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枇杷葉HPLC特征圖譜研究及主要成分含量測(cè)定△

2019-12-24 07:31:20顧生玖李鶴周艷林鄒節(jié)明林昆陳鏡任朱開梅
中國(guó)現(xiàn)代中藥 2019年11期

顧生玖,李鶴,,周艷林,鄒節(jié)明,林昆,陳鏡任,朱開梅*

1.桂林醫(yī)學(xué)院 藥學(xué)院,廣西 桂林 541004;2.桂林三金藥業(yè)股份有限公司,廣西 桂林 541004

枇杷葉為薔薇科植物枇杷Eriobotryajaponica(Thunb.)Lindl.的干燥葉,又名巴葉、蘆桔葉,具有清肺止咳,降逆止嘔的功效,主治肺熱咳嗽、氣逆喘急、胃熱嘔逆、煩熱口渴等癥[1-3]。廣泛分布于我國(guó)大部分地區(qū),全年均可采收。枇杷葉含有黃酮類、三萜酸類、倍半萜類、有機(jī)酸類及多糖類[4]等成分,目前對(duì)枇杷葉品質(zhì)的評(píng)價(jià)方法比較單一,通常以枇杷葉中三萜酸的含量作為評(píng)價(jià)指標(biāo),缺乏整體性評(píng)價(jià)。文獻(xiàn)報(bào)道黃酮苷類成分具有較多的藥理活性[5-6],且又是枇杷葉的主要成分,因此開展了枇杷葉藥材水溶性部位HPLC特征圖譜的研究,并對(duì)其中金絲桃苷和槲皮苷進(jìn)行含量測(cè)定,為枇杷葉藥材及其復(fù)方制劑質(zhì)量控制提供參考。

1 材料

1.1 儀器

1260系列高效液相色譜儀,含在線真空脫氣機(jī)(G-1311C)、二元泵(G-1311C)、標(biāo)準(zhǔn)自動(dòng)進(jìn)樣器(G-1329B)、智能化柱溫箱(G-1316A)、DAD檢測(cè)器(G-4212B)、Agilent1260 Infinity色譜工作站(美國(guó)安捷倫公司);Milli-Q Direct 8超純水一體化系統(tǒng)(美國(guó)默克密理博公司);XP404S型電子天平(瑞士Mettler公司)。

1.2 試藥

綠原酸(批號(hào):110753-201415,純度96.2%)、金絲桃苷(批號(hào):111521-201004,純度98.0%)、異槲皮苷(批號(hào):111809-201403,純度98.0%)、槲皮苷(批號(hào):111538-201105,純度:98.0%)均由中國(guó)食品藥品檢定研究院提供。乙腈為色譜純(德國(guó)Merck公司);水為超純水;其他試劑均為分析純;MCI GEL CHP 20填料購(gòu)自日本三菱化學(xué)公司。

實(shí)驗(yàn)用的新鮮枇杷葉采自廣西桂林,采集時(shí)間為2018年5月。采摘新葉(淡綠色且質(zhì)地較軟)300 g、成熟葉(綠色且質(zhì)地適中)300 g、老葉(墨綠色且質(zhì)地較硬)300 g、落葉(自然掉落的黃葉)300 g,自采藥材于60 ℃烘干,粉碎成粗粉。10批枇杷葉藥材購(gòu)自于桂林中南藥業(yè)有限公司,經(jīng)鐘小清高級(jí)工程師鑒定為薔薇科常綠小喬木植物枇杷Eriobotryajaponica(Thunb.)Lindl.的葉,批號(hào)分別為160101(S1)、160501(S2)、160701(S3)、160901(S4)、161001(S5)、161101(S6)、161201(S7)、170101(S8)、170401(S9)、170501(S10)。

2 特征圖譜

2.1 色譜條件

采用資生堂CAPCELL PAK MG C18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);以乙腈(A)-0.1%磷酸水(B)為流動(dòng)相進(jìn)行梯度洗脫,流動(dòng)相梯度為:0~60 min,10%→20%A;60~84 min,20%→28% A;84~118 min,28%→48% A;流速:1.0 mL·min-1;柱溫:30 ℃;檢測(cè)波長(zhǎng):355 nm;進(jìn)樣量:20 μL。

