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四神丸中3 種成分在正常大鼠及抑郁大鼠體內藥動學的比較

2020-06-02 09:31:34宋珊珊居文政
中成藥 2020年5期
關鍵詞:血漿實驗

孫 紅,宋珊珊,井 汶,張 優,谷 雨,居文政

(南京中醫藥大學附屬醫院,江蘇 南京210029)

抑郁癥具有高發病、高自殺、高復發和低識別、低就診、低治療等特點,已成為21 世紀最主要的精神疾病,據WHO 統計,全球抑郁癥患者達12.8%,預計2030 年將成為僅次于心血管疾病的第二大疾病[1-2],我國患病率高達6.1%[3]。目前,抗抑郁西藥以單胺類抑制劑為主[4],但這些藥物起效慢,不良反應明顯,而且30%~50%的患者不敏感。近年來,中醫藥在防治抑郁癥上獲得較好的臨床療效。

四神丸出自 《證治準繩》,由肉豆蔻、補骨脂、五味子、吳茱萸、大棗等藥材組成[5],具有溫補脾腎的功能,組方加減后用于治療脾腎陽虛患者有一定療效[6]。原發性抑郁、內源性抑郁、惡劣心境中的抑郁情緒在本質上“屬虛”,五臟陽氣不足是其病理基礎[7],根據中醫郁證病機中“陽虛致郁” 的理論[8-9],四神丸可改善脾腎陽虛所致的抑郁狀態,動物實驗表明[10-14],方中補骨脂和五味子中主要成分補骨脂素、異補骨脂素、五味子醇甲具有抗抑郁作用,但作用機理尚不明確,雖然已有方中補骨脂素、異補骨脂素在正常大鼠中的藥動學研究[15],但尚未見在抑郁大鼠中的相關報道。因此,本實驗將比較四神丸中上述3 種成分在正常大鼠和抑郁大鼠體內的藥動學,探索其作用機理。

1 材料

1.1 儀器 Agilent 1200 高效液相色譜儀,配置API 4000 LC-MS/MS 三重四級桿質譜儀 (美國Agilent 公 司);MS105 電子天 平 (瑞 士Mettler-Toledo 公司);Centrifuge-5417R 冷凍離心機(德國Eppendorf 公司);Advantage A10 超純水機(法國Millipore 公司);MIX-25P 旋渦混合儀(杭州米歐儀器有限公司);Labconco 離心濃縮儀 (美國Labconco 公司);RE-52CS 旋轉蒸發儀(上海亞榮生化儀器廠)。

1.2 試劑與藥物 肉豆蔻(煨) (批號171001)、補骨脂(鹽炒) (批號180404006)、五味子(醋制) (批號170513001)、吳茱萸(制) (批號160623)、大棗(去核) (批號170520001) 均購于北京同仁堂南京藥店,經江蘇省中醫院藥學部副主任中藥師張倩鑒定為正品,符合《中國藥典》標準。對照品補骨脂素(批號17092820)、異補骨脂素 (批 號18062910)、五味子醇甲 (批 號17021905) 均購于成都曼思特生物科技有限公司,純度均≥98.5%;替硝唑 (批號100126-200402)購于中國食品藥品檢定研究院,純度≥95%。四神丸根據2015 年版《中國藥典》 處方自制,補骨脂、肉豆蔻、五味子、吳茱萸、大棗比例為4 ∶2 ∶2 ∶1 ∶2,上述藥材用10 倍量75% 乙醇浸泡30 min,回流提取2 h,濾渣再加8 倍量75%乙醇回流提取1 h,合并濾液,減壓濃縮至無醇味,-20 ℃下保存,1 100 g 藥材濃縮至785 mL,即每1 mL 藥液含1.4 g 原藥材(分別含補骨脂素、異補骨脂素、五味子醇甲1.60、1.36、0.65 mg)。甲醇、乙腈購自德國Merck 公司;水為超純水。

1.3 動物 SD 大鼠,雄性,12 只,體質量(190±10)g,由南通大學實驗動物中心提供,動物生產許可證號SCXK (蘇) 2019-0001。實驗前大鼠適應性飼養1 周,保持12 h 晝夜節律,室溫(22±2) ℃,自由攝食飲水。

2 方法與結果

2.1 色譜、質譜條件 ACE Excel 3 C18-PFP 色譜柱(100 mm×3.0 mm);流動相乙腈-0.1% 甲酸(36 ∶64);體積流量500 μL/min;柱溫40 ℃;離子源ESI+,多反應檢測模式(MRM);離子源電壓4 000 V;離子源溫度400 ℃。質譜參數見表1。

表1 各成分質譜參數Tab.1 MS parameters for various constituents

2.2 溶液制備 精密稱取補骨脂素、異補骨脂素、五味子醇甲對照品適量,甲醇分別溶解定容至2.07、2.14、2.00 mg/mL,以此為母液,臨用前稀釋。再精密稱取替硝唑適量,配制成100 ng/mL內標液。

