鄧愛民 李建華
(鄭州澍青醫學高等專科學校,河南 鄭州 450064)
目前,針對肝癌最有效的治療方法是手術治療〔1〕,然而85%的患者在診斷時已發生遠處轉移,單純的手術切除甚至肝臟移植都不能獲得很好的治療效果〔2〕。MicroRNA(miRNAs)為單鏈非編碼小分子RNA,通過與靶基因互補結合抑制基因的蛋白翻譯或者降解mRNA使基因的表達水平下調。研究發現,miRNAs通過調節細胞增殖、凋亡、侵襲和轉移等過程參與腫瘤的發生發展〔3〕。同樣,許多miRNAs在肝癌的發生過程中發揮重要作用。比如miR-135a通過作用于FOXO1促進肝癌細胞的遷移和侵襲過程〔4〕。而miR-300在骨肉瘤和胃癌組織中均有較高的表達水平,在骨肉瘤中miR-300通過靶向下調溴含蛋白質(BRD)7參與腫瘤的增殖和侵襲過程,但是關于miR-300在肝癌中發揮作用的研究較少。本文運用肝癌細胞系HepG2和Hep3b,探討miR-300對肝癌細胞增殖和侵襲的影響,并通過過表達實驗判斷miR-300的靶基因BRD7是否參與該過程。
1.1細胞與質粒 人肝癌細胞系HepG2、Hep3b和人胚腎上皮細胞293T細胞由中國科學院上海細胞庫提供,其中HepG2和Hep3b生長于RPMI1640培養基中〔含10%滅活胎牛血清(FBS)、青霉素(100 U/ml)、鏈霉素(100 μg/ml)、2 mmol/L L-谷氨酰胺〕。293T細胞生長于10% FBS DMEM培養基中。內參質粒為海腎熒光素酶的質粒pRL-TK,購自美國 Promega 公司。pGL3-control報告質粒由本實驗室提供,同時本實驗室將質粒(序列為BRD7 3′UTR)插入pGL3-control蟲熒光素酶序列下游,測序后命名為pGL3-BRD7 3′UTR。miRNAs定量引物(廣州銳博生物科技公司)。上海吉瑪制藥技術有限公司合成miR-300模擬物(mimic)和陰性對照(NC)。
1.2熒光素酶實驗 將293T細胞(規格為2×104個/孔)接種于48孔板,同時加入0.2 ml DMEM培養基孵育。次日,根據LipofectamineTM 2000(Invitrogen,CA,USA)說明書在293T細胞內將miR-300 mimic和NC分別與pGL3-control或pGL3-BRD7 3′UTR及pRL-TK質粒共同轉染。轉染48 h后,收集細胞,應用GLOMAX多功能酶標儀分析熒光素酶。
1.3實時熒光定量PCR(qRT-PCR)檢測miRNAs的表達 于實驗前1 d在6孔板中鋪入5×104HepG2和Hep3b,次日細胞貼壁,細胞匯合度在60%~70%,依據LipofectamineTM 2000說明書操作,將miR-300 mimic和NC分別轉染入HepG2和Hep3b細胞,轉染48 h后,Trizol試劑提取總RNA,按照SYBR?Premix Ex TaqTM(Tli RNaseH Plus)說明書建立反轉錄體系,qRT-PCR實驗的操作由ABI7300定量PCR儀完成。所用引物序列見表1。反應溫度: 95℃ 30 s 預變性,95℃ 5 s,60℃ 31 s 循環40次。Ct值按照Applied Biosystem公司 ABI PRISM 7700 Sequence Detection System User Bulletin #2推薦方法獲得,并進行計算,比較目的基因在細胞中的表達水平。采用Real-Time PCR儀器(ABI公司,型號:7900)進行分析,結果根據2-ΔΔCt法進行計算。
1.4Western印跡檢測 在293T細胞中完成miR-300 mimic和NC的轉染過程,轉染48 h后,收集細胞,完成Western印跡實驗。將200 μg/孔加入酶標板中,在電壓恒定為60 V的條件下,電泳0.5 h,當蛋白進入分離膠后,在電壓恒定為110 V的條件下,電泳1.5 h,然后在電流恒定為80 mA的條件下,將蛋白轉膜100 min至聚偏氟乙烯(PVDF)膜,然后用 5%脫脂牛奶37℃封閉 1 h,Tris鹽酸緩沖液(TBS-T)洗 5 min,洗1 次;加入以抗體稀釋液 1∶1 000配制的鼠抗人BRD7(Santa Cruz,USA)抗體4℃ 過夜,TBS-T洗 10 min共3次; 加入抗體稀釋液 1∶4 000配制的辣根過氧化物酶(HRP)標記的山羊抗小鼠IgG,37℃作用1 h,使用TBS-T清洗3次,每次10 min,采用增強化學發光法(ECL)檢測熒光度。使用抗體稀釋液 1∶1 000配制的抗α-tubulin作為一抗,二抗為抗體稀釋液 1∶4 000 配制的 HRP標記的山羊抗小鼠IgG。
1.5CCK-8增殖實驗 實驗前24 h,在HepG2和Hep3b細胞完成miR-300 mimic和NC的轉染過程,第2天在96孔板中接種胰酶消化細胞(3 000個/孔),CO2培養箱溫度設置為37℃,濃度為5%,培養5 d內每天每孔中加入10 μl CCK-8,培養1 h,空白孔作為對照,調零,波長設置為450 nm,采用Bioteck DR-3506全自動酶標儀測量OD值。
1.6Matrigel侵襲實驗 RPMI1640 混合液〔2份基質膠(BD Biosciences,USA)和1份RPMI1640 培養基〕置于冰上。24 孔板中加入Transwell 小室(Merck Millipore,Darmstadt,德國),在每個小室中加入RPMI-1640 混合液,體積為60 μl,將500 μl 10%FBS RPMI1640培養基加入下室,CO2培養箱溫度設置為37℃,濃度為5%,培養5 h。使用RPMI1640培養基配制成細胞懸液(5×105個/ml)消化轉染有miR-300 mimic和NC的細胞。將200 μl 細胞懸液加入小室內,平行做3次。把24孔板放置在細胞培養箱中,培養6 h和12 h后進行小室染色固定,應用CARL ZEISS LSM 510顯微鏡計數,通過統計下室的細胞數量評估細胞侵襲狀態。
1.7統計學方法 應用SPSS17.0軟件行方差分析、t檢驗。
2.1過表達miR-300促進肝癌細胞的增殖 將miR-300 mimic和NC分別轉染入HepG2和Hep3b細胞,qRT-PCR首先檢測miR-300的表達水平,與轉染NC比較,轉染miR-300 mimic后,HepG2和Hep3b細胞中miR-300的表達水平均上升〔(4.30±0.61)vs(1.00±0.30),(5.60±0.30)vs(1.00±0.25)〕,差異具有統計學意義(t=8.521,20.403;P=0.001,0.000)。接著進行CCK-8增殖實驗結果顯示,在實驗第3、4、5天,轉染miR-300 mimic組HepG2細胞的增殖能力與NC組比較差異有統計學意義(P<0.05);同樣,在實驗第3、4、5天,轉染miR-300 mimic組Hep3b細胞的增殖能力與NC組比較差異有統計學意義(P<0.05),提示過表達miR-300后細胞的增殖能力明顯高于對照組。見表2。

