王斌 呂錦 孔敏 王虎
(1成都市第一人民醫院口腔科,四川 成都 610041;2四川大學華西口腔醫院放射科)
非編碼RNA約占人類基因組的98%,其中包括長鏈非編碼RNA(LncRNA)和短鏈非編碼RNA(miRNA)〔1〕。LncRNA為長度在200個核苷酸以上的非編碼RNA,miRNA的長度在19~25個核苷酸,兩者均可通過轉錄、轉錄后水平及表觀遺傳調控基因的表達,進而參與人類多種疾病的發生發展〔2〕。自噬為真核細胞的自身降解過程,與機體衰老、神經退行性疾病、肥胖及癌癥均具有密切關系〔3〕。大量研究證實,自噬在腫瘤中具有雙重作用,在腫瘤的不同階段發揮不同作用。非編碼RNA核富集的轉錄物(NEAT)1為新發現的一種Lnc RNA〔4〕,在口腔鱗癌中的作用機制尚未完全清楚。miRNA(miR)-520b在不同癌癥中發揮不同作用〔5,6〕,其在口腔鱗癌中的作用尚未完全清楚。本研究擬以口腔鱗癌細胞Tca8113為研究對象,觀察抑制NEAT1、過表達miR-520b、抑制miR-520b對Tca8113細胞增殖、凋亡和自噬的影響,為口腔鱗癌的治療提供新靶點。
1.1 材料 人口腔鱗癌細胞Tca8113、人正常口腔上皮細胞HOEC,均購自美國菌種保存中心(ATCC);達爾伯克改良伊格爾(DMEM)培養基、胎牛血清、四唑鹽(MTT)、胰蛋白酶,均購自美國GIBCO公司;LipofectamineTM2000、二喹啉甲酸(BCA)蛋白定量試劑盒、逆轉錄試劑盒,購自大連Takara公司;聚偏二氟乙烯(PVDF)膜購自德國羅氏診斷有限公司;十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)試劑盒、電化學發光(ECL)發光液和RIPA蛋白裂解液,均購自碧云天生物技術公司;雙熒光素酶報告基因檢測試劑盒,購自美國Promega公司;Annexin V-FITC/PI凋亡檢測試劑盒購自北京索萊寶公司。
1.2 方法
1.2.1 細胞培養 用含10%胎牛血清的DMEM培養基培養Tca8113、HOEC,置于37℃、5% CO2的培養箱中常規培養。
1.2.2 細胞轉染 將si-NC、si-NEAT1、miR-520b mimics、miR-NC、si-NEAT1+anti-miR-NC、si-NEAT1+anti-miR-520b按照脂質體LipofectamineTM2000說明書操作步驟要求轉染至Tca8113細胞,分別標記為si-NC組、si-NEAT1組、miR-520b組、miR-NC組、si-NEAT1+anti-miR-NC組、si-NEAT1+anti-miR-520b組,轉染48 h后,采用qRT-PCR實驗檢測轉染效率。轉染成功后,用于后續試驗。
1.2.3 qRT-PCR實驗 取適量對數生長期1.2.2各組細胞,遵照RNA抽提試劑盒說明書要求提取RNA,進行定量,然后應用逆轉錄試劑盒按照說明書操作合成cDNA。最后按照qRT-PCR試劑盒說明書檢測miR-520b、NEAT1。用2-△△Ct計算miR-520b、NEAT1的表達水平。
1.2.4 MTT實驗 取適量1.2.2各組細胞,加入5 g/L的MTT溶液20 μl,培養4 h,然后棄去上清,每孔加入150 μl DMSO,震蕩,使結晶溶解,在490 nm波長下檢測細胞吸光度(A)。細胞的增殖力與細胞活力呈正比。
1.2.5 Annexin V-FITC/PI流式細胞術實驗 取適量1.2.2各轉染組細胞,用結合緩沖液500 μl懸浮細胞,分別加入5 μl的 Annexin V-FITC和PI,混勻,室溫避光靜置15 min。采用流式細胞儀分析結果。細胞的凋亡率(%)= 早期凋亡率+晚期凋亡率。每個樣品重復3次。
1.2.6 Western印跡實驗 收集1.2.2各組細胞,加入裂解液,冰上裂解30 min。12 000 r/min離心10 min,。取上清置于EP管,加入5倍SDS上樣緩沖液,沸水煮沸10 min。電泳后用轉膜儀將蛋白轉移至PVDF膜;5%脫脂奶粉將膜封閉2 h,洗膜,加入一抗,4℃過夜孵育,洗膜,加二抗,4℃ 2 h。加發光液,曝光。
1.2.7 雙熒光素酶報告基因檢測實驗 取適量對數生長期1.2.2各組細胞,遵照雙熒光素酶報告基因檢測試劑盒技術手冊要求操作。psiCHECK2載體以螢火蟲熒光素酶活性為內參,psiCHECK2-NEAT1-3′UTR WT和psiCHECK2-NEAT1-3′UTR MUT的表達為對照,轉染24 h后,檢測熒光強度。海參熒光素酶的發光強度與螢火蟲熒光素酶發光強度的比值即反映miR-520b與NEAT1的結合力。
1.3 統計學處理 采用SPSS21.0軟件,計量資料多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用SNK-
q檢驗。
2.1 NEAT1和miR-520b在人口腔鱗癌細胞Tca8113中的表達 與HOEC組相比,Tca8113組細胞中NEAT1表達顯著升高,miR-520b表達顯著降低(P<0.05)。見表1。