2.2 溶液的制備

2.2.1 混合對(duì)照品溶液制備 取綠原酸、金絲桃苷、異槲皮苷、槲皮苷對(duì)照品適量,精密稱定,加甲醇制成每1 mL含綠原酸0.36 mg、金絲桃苷0.03 mg、異槲皮苷0.02 mg、槲皮苷0.02 mg的混合對(duì)照品溶液,即得。

2.2.2 供試品溶液制備 取枇杷葉藥材粗粉2 g,加入70%乙醇50 mL,稱定質(zhì)量,加熱回流提取2 h,放冷,再稱定質(zhì)量,用70%乙醇補(bǔ)足減失的質(zhì)量,搖勻,濾過,精密吸取續(xù)濾液25 mL蒸干,殘?jiān)铀?0 mL使溶解;將其通過MCI GEL CHP 20柱(內(nèi)徑為1 cm,柱高為10 cm),以50 mL水洗脫,棄去水洗液,用50%乙醇50 mL洗脫,收集洗脫液,蒸干,殘?jiān)?0%甲醇適量使溶解,轉(zhuǎn)移至2 mL量瓶中,定容至刻度,搖勻,0.45 μm微孔濾膜過濾即得供試品溶液。

2.3 方法學(xué)考察

2.3.1 精密度試驗(yàn) 取同一份2.2.2項(xiàng)下供試品溶液,按2.1項(xiàng)色譜條件,連續(xù)進(jìn)樣6次,記錄各共有峰的保留時(shí)間和峰面積。以4號(hào)金絲桃苷峰為參照峰S,結(jié)果各共有峰相對(duì)保留時(shí)間的RSD在0.02%~0.17%,相對(duì)峰面積比值的RSD在0.2%~0.7%,均小于2.0%,表明該儀器的精密度良好。

2.3.2 穩(wěn)定性試驗(yàn) 取2.2.2項(xiàng)下供試品溶液分別于制備后0、4、8、12、18、24 h,按2.1項(xiàng)色譜條件進(jìn)樣測(cè)定,記錄各共有峰的保留時(shí)間和峰面積。結(jié)果各共有峰相對(duì)保留時(shí)間的RSD在0.01%~0.21%,相對(duì)峰面積比值的RSD在0.2%~0.9%,均小于2.0%,表明供試品溶液24 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。

2.3.3 重復(fù)性試驗(yàn) 取同一批藥材(批號(hào)170101)分別制備6份供試品溶液,按2.1項(xiàng)色譜條件進(jìn)樣測(cè)定,記錄各共有峰的保留時(shí)間和峰面積。結(jié)果各共有峰相對(duì)保留時(shí)間的RSD在0.02%~0.22%,相對(duì)峰面積比值的RSD在0.9%~1.7%,均小于2.0%,表明該方法的重復(fù)性良好。

2.3.4 耐用性試驗(yàn)

2.3.4.1 不同色譜柱對(duì)測(cè)定的影響 分別取2.2.2項(xiàng)下供試品溶液,選用CAPCELL PAK MG C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)、Ultimate XB-C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)、Phenomenex Luna C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)3根不同品牌的色譜柱,按2.1項(xiàng)色譜條件進(jìn)樣分析,均能達(dá)到枇杷葉藥材特征圖譜的測(cè)定要求。

2.3.4.2 不同儀器對(duì)測(cè)定的影響 實(shí)驗(yàn)選擇安捷倫1260系列高效液相色譜儀、Waters e2695液相色譜儀和島津LC-20A液相色譜儀,取2.2.2項(xiàng)下供試品溶液分別進(jìn)樣分析,結(jié)果3種儀器所得圖譜均符合測(cè)定要求,表明不同儀器對(duì)供試品色譜峰的影響不大。

2.4 特征圖譜的建立及共有峰的指認(rèn)

2.4.1 特征圖譜的建立 取10批及不同生長(zhǎng)階段的枇杷葉藥材適量,分別按2.2.2項(xiàng)下方法制備供試品溶液,在2.1項(xiàng)色譜條件下進(jìn)樣分析,記錄色譜圖,采用《中藥色譜指紋圖譜相似度評(píng)價(jià)系統(tǒng)(2012年版)》進(jìn)行分析、比較,經(jīng)多點(diǎn)校正和自動(dòng)匹配后,生成對(duì)照特征圖譜。共標(biāo)定10個(gè)共有峰,選定這10個(gè)峰進(jìn)行峰匹配,建立枇杷葉藥材HPLC特佂圖譜。

