陶靜,周銘, 孫秋雁,彭安林
1武漢市肺科醫院藥學部,武漢 430030;2 武漢市皮膚病防治院; 3 湖北中醫藥大學藥學院
腦血管疾病為當今全球主要的致死性疾病;其中,腦缺血、卒中等缺血性腦病發病率較高,占比較大,尤其是腦缺血發病人數逐年遞增[1]。臨床上腦缺血治療的原則是盡可能快地恢復缺血區組織血液灌注。然而,腦缺血治療中恢復血流灌注的同時也產生了大量的活性氧(ROS),ROS會加劇缺血區組織的氧化應激過程,導致大量氧自由基進一步釋放,造成腦缺血再灌注損傷[2]。前期有研究[3~5]報道,右美托咪定(Dex)可通過抑制氧化應激反應減輕大鼠全腦缺血再灌注損傷,但具體的病理生理機制仍不明確。2019年1~12月,本研究進一步驗證了Dex腹腔注射對老齡大鼠全腦缺血再灌注損傷的預防作用,并探討了其預防機制,為豐富臨床治療及機制探討提供參考。
1.1 動物、試劑、儀器 清潔級老年SD大鼠36只,月齡20~22個月,體質量(450±20)g,購于華中科技大學實驗動物中心,動物合格證號:NO.42009800001823。于室溫、常規環境下喂養。Dex(江蘇恒瑞醫藥有限公司,批號:10061534);超氧化物歧化酶(SOD )、過氧化氫酶(CAT)、丙二醛(MDA)等生化試劑盒均購于南京建成生物工程研究所。抗體包括β-actin(稀釋濃度比為1∶3 000)、核因子E2相關因子(Nrf2)(稀釋濃度比為1∶500)、血紅素單加氧化酶-1(HO-1)(稀釋濃度比為1∶400)等,兔種屬來源一抗均購于美國Abcom公司,兔二抗購于武漢Antijie Biocom有限公司。BCA蛋白測定試劑盒、Western blotting 電泳凝膠試劑盒均購自武漢百奧斯公司。FA1004分析天平購自北京中儀公司。飛鴿牌離心機購自上海儀天科學儀器有限公司。TB-85型恒溫水浴鍋購自日本島津公司;KHB ST-360酶標儀購自上海科華有限公司。免疫印跡Western blotting電泳系統購自美國Bio-Rad有限公司。
1.2 大鼠分組、Dex給予方法、腦缺血再灌注操作方法 老年大鼠適應喂養兩周后,采用隨機數字表法分為Dex組(n=12)、模型組(I/R,n=12)、假手術組(S,n=12)。S組無電凝閉塞及夾閉雙側動脈處理。I/R組和Dex組采用文獻[6,7]報道方法,并根據實際情況進行改良后,運用四動脈阻斷法制備全腦缺血再灌注損傷大鼠模型:自由飲水、禁食12 h后,10%水合氯醛腹腔麻醉大鼠(0.4 mL/100 g)固定于操作臺,備皮、暴露頸部,于第1頸椎處采用2.5%碘伏進行消毒,單極電凝對準橫突孔燒灼雙側椎動脈,使其形成永久性閉塞;然后于頸部作一切口,鈍性分離腺體及皮下組織,暴露雙側頸動脈,準備好絲線,消毒縫合。待自然蘇醒24 h后,提起外置絲線分離的頸總動脈,采用動脈夾夾閉雙側頸動脈,形成4動脈閉塞的全腦缺血模型。夾閉10 min后,松開動脈夾再灌注24 h。Dex組夾閉雙側頸總動脈前30 min腹腔注射50 μg/kg的 Dex,S組和I/R組給予等量生理鹽水。缺血再灌注24 h后,處死再斷頭取腦,冰下剝離腦組織,進行相關生化指標測定。
1.3 各組腦組織病理觀察 斷頭取腦,冰下剝離腦組織,每組部分腦組織(n=4)固定于4%多聚甲醛中,石蠟包埋常規切片(厚度4 μm)。然后,進行常規病理HE(蘇木素及伊紅)染色,光學顯微鏡下觀察腦組織海馬區病理改變。
1.4 各組腦組織SOD、CAT、MDA的測定 稱取各組大鼠(n=8)腦組織,采用生理鹽水進行組織勻漿,制備10%的腦組織勻漿液。根據試劑盒說明書操作步驟測定腦組織SOD、CAT、MDA。
1.5 各組腦組織Nrf2和HO-1蛋白的測定 采用Western blotting法測定。冰下解剖腦組織后,采用含1%苯甲磺酰氟(PMSF)的裂解液裂解腦組織,提取總蛋白。4 ℃下12 000×g離心15 min后取上清;然后采用BCA試劑盒(武漢安特捷)測定腦組織總蛋白含量。加入適量裂解液將各組蛋白調至相同濃度,最后加入5×上樣緩沖液,沸水浴煮10 min變性,冰箱20 ℃凍存。取20 μL樣品上樣,SDS-PAGE凝膠電泳分離蛋白,然后濕轉法轉膜2.5 h,轉膜成功后5%脫脂奶粉封閉1 h。根據Marker條帶剪下PVDF膜上不同目的條帶,分別加兔抗大鼠的β-actin、Nrf2和HO-1一抗,并置于4 ℃冰箱孵育過夜,次日搖床振蕩下采用TBST洗滌多次(15 min×3次)。洗滌后孵育二抗:加入 1∶3 000 的二抗室溫孵育1 h。同樣采用TBST洗滌后ECL 法曝光顯影,觀察Nrf2和HO-1蛋白的表達,結果以灰度值表示。

