童紅梅,王保平,高淑美,宋巧,周薇,郭敏
甘肅醫學院(平涼 744000)
甜菊糖苷是從甜葉菊(Stevia rebaudiana(Bertoni)Hemsl.)的莖、葉中提取的一類高甜度、低熱量、對人體無副作用的天然甜味劑,屬于四環二萜類化合物[1]。其純品為白色結晶性粉末,分子式為C38H60O18,熔點198 ℃,易溶于水,可溶于甲醇、乙醇、四氫呋喃,不溶于苯、醚、氯仿等有機溶劑,有較好的耐熱性和穩定性[2]。甜菊糖苷對肥胖病、糖尿病、高血壓病、心臟病、齲齒等有一定輔助治療作用[3]。對高純度甜菊糖苷的制備方法報道主要有乙醇沉淀法、樹脂吸附法和膜分離技術等,但提取的甜菊糖苷純度不高、顏色深、甜味不純正,導致甜菊糖苷不能大批量地應用于食品工業中[4]。
試驗以甘肅酒泉產甜葉菊為原料,通過超聲技術提取甜菊糖苷粗提樣品,用80%乙醇沉淀除雜、微孔膜過濾得到粗提樣品,用酸性氧化鋁(或氧化鎂)作為固定相,乙醇作為流動相,去除粗提樣品中的雜質,收集洗脫液結晶,得到純化樣品。通過比較氧化鋁和氧化鎂兩種吸附劑柱層析工藝條件(吸附劑種類、用量、洗脫劑種類、用量)對甜菊糖苷提取率、純度影響進行研究,以得到純度較高的甜菊糖苷純品,解決生產中甜菊糖苷提取樣品純度低、顏色深、后味發苦甜味不純正的問題。
甜葉菊(購自酒泉市肅州區農貿市場,由肅州區農業局農技科專家鑒別,冷藏于0 ℃備用)。
中藥超聲提取機(JBT/C-YCL500T/3P,山東金百特);Heidolp旋轉蒸發儀(德國);微孔過濾器(天津雙吉實驗材料經營部);紫外分光光度計(UV-1780島津蘇州公司);數顯電熱恒溫鼓風干燥箱(101-2型,上海錦屏儀器儀表有限公司);JP-1500B高速多功能粉碎機(永康市久品工貿有限公司);HZK-JA 210電子天平(福州華志科學儀器有限公司);SHHW-600三用電熱恒溫水箱水浴鍋(天津市泰斯特儀器有限公司)。
無水乙醇、氧化鋁(酸性,110 ℃烘干12 h,46~74 μm)、氧化鎂、蒽酮、濃硫酸(國藥集團化學試劑有限公司);其他試劑均為分析純;甜菊糖苷標準品甜菊糖苷(STV,純度>99.0%,日本和光純藥工業株式會社)。
1.4.1 甜菊葉預處理
將甜葉菊干葉去雜去屑,水洗烘干(40 ℃,60 h)后粉碎粒度140 μm,干燥備用。
1.4.2 甜菊糖苷樣品提取制備
利用前期研究的提取方法,取冷凍干燥樣品10 g,液氮中充分研磨后加入80%乙醇(料液比1∶50 g/mL),充分混勻后功率200 W、60 ℃超聲處理40 min,反復提取3次,合并濾液,旋轉蒸干,80%乙醇定容250 mL后離心(5 000 r/3 min)去掉沉淀,過0.30 μm微濾膜過濾得到粗提液。
1.4.3 柱層析純化
取直徑1 cm×16 cm玻璃層析柱,下端塞少許棉花,從頂端灌入干燥活化的5 g酸性氧化鋁粉末,要求柱體均勻、無空隙。將樣品用微量移液器從柱床上面慢慢均速加入到氧化鋁層析柱,待樣品全部滲入床面,用80%乙醇進行洗脫,洗脫液用量約50 mL,在層析柱下端收集洗脫液,待全部樣品全部洗脫完畢,減壓回收乙醇,干燥得白色粉末狀甜菊糖苷純品,稱量,計算甜菊糖苷純度。重復3次,結果取平均值。
取白色結晶粉末0.1 g,用25 mL無水乙醇溶解定容為樣品液,取1.20 mL樣品液,加1.5%蒽酮溶液0.30 mL,濃硫酸3.00 mL,于80 ℃恒溫水浴鍋中顯色15 min,用蒽酮比色法進行定量分析,在621 nm波長處分別測定各體系的吸光度,取平均值,在標準曲線上查得樣品甜菊糖苷的質量濃度,計算甜菊糖苷的提取率與純度。
1.5.1 甜菊糖苷標準曲線繪制
精準稱取甜菊糖苷標準品準確配置0.20,0.30,0.40,0.50,0.60,0.70和0.80 mg甜菊糖苷標準品溶液,置于10 mL容量瓶中,用80%乙醇溶液定容,渦旋混勻后加1.5%蒽酮溶液0.30 mL,濃硫酸2.00 mL,于80 ℃恒溫水浴鍋中顯色15 min(蒽酮比色法),于621 nm波長處分別測定各體系的吸光度。以甜菊糖苷質量濃度為橫坐標,吸光度(A)為縱坐標,繪制標準曲線。線性回歸方程為y=0.938 9x+0.199 1,相關系數r2=0.998 3。
1.5.2 甜菊糖苷提取率、純度的計算
樣品提取方法同前,合并濾液并真空濃縮,干燥得粗甜菊糖苷。取0.1 g粗提甜菊糖苷樣品,置于25 mL容量瓶中,80%乙醇超聲溶解并定容至刻度線。按照標準曲線的制作方法在最大吸收波長621 nm處測定吸光度,計算甜菊糖苷提取率[5]。

