劉 棣,張寅斌,宋玲琴,閆婉君,趙小瑤,盛倩文,許 朋,張淑群
(西安交通大學第二附屬醫院腫瘤科,西安 710004)
氟尿嘧啶是臨床最常用的胃癌化療藥物,通過干擾腫瘤細胞DNA合成而發揮抗癌作用。胃癌是常見的惡性腫瘤,在東亞國家發病率較高。胃癌的發生是多個癌基因、抑癌基因共同作用的結果。胃癌是預后較差的消化道腫瘤之一。胃癌治療失敗的主要原因是化療耐藥性的產生[1]。研究顯示,腫瘤細胞可抑制活化5-Fu所需的關鍵酶,增強5-Fu代謝酶的活性,降解胸腺嘧啶核苷酸合成酶(TS)還原性葉酸底物,TS活性變化,這些機制都會產生對抗5-Fu的作用。隨著對微小RNA(microRNA,miRNA)認識的不斷深入,近年來對胃癌化療耐藥性的研究轉向了miRNA。它是非編碼的單鏈小RNA,通常含有18~25個核苷酸序列[2],miRNA廣泛存在于生物體內,通過轉錄后調控,作用于靶基因mRNA的3′-UTR區參與生物學過程調控,在人類發育、腫瘤發生、發展過程中具有重要作用,miRNA的異常表達與腫瘤的發生、發展密切相關[3]。miR-34家族由miR-34a、miR-34b和miR-34c 3個成員組成,研究表明,miR-34a在多種腫瘤中異常表達,與腫瘤的發生密切相關。筆者研究了miRNA-34a在胃癌腫瘤細胞中對5-Fu化療敏感性的影響,探討5-Fu在胃癌細胞中的耐藥機制。
1.1一般資料 選取2013年12月~2015年12月在西安交通大學第二附屬醫院診斷為胃癌并接受手術治療的5例患者手術后標本,男4例,女1例,平均年齡58歲。分別對胃癌組織和癌旁組織進行取材。
1.2材料與試劑 人胃癌細胞株SGC7901,GC823,MGC803,KATOⅢ 和MKN45人胃黏膜細胞GES-1(中國科學院上海生命科學研究院細胞資源中心)。采用RPMI 1640和DMEM培養基采購培養細胞(Hyclone公司);以miRNA mimics、miRNA inhibitor轉染腫瘤細胞(Dharmacon公司,引物由北京華大基因公司合成);RT-PCR相關試劑(TAKARA公司);5-Fu(美國Sigma公司)。
2.1細胞培養與轉染 選取人胃癌細胞BGC823、MGC803、SGC7901、KATOⅢ和MKN 45及人胃黏膜細胞株GES-1培養在含10%小牛血清的DMEM中。取細胞接種于6孔細胞培養板(2.5×105·孔-1)。采用miR-34a mimic,negative control瞬時轉染KATOⅢ細胞株。以無血清DMEM培養基洗滌,加完全培養基繼續培養。轉染后的細胞進行后續實驗。
2.2胃癌細胞組織RNA提取 將細胞轉入培養板,加入Trizol裂解液,移液器混勻。組織置于液氮中,研磨成碎片,按照比例加入Trizol 100 mg和組織1 mL,轉入勻漿儀處理。加入氯仿,振蕩15 s。按protocol離心15 min,水相轉移到新管中,采用異丙嗪沉淀水相中的RNA,離心10 min,棄上清液,用體積分數為75%的乙醇洗滌RNA沉淀,真空抽干RNA沉淀,加入無Rnase水200 μL,60 ℃放置10 min,標本于-80 ℃保存,備用。
2.3RT-PCR檢測 采用Trizol法處理提取RNA,標本于-80 ℃保存,用紫外分光光度法測定RNA濃度,波長為260~280 nm,吸光度值A為1.7~2.2。瞬時轉染后,通過定量PCR檢測轉染后miR-34a表達量的變化。采用TaKaRa試劑盒進行逆轉錄反應,反應體系10 μL,反應條件為:37 ℃ 15 min,85 ℃ 5 s。產物于4 ℃保存,加入到下一步的real time PCR反應。定量PCR采用SYBR?Premix Ex TaqTM試劑盒進行RT-PCR。95C預變性5 min,95C變性 10 s,60C退火 20 s,72C延伸 20 s,78C 20 s,共40個循環,重復3次,收集反應數據。U6 snRNA作為內參,按照2-ΔΔCt法計算miR-34a的表達水平。
2.4四唑鹽比色法(MTT)檢查藥物濃度反應 取對數期KATOⅢ細胞轉入96孔細胞培養板中(200 μL·孔-1)培養,每孔104個細胞,24 h后轉染。設置5-Fu濃度梯度:0,5,10,20,40和80 μmol·L-1等比稀釋后加入96孔板。在48 h后加入四唑鹽(MTT)10 μL,進行MTT檢測,孵育4 h后,取上清液,加入DMSO,振蕩10 min,酶標儀于490 nm處檢測吸光度值。計算IC50值。
2.5四唑鹽比色法(MTT)檢查細胞增殖 取對數期KATOⅢ細胞轉入96孔細胞培養板中(200 μL·孔-1)培養24 h后,采用miR-34a mimic,negative control瞬時轉染后,分別于轉染后24,48和72 h對miR-34a mimic組和negative control組進行MTT檢測。
2.6統計學處理 以SPSS 17.0統計軟件完成。miR-34a的表達量、增殖率的比較采用t檢驗分析。P<0.05為差異有統計學意義。
3.1胃癌細胞株中miR-34a的表達 定量PCR檢測各胃癌細胞株miR-34a表達水平,以胃黏膜細胞GES-1為參照,miR-34a相對表達量為1,對各胃癌細胞中miR-34a的表達量進行對比。結果顯示,胃癌細胞BGC823、KATOⅢ、MGC803、MKN45和SGC7901中miR-34a的表達均低于胃黏膜細胞GES-1的表達水平(P<0.05),分別為0.223 75±0.015,0.248±0.025,0.34±0.041,0.302±0.035和0.386±0.032。
3.2胃癌組織中miR-34a的表達 通過定量PCR檢測各胃癌組織及鄰近正常組織miR-34a表達水平,對比胃癌組織中miR-34a的表達。實驗結果顯示,胃癌組織中miR-34a的表達均低于鄰近胃正常組織的表達水平(P<0.05),見表1。
表1胃癌組織中miR-34a的表達情況
Tab.1 The expression of miR-34a in gastric cancer tissue