表1 NEAT1和miR-520b在Tca8113細胞和HOEC細胞中的表達
2.2 抑制NEAT1對Tca8113細胞增殖、凋亡的影響 與si-NC組相比,si-NEAT1組Tca8113細胞中NEAT1表達顯著降低,48、72 h時細胞活性顯著降低,細胞凋亡率顯著升高(P<0.05)。見表2。

表2 抑制NEAT1表達對Tca8113細胞增殖和凋亡的影響
2.3 抑制NEAT1表達對Tca8113細胞自噬的影響 與si-NC組(0.36±0.04)相比,si-NEAT1組Tca8113細胞中LC3Ⅱ/Ⅰ蛋白表達量(1.07±0.08)顯著升高(t=13.749,P=0.000)。見圖1。
2.4 過表達miR-520b對Tca8113細胞增殖、凋亡和自噬的影響 與miR-NC組相比,miR-520b組Tca8113細胞中miR-520b表達顯著升高,48、72 h時細胞活性顯著降低,細胞凋亡率顯著升高,LC3Ⅱ/Ⅰ蛋白表達量顯著升高(P<0.05)。見表3,圖2。

圖1 抑制NEAT1表達對Tca8113細胞自噬相關蛋白LC3Ⅰ、Ⅱ表達的影響

表3 過表達miR-520b對Tca8113細胞增殖、凋亡和自噬的影響

圖2 過表達miR-520b對Tca8113細胞LC3Ⅱ、Ⅰ表達的影響
2.5 NEAT1靶向miR-520b 運用miRcode數據庫預測到miR-520b與NEAT1 3′UTR存在結合位點(圖3);雙熒光素酶活性檢測結果顯示,與miR-NC組相比,miR-520b組WT-NEAT1細胞中熒光活性顯著降低(miR-NC組:1.02±0.08,miR-520b組:0.41±0.05;t=11.199,P=0.000),MUT-NEAT1細胞中熒光活性不受影響(miR-NC組:1.04±0.07,miR-520b組:0.98±0.09;t=0.912,P=0.414)。與pcDNA組(0.45±0.04)比較,pcDNA-NEAT1組miR-520b水平(0.21±0.03)顯著降低(P<0.05);與si-NC組(0.42±0.05)比較,si-NEAT1組miR-52b水平(1.04±0.06)顯著升高(P<0.05)。
2.6 抑制miR-520b和抑制NEAT1對Tca8113細
胞增殖、凋亡和自噬的影響 與si-NEAT1+anti-miR-NC組相比,si-NEAT1+anti-miR-520b組Tca8113細胞在48、72 h細胞活性顯著升高,細胞凋亡率顯著降低,LC3Ⅱ/Ⅰ蛋白表達量顯著降低(P<0.05)。見圖4,表4。

圖3 NEAT1的3′UTR中含有與miR-520b互補的核苷酸序列

1~4分別為:si-NC;si-NEAT1;si-NEAT1+anti-miR-NC;si-NEAT1+anti-miR-520b圖4 LC3Ⅰ、LC3Ⅱ蛋白表達