表2 轉染后不同時間點過表達miR-300促進肝癌細胞的增殖
與NC組比較:1)P<0.05,與第1天比較:2)P<0.05
2.2過表達miR-300促進肝癌細胞的侵襲 Matrigel侵襲實驗結果發現,HepG2細胞在6 h或12 h侵襲到小室底部的細胞數,轉染miR-300 mimic組多于NC組,差異有統計學意義(P<0.05)。同樣,Hep3b細胞在6 h或12 h侵襲到小室底部的細胞數,轉染miR-300 mimic組多于NC組(P<0.05),提示過表達miR-300明顯促進HepG2和Hep3b細胞的侵襲能力。見表3。

表3 培養不同時間過表達miR-300促進肝癌細胞的侵襲
與6 h比較:1)P<0.05
2.3miR-300靶向作用于BRD7 熒光素酶雙報告實驗結果顯示,miR-300能顯著抑制pGL3-BRD7 3′UTR蟲熒光素酶報告質粒的活性,差異具有統計學意義(P<0.05),見表4。進一步通過將miR-300 mimic與NC分別轉染入293T細胞,利用Western印跡實驗檢測BRD7的表達水平,結果顯示,與轉染NC相比,轉染miR-300 mimic后的293T細胞中BRD7的蛋白表達水平明顯下調,見圖1,提示miR-300通過直接靶向BRD7并抑制其表達。
2.4過表達BRD7抑制肝癌細胞的增殖過程 為了說明BRD7是否參與miR-300促進肝癌細胞的增殖過程,將BRD7質粒及對照分別轉染入過表達NC和miR-300 mimic的HepG2和Hep3b細胞中進行CCK-8增殖實驗。在HepG2組中,第3、4、5天,miR-300 mimic+對照質粒組細胞增殖能力與NC+對照質粒組比較,差異均有統計學意義(P<0.05);而第3、4、5天,NC+對照質粒組細胞增殖能力均高于NC+BRD7組,差異均有統計學意義(P<0.05);且第3、4、5天,miR-300 mimic+對照質粒組細胞增殖能力與miR-300 mimic+BRD7組比較,差異均有統計學意義(P<0.05)。而Hep3b中CCK-8的結果與HepG2的結果一致。以上結果說明過表達BRD7后能明顯抑制肝癌細胞的增殖能力。見表5。