患者編號正常組織(N)腫瘤組織(T)PT10.938 7±0.0120.343±0.042*PT21.145±0.1050.352±0.048*PT30.855±0.030.545 5±0.035*PT41.103 5±0.0650.648±0.049*PT50.751±0.0610.628±0.052 6*
注:與正常組織(N)比較*P<0.05。
3.3miR-34a增加腫瘤細胞對5-Fu的敏感性 本研究選取的胃癌細胞BGC823、KATOⅢ、MGC803、MKN45和SGC7901中miR-34a均處于低表達狀態,選取惡性程度較高的KATOⅢ進一步研究miR-34a對5-Fu敏感性的影響。在KATOⅢ 細胞中,上調miR-34a表達后按濃度梯度加入化療藥物5-Fu。藥物作用48 h后,MTT法檢測各組細胞吸光度值A,藥物濃度反應曲線顯示,與negative control(NC)組比較,miR-34a mimics組IC50值下降(P<0.05)。上調miR-34a后,KATOⅢ 細胞對5-Fu敏感性增加。見圖1。

圖1miR-34a對KATOⅢ細胞5-Fu(mol·L-1)敏感性的影響(*P<0.05)
Fig.1 The influence of miR-34a on sensitivity of 5-Fu (mol·L-1) in KATOⅢ cells (*P<0.05)
3.4miR-34a抑制KATOⅢ細胞增殖 轉染后,檢測各組細胞增殖情況,miR-34a mimics組與control組相比較,miR-34a組對腫瘤細胞增殖有明顯的抑制作用(P<0.05),見圖2。

圖2miR-34a對細胞增殖的影響(*P<0.05)
Fig.2 The influence of miR-34a onKATOⅢ cell proliferation (*P<0.05)
胃癌對5-Fu的耐藥性一直備受關注,腫瘤的耐藥機制較復雜,涉及多個基因和過程,是多個因素共同作用的結果[4]。研究顯示,耐藥相關基因異常表達,會使抗腫瘤藥物濃度下降,影響藥物的療效[5-7]。近年來,有研究顯示,miRNAs也通過多種途徑直接或間接地參與調控腫瘤的耐藥性和敏感性[8-14]。通過miRNAs來影響腫瘤對藥物的敏感性成為可能[15-18]。
研究表明,一些miRNAs可能增加腫瘤化療的耐藥性[19]。一項入組1 299例乳腺癌相關miRNA研究中發現,miR-105和miR-93-3p在乳腺癌中處于高表達狀態,且與三陰性乳腺癌較差的預后密切相關,其機制可能是miR-105和miR-93-3p通過下調SFPR1,從而激活癌細胞Wnt/β-catenin通路活性,促進三陰性乳腺癌細胞的干細胞性,增加化療耐藥性,促進腫瘤轉移[20]。相反,有一些miRNAs被認為可以增加腫瘤化療敏感性。胰腺癌常對化療藥物耐藥,研究表明,miR-429在吉西他濱耐藥細胞株SW1990/GZ中低表達,而上調miR-429的表達后,PDCD4的表達也上調,而SW1990/GZ細胞對吉西他濱的敏感性,體外的PDCD4敲除實驗和動物體內研究表明,miR-429通過調控胰腺癌細胞中的PDCD4,來增加胰腺癌細胞對吉西他濱的敏感性[21]。Kim C H等[1]在胃癌中做了耐藥性相關miRNAs的研究,發現上調let-7、miR-342和miR-16等的表達,可調控腫瘤細胞的凋亡,增加化療敏感性。而一些與鉑類、氟尿嘧啶耐藥相關的miRNAs與疾病進展時間密切相關。本研究發現,miR-34a無論是在胃癌細胞還是在胃癌組織中都處于低表達狀態。其中在胃癌細胞KATOⅢ中同樣處于較低表達狀態,依此推斷miR-34a在胃癌中發揮抑癌作用。在分化較差的KATOⅢ細胞中上調了miR-34a的表達,檢測胃癌細胞發現,癌細胞對化療藥物的敏感性增加。KATOⅢ細胞株被認為是P53突變、表達缺失的細胞株,上調miR-34a的表達后,細胞的增殖被抑制,提示這可能恢復了P53的功能,腫瘤細胞因此表現為對化療藥物更為敏感。依此推測miR-34a在胃癌細胞中的這種調控機制可能與其下游的Notch和Bcl-2等基因相關,它可能參與了胃癌腫瘤干細胞的自我更新和分化,這一推測還有待后續的研究進一步證實。
藥物耐藥性和敏感性一直都是研究中的難點問題[22-26]。5-Fu作為消化道腫瘤基礎的化療藥物,在臨床中廣泛應用,本研究以miRNAs為著眼點,探索研究了5-Fu在胃癌治療中敏感性的可能機制,結果表明,5-Fu的化療敏感性受miR-34a的調控,被認為是其調控機制之一,可能在胃癌的化療中發揮重要作用,為今后的研究奠定了一定的理論基礎。