表4 抑制miR-520b和抑制NEAT1對口腔鱗癌Tca8113細胞增殖、凋亡和自噬的影響
NEAT1在許多人類癌癥中起關鍵作用〔7,8〕,與機體多種疾病的發生發展密切相關〔9〕。大量研究證實,自噬在人類的多種腫瘤中存在異常,發揮抑制或促進腫瘤的作用〔10~12〕。Liu等〔13〕在口腔鱗狀細胞癌中的研究發現,與鄰近的非腫瘤組織和正常口腔角質形成細胞相比,鱗癌組織和細胞系中NEAT1的表達顯著升高,且與患者的晚期臨床分期和較短的存活時間顯著相關,抑制NEAT1表達導致鱗癌細胞遷移和侵襲顯著減少,伴隨著基質金屬蛋白酶(MMP)-2和MMP-9蛋白表達的減少,miR-365的抑制消除了敲低NEAT1對鱗癌細胞遷移和侵襲的抑制作用,提示NEAT1通過抑制miR-365促進OSCC細胞的遷移和侵襲,NEAT1可能為治療鱗癌的潛在靶點。Huang等〔14〕研究發現,NEAT1在口腔鱗狀細胞癌中表達異常升高,且可負向調控低表達的miR-365,敲除NEAT1可抑制細胞增殖和侵襲并誘導細胞周期停滯在G0/G1期和細胞凋亡,而抑制miR-365消除了敲低NEAT1對細胞過程的抑制作用,且 RGS20是miR-365的直接靶標,可通過增強細胞活力和運動性逆轉過表達miR-365的腫瘤抑制作用,此外,RGS20、細胞周期蛋白D1、E-鈣黏蛋白、N-鈣黏蛋白和波形蛋白的表達可通過NEAT1/miR-365通路調節,沉默NEAT1也可抑制體內腫瘤生長,揭示了NEAT1/miR-365/RGS20通路可能是OSCC治療的新策略。本研究結果發現,Tca8113細胞中NEAT1表達顯著升高,且抑制NEAT1可抑制Tca8113細胞增殖、促進凋亡,這與Liu等〔13〕、Huang等〔14〕的研究結果相一致;進一步研究發現,抑制NEAT1能促進Tca8113細胞的自噬。
miRNA失調或功能障礙會促進或抑制癌癥的發展〔15,16〕。miR-520b在多種腫瘤中表達異常,其在卵巢癌中發揮促癌作用〔17〕,在膀胱癌中發揮抑癌作用〔18〕。梁雪〔19〕研究發現,miR-520b可促進食管鱗癌細胞和乳腺癌細胞的自噬,且過表達miR-520b可抑制腫瘤細胞的增殖、遷移和侵襲。Jin等〔20〕發現,miR-520b過表達明顯抑制了體外肺癌細胞增殖,抑制miR-520b能夠加速肺癌細胞的增殖,敲低HDAC4逆轉了抑制miR-520b誘導的細胞增殖,且在臨床人肺癌樣品中觀察到miR-520b和HDAC4之間的負相關,提示MiR-520b降低HDAC4表達以控制肺癌細胞的增殖。Cui等〔21〕發現miR-520b在膠質瘤組織和細胞中低表達,且miR-520b可抑制膠質瘤細胞的葡萄糖代謝、侵襲、血管生成和化學敏感性,其機制與直接靶向負調控MBD2有關,提示miR-520b在膠質瘤中具有腫瘤抑制劑的作用。Lu等〔22〕在頭頸癌的研究中發現,miR-520b可通過上皮-間質轉化機制抑制癌細胞遷移和侵襲,并增加癌細胞對藥物和輻射治療的敏感性,其機制與miR-520b靶向調控CD44有關,提示miR-520b為難治性HNC治療的新靶標。本研究發現,miR-520b在口腔鱗癌細胞中表達異常降低;進一步研究發現,過表達miR-520b可抑制Tca8113細胞增殖,促進凋亡和自噬;雙熒光素酶報告基因檢測實驗驗證,NEAT1靶向負調控miR-520b,且抑制miR-520b可逆轉抑制NEAT1對Tca8113細胞的增殖抑制和凋亡促進作用。綜上所述,NEAT1可促進口腔鱗癌細胞的增殖并抑制凋亡和自噬,其機制可能與靶向調控miR-520b有關,為口腔鱗癌的診斷、預防和治療提供了新的靶點。