2.3 血漿樣品處理 取100 μL 空白血漿,加入10 μL 內標溶液,渦旋混勻30 s,加入800 μL 乙酸乙酯,振蕩3 min,12 000 r/min 離心10 min,取700 μL 上清液,40 ℃下離心濃縮,加入100 μL 50%乙腈復溶,振蕩3 min,12 000 r/min 離心10 min,取5 μL 上清液進樣分析。

2.4 造模及血漿樣品采集 大鼠按體質量均衡和隨機的原則分為正常組和模型組,每組6 只,正常組每籠3 只,模型組單籠飼養,并在21 d 內接受10 種刺激因子,包括禁食、禁水、潮濕墊料、晝夜顛倒、閃光、4 ℃冰水游泳、熱刺激5 min、束縛應激6 h、水平振蕩10 min、觸摸陌生異常物品。確認造模成功后,第22 天大鼠禁食不禁水12 h,灌胃給 予四神 丸混懸 液 6.48 g/kg (即4.63 mL/kg),于給藥前及給藥后5、15、30、45、60、90、120、180、240、360、480、720、960、1 440 min眼眶取血各約0.3 mL,置于肝素化EP 管中,4 000 r/min 離心10 min,取上層血漿保存于-80 ℃冰箱中待測。

2.5 行為學實驗 在造模3 周后開始。

2.5.1 糖水消耗實驗 大鼠在適應性期間給予2瓶2%蔗糖溶液適應3 d 后,才進行實驗。大鼠禁水18 h,每只給予體積相同的1 瓶2%蔗糖溶液和1 瓶純水,測試4 h,其中每2 h 2 瓶水交換位置。實驗結束后,計算糖水消耗率,公式為糖水消耗率= [(蔗糖消耗量) / (純水消耗量+蔗糖消耗量)] ×100%。

2.5.2 曠場實驗 實驗前需提前將大鼠搬入測試室使其適應環境1 h,再放入長、寬、高均為50 cm,內壁涂黑的紙箱中心,底面平均分為25個10 cm×10 cm 的小方格。以5 min 內大鼠三爪以上穿越底面的方格數為水平得分,穿越1 格得1 分;以大鼠雙前肢抬起1 cm 以上次數為垂直得分,離地一次得1 分。實驗過程進行攝像和計時。

2.5.3 強迫游泳實驗 正式實驗前1 d 大鼠進行預游泳,將其放入(24±2)℃水中并保持懸浮,四肢不能觸及桶底,15 min 后取出,擦干放回籠中,整個實驗過程保持安靜。次日在相同條件下大鼠強迫游泳5 min,記錄后4 min 內不動時間(大鼠僅有頭部露出水面,呈漂浮狀態,四肢可有微動)。

2.5.4 結果分析 經過21 d 造模后,與正常組比較,模型組大鼠糖水消耗率、水平得分、豎直得分降低 (P<0.05,P<0.01),不動時 間延長(P<0.05),顯示造模成功,見表2。

表2 各組大鼠行為學實驗結果(, n=6)Tab.2 Results of behavioral tests for rats in various groups (, n=6)

表2 各組大鼠行為學實驗結果(, n=6)Tab.2 Results of behavioral tests for rats in various groups (, n=6)

注:與正常組比較,?P<0.05,??P<0.01。

2.6 方法學考察

2.6.1 專屬性考察 取空白大鼠血漿、空白大鼠血漿+對照品+內標(替硝唑)、給藥1 h 后血漿樣品,按“2.3” 項下方法處理,在“2.1” 項條件下進樣測定,結果見圖1。由此可知,補骨脂素、異補骨脂素、五味子醇甲、內標(替硝唑) 保留時間分別為4.72、5.24、7.34、1.5 min,各成分與內標色譜峰峰形良好而且互不干擾,同時血漿中雜峰也無干擾,基線平穩,表明該方法專屬性良好。

圖1 各成分LC-MS/MS 色譜圖Fig.1 LC-MS/MS chromatograms of various constituents

2.6.2 線性關系考察 取100 μL 空白大鼠血漿,加入對照品、內標溶液各10 μL,按“2.3” 項下方法處理,在“2.1” 項條件下進樣測定。以各成分峰面積與內標峰面積的比值為縱坐標(Y),溶液質量濃度為橫坐標(X) 進行回歸,以S/N≥10為最低定量限,結果見表3,可知各成分在各組范圍內線性關系良好。

表3 各成分線性關系Tab.3 Linear relationships of various constituents

2.6.3 準確度、精密度試驗 取100 μL 空白大鼠血漿,制成低、中、高3 個質量濃度的樣品(補骨脂素3.2、80、1 200 ng/mL,異補骨脂素1.6、40、600 ng/mL,五味子醇甲0.32、8、120 ng/mL),按“2.3” 項下方法處理,在“2.1” 項色譜條件下進樣測定,連續3 d,結果見表4,可知該方法準確度、精密度良好。