4號(hào)峰為對(duì)照品金絲桃苷,出峰時(shí)間適宜,峰形較好,故選擇以金絲桃苷峰為參照峰S,其他9個(gè)色譜峰的相對(duì)保留時(shí)間分別為0.322 1、0.610 4、0.937 5、1.035 6、1.284 9、1.551 9、1.837 6、1.913 2和2.362 1,各共有峰相對(duì)保留時(shí)間的RSD在0.02%~0.39%,均小于2.0%,見圖1。

注:R.對(duì)照?qǐng)D譜;S1~S10.批次。圖1 不同批次枇杷葉藥材的HPLC特征圖譜

通過對(duì)不同生長(zhǎng)階段的枇杷葉藥材的測(cè)定,結(jié)合《中藥色譜指紋圖譜相似度評(píng)價(jià)系統(tǒng)(2012年版)》進(jìn)行分析。以4號(hào)峰為參照峰,其他9個(gè)色譜峰的相對(duì)保留時(shí)間分別為0.322 9、0.610 7、0.938 2、1.034 8、1.282 7、1.551 4、1.836 7、1.912 3和2.359 6,其共有峰相對(duì)保留時(shí)間的RSD在0.13%~0.87%,均小于2.0%,見圖2。

注:R.對(duì)照?qǐng)D譜;S1.干葉;S2.新葉;S3.成熟葉;S4.老葉;S5.落葉。圖2 不同生長(zhǎng)階段枇杷葉藥材的HPLC特征圖譜

2.4.2 各共有峰的指認(rèn) 取混合對(duì)照品溶液、枇杷葉藥材適量,按2.2項(xiàng)下方法制備,在2.1項(xiàng)色譜條件下進(jìn)樣分析。結(jié)果表明,10批樣品特征圖譜的色譜峰均在118 min內(nèi)全部出完,對(duì)所得特征圖譜進(jìn)行指認(rèn),選擇穩(wěn)定性、重復(fù)性好以及特征明顯的色譜峰為共有峰,共標(biāo)定了10個(gè)峰。其中1、4、5、6號(hào)峰分別為綠原酸、金絲桃苷、異槲皮苷和槲皮苷,見圖3。

注:S1.空白溶液;S2.混合對(duì)照品;S3.供試品溶液;1.綠原酸;4.金絲桃苷;5.異槲皮苷;6.槲皮苷。圖3 枇杷葉供試品、混合對(duì)照品及空白溶液HPLC圖

3 含量測(cè)定方法與結(jié)果

3.1 溶液的制備

3.1.1 混合對(duì)照品溶液制備 取金絲桃苷、槲皮苷對(duì)照品適量,精密稱定,加甲醇制成每1 mL含金絲桃苷0.034 2 mg、槲皮苷0.028 6 mg的混合對(duì)照品溶液,即得。

3.1.2 供試品溶液的制備 同2.2.2。

3.2 色譜條件

色譜條件同2.1,在此條件下,各待測(cè)組分與相鄰峰之間的分離度均達(dá)到要求。空白溶液在與各待測(cè)組分相同保留時(shí)間處均未出現(xiàn)色譜峰(見圖4)。

3.3 方法學(xué)考察

3.3.1 線性關(guān)系考察 精密吸取3.1.1項(xiàng)下的混合對(duì)照品溶液3、9、15、20、25 μL,注入液相色譜儀,按2.1項(xiàng)下色譜條件進(jìn)行測(cè)定,記錄峰面積。以峰面積(Y)為縱坐標(biāo),進(jìn)樣量(X)為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,求得回歸方程為:金絲桃苷Y=69.528X-0.881 8(r=0.999 7);槲皮苷Y=57.908X-4.314(r=0.999 8)。結(jié)果表明,金絲桃苷和槲皮苷分別在0.102 6~0.855 0、0.085 8~0.715 0 μg呈良好的線性關(guān)系。

