急性肝損傷[12~15]。
本研究結果顯示,兩組術中切除肝臟大小、肝門阻斷時間、出血量比較,差異無統計學意義。兩組術前第3天血清ALT、AST、LDH比較,差異無統計學意義。兩組術后血清ALT、AST、LDH均升高,術后第1天達高峰后逐漸降低,術后第5天接近術前水平;A組術后血清ALT(第1、3、5天)、AST(第1、3天)、LDH(第1天)水平均低于B組,差異有統計學意義。與B組比較,A組術中肝組織勻漿中MDA水平降低而Cu-Zn SOD、GSH-Px水平升高。因此,我們認為術前靜滴思美泰對肝癌切除患者術后肝功能有保護作用,可能與其抑制氧化應激損傷有關。
[1] Uchiyama K, Mori K, Tabuse K, et al. Assessment of liver function for successful hepatectomy in patients with hepatocellular carcinoma with impaired hepatic function[J]. J Hepatobiliary Pancreat Surg, 2008,15(6):596-602.
[2] Purohit V, Russo D. Role of S-adenosyl-L-methionine in the treatment of alcoholic liver disease: introduction and summary of the symposium[J]. Alcohol, 2002,27:151-154.
[3] Karaa A, Thompson KJ, McKillop IH, et al. S-adenosyl-L-methionine attenuates oxidative stress and hepatic stellate cell activation in an ethanol-LPS-induced fibrotic rat model[J]. Shock, 2008,30(2):197-205.
[4] Lu SC, Mato JM. S-adenosylmethionine in liver health, injury, and cancer[J]. Physiol Rev, 2012,92(4):1515.
[5] Hao X, Huang Y, Qiu M, et al. Immunoassay of S-adenosyl-L-methionine and S-adenosylhomocysteine: the methylation index as a biomarker for disease and health status[J]. BMC Res Notes, 2016,9(2):498-501.
[6] Montgomery SE, Sepehry AA, Wangsgaard JD, et al. The effect of s-adenosylmethionine on cognitive performance in mice: an animal model meta-analysis[J]. PLoS One, 2014,9(10):756-761.
[7] Noureddin M, Mato JM, Lu SC, et al. Nonalcoholic fatty liver disease: Update on pathogenesis, diagnosis, treatment and the role of S-adenosylmethionine[J]. Exp Biol Med (Maywood), 2015,240(6):809-820.
[8] Perez-Leal O, Moncada C, Clarkson AB, et al. pneumocystis s-adenosylmethionine transport:a potential drug target[J]. Cell Mol Biol, 2011,45(6):1142-1146.
[9] Petrossian TC, Clarke SG. Uncovering the human methyltransferasome[J]. Mol Cell Proteomics, 2011,10(6):110-114.
[10] Cano A, Buqué X, Martínez-Ua M, et al. Methionine adenosyltransferase 1A gene deletion disrupts hepatic very low-density lipoprotein assembly in mice[J]. Hepatology, 2011,54(6):1975-1986.
[11] Tomasi ML, Tomasi I, Ramani K, et al. S-adenosylmethionine regulates ubiquitin-conjugating enzyme 9 protein expression and sumoylation in human cancers[J]. Hepatology, 2012,56(5):982-993.
[12] García-Trevijano ER, Latasa MU, Carretero MV, et al. S-adenosylmethionine regulates MAT1A and MAT2A gene expression in cultured rat hepatocytes: a new role for S-adenosylmethionine in the maintenance of the differentiated status of the liver[J]. FASEB J, 2000,14(3):2511-2518.
[13] Ou X, Yang H, Ramani K, et al. Inhibition of human betaine-homocysteine methyltransferase expression by S-adenosylmethionine and methylthioadenosine[J]. Biochem J, 2007,401(5):87-96.
[14] Agrimi G, Di Noia MA, Marobbio CM, et al. Identification of the human mitochondrial S-adenosylmethionine transporter: bacterial expression, reconstitution, functional characterization and tissue distribution[J]. Biochem J, 2004,379(3):183-190.
[15] Alpert JE, Papakostas G, Mischoulon D, et al. S-adenosyl-L-methionine (SAMe) as an adjunct for resistant major depressive disorder: an open trial following partial or nonresponse to selective serotonin reuptake inhibitors or venlafaxine[J]. J Clin Psychopharmacol, 2004,24(3):661-664.
10.3969/j.issn.1002-266X.2017.34.012
R735.5
B
1002-266X(2017)34-0038-03
2017-03-12)
李歡送(E-mail: shimingyb@aliyun.com)