2.1 各組大鼠大腦海馬組織病理變化 各組大鼠海馬HE染色結果如圖1所示,Dex組缺血損傷較I/R組明顯減輕,細胞形態規則,排列較為整齊;I/R組則呈現缺血壞死,組織排列紊亂、細胞破碎,典型的缺血損傷; S組大鼠皮質層細胞排列整齊規則,無缺失。

圖1 各組大腦海馬組織結構(HE染色)
2.2 各組大鼠腦組織SOD、CAT活性及MDA含量比較 與S組比較,I/R組SOD和CAT活力明顯下降,MDA含量升高(P均<0.05)。Dex組腦組織SOD、CAT活性較I/R組增加,MDA含量降低(P均<0.05),詳見表1。

表1 各組大鼠腦組織SOD、CAT活性及MDA含量
2.3 各組大鼠腦組織細胞核內Nrf2、HO-1蛋白表達水平比較 Dex組、I/R組、S組大鼠腦組織細胞核內Nrf2分別為0.91±0.06、0.81±0.05、0.41±0.08,HO-1分別為1.18±0.05、0.91±0.04、0.31±0.09。各組之間各指標兩兩比較,P均<0.05。各組大鼠腦組織細胞核內Nrf2、HO-1蛋白電泳圖見圖2。
正常生理狀態下,機體內氧化和抗氧化處于一種動態平衡。大腦作為人體的重要器官,在病理狀態下如腦缺血再灌注損傷過程中,氧化和抗氧化失衡,一系列氧化應激反應被激活,進而產生大量的超氧陰離子、氫氧根離子等氧自由基,可與腦細胞表面的不飽和脂肪酸結合發生脂質過氧化反應,代謝生成有害物質,損害腦組織,加重腦缺血損傷[8]。SOD和CAT作為生理平衡中不可或缺的抗氧化酶,能清除氧自由基,減少脂質過氧化物等對腦組織的毒性損傷[9]。Dex是臨床上應用非常廣泛的麻醉藥物,是α2腎上腺素受體激動劑,在大腦、腎臟、心臟等臟器缺血再灌注中通過抗氧化發揮一定的保護作用[10~12],然而具體的作用機制仍不清楚。

圖2 各組大鼠腦組織細胞核內Nrf2、HO-1蛋白表達電泳圖
心腦血管疾病多發于老年群體,因此本研究探討了老年大鼠全腦缺血再灌注模型中,Dex抗氧化保護腦組織可能的具體作用機制。結果發現,I/R組大鼠腦組織中SOD和CAT活性較S組下降,而MDA含量明顯增加,提示大量氧自由基侵襲細胞,生成的脂質過氧化物損害腦組織導致細胞破裂、凋亡。Dex可以抑制機體的氧化應激反應,使大腦中SOD和CAT活性上升,清除氧自由基,有害物質MDA生成進而減少[13,14],給予Dex干預后,腦組織缺血損傷較I/R組明顯減輕,提示Dex通過提高SOD和CAT活性,從而減少了MDA對大鼠腦組織損傷。
有研究[15]表明,Nrf2是細胞發生氧化應激的感受器,是介導抗氧化應激反應的重要轉錄因子, 在氧化和抗氧化過程中發揮了一定的防御作用。Nrf2可與肌動蛋白結合蛋白Keapl結合,使HO-1表達上調,激活Keapl/Nrf2/HO-1通路,誘導抗氧化酶SOD、CAT等活性增加,清除氧自由基等有害物質,維持機體氧化還原調節的平衡,發揮細胞保護作用。靜息狀態下,Nrf2與Keapl結合形成Keapl-Nrf2二聚體位于細胞質中,當受到來自ROS或外界氧化應激信號刺激時,Nrf2 磷酸化轉入細胞核,進而啟動下游HO-1和SOD、CAT基因的表達,發揮抗氧化作用。全腦缺血再灌注損傷導致腦組織中超氧陰離子、氫氧根離子等大量釋放,氧化應激反應被激活。本研究結果顯示,與S組比較,I/R組細胞核內Nrf2和HO-1水平明顯增加,表明機體存在自身免疫調節,可抵御氧化應激損傷;Dex組Nrf2表達較I/R組顯著上調,其信號通路下游的HO-1表達也明顯增多,提示Dex可以促進細胞核內Nrf2/HO-1的表達上調,增加 SOD、CAT 活性,降低MDA 含量,減少氧化應激對腦細胞的損傷和凋亡。
綜上所述,Dex對老齡大鼠全腦缺血再灌注損傷有一定的預防作用,其作用機制可能是上調Nrf2、HO-1蛋白的表達而抑制氧化應激反應。本研究僅進行了Dex對老齡大鼠全腦缺血再灌注損傷預防作用分子機制方面的探討,后續將在細胞水平進一步分析Dex的作用機制。