注:A.混合對(duì)照品;B.枇杷葉供試品;C.空白溶液;1.金絲桃苷;2.槲皮苷。圖4 枇杷葉及對(duì)照品的HPLC圖

3.3.2 精密度試驗(yàn) 取3.1.1項(xiàng)下對(duì)照品溶液,按2.1項(xiàng)下色譜條件連續(xù)進(jìn)樣6次,每次進(jìn)樣20 μL,記錄峰面積。結(jié)果金絲桃苷和槲皮苷峰面積的RSD分別為1.40%、1.28%,表明該儀器精密度良好。

3.3.3 穩(wěn)定性試驗(yàn) 取2.2.2項(xiàng)下供試品溶液,按2.1項(xiàng)下色譜條件分別在0、4、8、12、18、24 h進(jìn)樣20 μL,記錄峰面積,結(jié)果金絲桃苷和槲皮苷峰面積的RSD分別為0.58%、1.08%,表明供試品溶液在24 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。

3.3.4 重復(fù)性試驗(yàn) 按2.2.2項(xiàng)下供試品溶液制備方法平行處理同一批次(批號(hào)170101)樣品6份,按2.1項(xiàng)下色譜條件分別測(cè)定,每次進(jìn)樣20 μL,記錄峰面積。結(jié)果金絲桃苷和槲皮苷含量的RSD分別為2.16%、2.43%,表明該方法重復(fù)性良好。

3.3.5 加樣回收率試驗(yàn) 取已知含量的同一批枇杷葉(批號(hào)170101)粗粉1.0 g,共6份,分別加入與樣品中待測(cè)成分含有量相當(dāng)?shù)膶?duì)照品溶液,按2.2.2項(xiàng)下方法制備供試品溶液,按2.1項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣20 μL,記錄峰面積,計(jì)算平均加樣回收率。金絲桃苷和槲皮苷平均加樣回收率分別為99.76%、95.56%,RSD分別為4.88%、4.84%,結(jié)果表明該方法的回收率良好。

3.4 樣品測(cè)定

取不同批次及不同生長(zhǎng)階段的枇杷葉藥材適量,分別按2.2.2項(xiàng)下方法制備供試品溶液,在2.1項(xiàng)色譜條件下進(jìn)行測(cè)定,平行測(cè)定3次,記錄峰面積,測(cè)定結(jié)果見表1~2。

表1 不同批次樣品測(cè)定結(jié)果 mg·g-1

表2 不同生長(zhǎng)階段的枇杷葉測(cè)定結(jié)果 mg·g-1

由表1~2發(fā)現(xiàn),枇杷葉中兩種黃酮類化合物的含量有一定的差異,說明其黃酮類成分因枇杷葉的生長(zhǎng)環(huán)境、采集季節(jié)等而有所不同,其在不同生長(zhǎng)階段的分布規(guī)律有待進(jìn)一步研究。

4 討論

4.1 供試品處理方法的選擇

樣品在前處理過程中考察了加熱回流提取、超聲提取法及石油醚脫脂法[7-9],結(jié)果回流提取法使有效成分提取較完全,先后考察了乙醇的體積分?jǐn)?shù)、用量、回流時(shí)間和回流次數(shù)的影響,結(jié)果方法確定為70%乙醇50 mL回流提取2 h。此外,還考察了柱色譜分離純化法,比較了大孔吸附樹脂D101型及MCI GEL CHP 20柱,因MCI GEL CHP 20柱洗去糖和其他水溶性成分,脫葉綠素效果好,且對(duì)皂苷類和黃酮類成分分離、純化效果較好。

4.2 流動(dòng)相系統(tǒng)的選擇

為保證金絲桃苷和槲皮苷含量測(cè)定的準(zhǔn)確性,減少誤差,試驗(yàn)中分別考察了乙腈-水、乙腈-0.1%磷酸水溶液的流動(dòng)相體系,結(jié)果表明,以乙腈-水為流動(dòng)相進(jìn)行梯度洗脫,基線波動(dòng)較大,峰形不理想,而以乙腈-0.1%磷酸水溶液為流動(dòng)相可以看出譜圖中特征峰出峰時(shí)間適宜,且峰形較好,分離度好,基線漂移小,因此選擇乙腈-0.1%磷酸水溶液為流動(dòng)相系統(tǒng)。

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