表4 miR-300靶向作用于BRD7比較

圖1 Western印跡檢測BRD7蛋白表達水平

表5 轉染后不同時間點過表達BRD7抑制肝癌細胞的增殖過程
整體分析為兩因素重復測量方差分析;組間兩兩比較為LSD-t檢驗;1)2)3)分別為與NC+對照質粒組,NC+BRDT組,miR-300 mimic+對照質粒組比較:P<0.05;時間兩兩比較為差值t檢驗;與第1天比較:4)P<0.05
2.5過表達BRD7抑制肝癌細胞的侵襲過程 為了說明BRD7是否參與miR-300促進肝癌細胞的侵襲過程,在轉染入NC和miR-300 mimic的細胞HepG2中分別過表達BRD7質粒及對照質粒,進行Matrigel 侵襲實驗,結果顯示,無論6 h還是 12 h,過表達 BRD7 后HepG2細胞的遷移能力均明顯減弱,差異具有統計學意義(P<0.05);同樣,無論6 h還是12 h,過表達 BRD7后Hep3b細胞的侵襲能力均明顯減弱,差異具有統計學意義(P<0.05),提示miR-300通過靶向BRD7促進肝癌細胞的侵襲能力。見表6。

表6 培養不同時間過表達BRD7抑制肝癌細胞的侵襲過程
整體分析為兩因素重復測量方差分析;組間兩兩比較為LSD-t檢驗;1)2)3)分別為與NC+對照質粒組,NC+BRD7組,miR-300 mimic+對照質粒組比較:P<0.05;時間兩兩比較為差值t檢驗;與12 h比較:4)P<0.05
從肝炎病毒感染到肝癌的發生包括一系列過程,如病毒導致持續的肝損傷發展為肝硬化、肝衰竭最后發展為肝癌〔5〕。證據表明,miRNAs在腫瘤發生的早期至晚期過程中都發揮重要作用〔6〕。許多特征性的miRNAs表達譜在肝臟疾病中發生變化。而對這些miRNAs作用的深入研究將為miRNAs作為腫瘤診斷、分期、預后等潛在的非侵入性的生物標記提供理論基礎。本研究發現,過表達miR-300可以促進肝癌細胞的增殖和侵襲過程,且驗證了BRD7為miR-300的靶基因,當過表達BRD7時肝癌細胞的增殖和侵襲過程受到抑制。以上結果得出結論:miR-300通過靶向BRD7促進肝癌細胞的增殖和侵襲過程。
研究表明,miR-300同時具有促癌及抑癌作用〔7,8〕。miR-300在神經膠質瘤中高表達,過表達miR-300可以促進膠質瘤干細胞的自我更新、增殖〔9〕。而在頭頸鱗狀細胞癌中和乳腺癌中miR-300表達水平較低〔10〕,過表達miR-300可以阻止乳腺癌細胞MDA-MB-231中轉化生長因子(TGF)-β誘導的上皮間質轉化。但在本實驗發現miR-300具有促進肝癌細胞增殖與侵襲的作用,驗證了BRD7為miR-300的靶基因,BRD7屬于BRD家族,在心臟、肺、結腸和乳腺等多種組織中普遍表達。免疫熒光實驗發現BRD7定位于細胞核中,可與乙酰化組蛋白H3結合,從而調節染色質重塑。BRD7在結腸癌和鼻咽癌中表達水平較低,過表達BRD7通過細胞周期阻滯抑制鼻咽癌細胞的增殖〔11〕;另外的研究表明,BRD7抑制前列腺癌細胞的增殖;而敲低BRD7可以促進p85α在細胞質聚集,從而穩定p110的表達水平,促進PI3K信號通路的激活〔12〕。本研究發現,miR-300可以靶向下調BRD7的蛋白水平,而過表達BRD7可以抑制肝癌細胞的增殖和侵襲過程,該發現與BRD7為抑瘤基因的結果一致,但miR-300是否通過抑制BRD7的表達間接激活PI3K信號通路發揮該作用仍需進一步研究。