表4 各成分準確度、精密度、基質效應試驗結果Tab.4 Results of accuracy,precision and matrix effect tests for various constituents

2.6.4 基質效應試驗 精密加入低、中、高質量濃度對照品溶液及內標溶液各10 μL,復溶到80 μL,振蕩3 min,12 000 r/min 離心10 min,取上清液5 μL,在“2.1” 項色譜條件下進樣測定,峰面積為A1;按“2.3” 項下方法提取空白血漿(不加內標),離心濃縮后同法操作,峰面積為A2,計算基質效應,公式為基質效應=A2/A1×100%,結果見表4,可知內源性物質對3 種成分無影響。

2.6.5 穩定性試驗 取100 μL 空白大鼠血漿,按“2.6.3” 項下方法制成低、中、高3 個質量濃度的樣品各3 份,分別在室溫下放置12 h、-20 ℃下反復凍融3 次、-80 ℃下保存30 d 后,在“2.1”項色譜條件下進樣測定。結果,補骨脂素、異補骨脂素、五味子醇甲峰面積RSD 分別為0.99%~5.16%、1.09%~4.78%、0.90%~4.24%,表明該方法穩定性良好,符合生物樣品分析要求。

2.6.6 提取回收率 取100 μL 空白大鼠血漿,按“2.6.3” 項下方法制成低、中、高3 個質量濃度的質控樣品,各5 份,在“2.1” 項色譜條件下進樣測定,峰面積為A3,計算提取回收率,公式為提取回收率=A3/A2×100%。結果,補骨脂素、異補骨脂素、五味子醇甲提取回收率分別為66.33%~70.28%、61.28%~74.45%、61.93%~68.16%。

2.7 藥動學研究 各成分在正常大鼠、抑郁大鼠體內的血藥濃度-時間曲線見圖2,經DAS1.0 軟件處理分析后主要藥動學參數見表5。由此可知,各成分藥動學均符合一室模型;與正常組比較,模型組各成分Cmax、AUC0~t升高(P<0.05,P<0.01),以異補骨脂素更明顯。

圖2 各成分血藥濃度-時間曲線Fig.2 Plasma concentration-time curves for various constituents

表5 各成分主要藥動學參數(, n=6)Tab.5 Main pharmacokinetic parameters for vairous constituents (, n=6)

表5 各成分主要藥動學參數(, n=6)Tab.5 Main pharmacokinetic parameters for vairous constituents (, n=6)

注:與正常組比較,?P<0.05,??P<0.01。

3 討論

本實驗在測定大鼠血漿中補骨脂素、異補骨脂素、五味子醇甲含有量時發現,補骨脂素、異補骨脂素是同分異構體,質荷比相同,質譜無法區分,故應用液相色譜將兩者分離開。在考察流動相時發現,乙腈作為有機相峰形和出峰時間較好,而0.1%甲酸作為水相同分異構體峰形良好。再通過考察不同型號和品牌色譜柱,確定ACE Excel 3 C18-PFP色譜柱(100 mm×3.0 mm) 能滿足分析要求。

在血漿樣本處理過程中,本實驗考察了蛋白沉淀(甲醇、乙腈、10% 三氯乙酸) 和液液萃取(乙酸乙酯、丙酮、二氯甲烷),發現甲醇、乙腈蛋白沉淀的提取回收率與乙酸乙酯萃取的相近,且后者萃取后能明顯減少血漿樣本內源性物質干擾,提高基質效應,故選擇乙酸乙酯萃取作為前處理方法。

不同文獻報道的補骨脂素、異補骨脂素藥動學參數并不一致[15],其原因可能是本實驗采用75%乙醇作為提取溶劑,而文獻采用水煎煮法,提取出來成分相差較大,給藥劑量也有所差異。與正常組大鼠比較,模型組補骨脂素、異補骨脂素、五味子醇甲t1/2無明顯差異;異補骨脂素、五味子醇甲Tmax無明顯差異,而補骨脂素Tmax高于正常組;3種成分在抑郁大鼠體內的Cmax分別為在正常大鼠體內的1.36、1.30、1.47 倍,AUC0~t分別為1.38、1.27、1.40 倍,AUC0~∞分別為1.38、1.26、1.33倍,表明各成分吸收程度在抑郁大鼠體內明顯提高,而消除速度無明顯變化,其原因可能是疾病狀態導致其吸收過程發生改變[16-17]。綜上所述,大鼠在抑郁狀態下四神丸中補骨脂素、異補骨脂素、五味子醇甲血藥濃度明顯改變,對臨床上抑郁癥患者用藥量具有一定參考意義。

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