式中:m1為甜菊糖苷粗提品質量,g;m2為甜葉菊葉質量,g;X為甜菊糖苷粗取率,%。

式中:C為樣品甜菊糖苷質量濃度,mg/mL;m3為稱取的粗甜菊糖苷粗提品質量,g;V為樣品體積,25 mL;Y為甜菊糖苷提取率,%。

式中:m4為純化樣品甜菊糖苷質量,g;m5為粗甜菊糖苷質量,g;Z為甜菊糖苷純度,%。
1.5.3 數據處理
所有數據均用x±s表示,多組均數間比較用F檢驗,2組間均數差異以SPSS 22.0統計軟件進行t檢驗。以p<0.05為差異有統計學意義。
用1.4.3的方法稱取等量的用相同方法處理的氧化鋁、氧化鎂吸附劑各3份裝柱層析,用1.4.2的方法制備的樣品上樣,用80%乙醇洗脫,收集洗脫液,用紫外分光光度計蒽酮比色法,測定甜菊糖苷粗提品中甜菊糖苷的質量,計算甜菊糖苷提取率與純度,結果見表1。

圖1 甜菊糖苷標準曲線

表1 不同吸附劑對甜菊糖苷提取與純度的影響
結果表明,采用氧化鋁作吸附劑,甜菊糖苷的提取率平均為22.41%,甜菊糖苷純度為90.88%,樣品顏色略帶淡黃色;采用氧化鎂作吸附劑,甜菊糖苷的提取率平均為28.37%,甜菊糖苷純度為92.21%,樣品顏色為無色;氧化鎂層析與氧化鋁層析比較表明,甜菊糖苷的提取率氧化鎂層析高于氧化鋁層析5.96%(p>0.05),差異不顯著;甜菊糖苷純度氧化鎂層析高于氧化鋁層析1.33%(p>0.05),差異不顯著;氧化鎂作為吸附劑優于氧化鋁,脫色效果很好,樣品純度高。但是,以氧化鎂作為吸附劑層析時間比較長,流速慢,主要原因可能是氧化鎂粉末的粒度(75~150 μm)比氧化鋁小,吸附力強[6]。
用1.4.3的方法制備層析柱6份,分別按照m(原料)∶m(酸性氧化鋁)=1∶1,1∶2,1∶3,1∶4,1∶5,1∶6和1∶7,精密稱取酸性氧化鋁1,2,3,4,5,6和7 g并分別裝好柱,柱層析,收集洗脫液,用紫外分光光度計蒽酮比色法,測定甜菊糖苷粗提品中甜菊糖苷的質量,計算甜菊糖苷提取率與純度,結果見表2。
結果表明,以5 g樣品為對照,可以看出氧化鋁用量愈少,樣品脫色愈差,甜菊糖苷提取率、純度愈小;氧化鋁用量4 g時,其樣液顏色脫色效果最好,近于無色且透明,樣品純度可達90.83%。氧化鋁用量<4 g時,樣液顏色脫色效果不好且渾濁;氧化鋁用量>4 g時,樣液脫色效果好,甜菊糖苷提取率與純度均有提高,表現為劑量與提取率、純度同步增長的趨勢,但是酸性氧化鋁用量過多,造成酸性氧化鋁浪費,從而導致生產成本高。因此,氧化鋁用量4 g為宜。

表2 吸附劑用量對甜菊糖苷純化效果的影響
用1.4.3的方法稱取4 g酸性氧化鋁制備6個層析柱,取3 mL樣品液上樣,分別用10%,30%,50%,70%,90%和100%乙醇50 mL洗脫,觀察層析現象,收集洗脫液,用紫外分光光度計蒽酮比色法,測定甜菊糖苷粗提品中甜菊糖苷的質量,計算甜菊糖苷提取率與純度。結果見表3。
結果顯示,以80%乙醇洗脫為對照,乙醇體積分數低于30%時,洗脫樣品甜菊糖苷提取率低、純度小(p<0.01);50%乙醇50 mL洗脫酸性氧化鋁層析柱,洗脫液為無色透明液體,樣液脫色效果好,樣品純度為82.75%(p<0.05);70%乙醇,隨著乙醇體積分數提高,洗脫樣品純度也在提高,但差異不顯著。因此,為得到高純度的樣品,選用70%乙醇洗脫較好。

表3 洗脫劑體積分數對甜菊糖苷純化效果的影響
用1.4.3的方法稱取4 g酸性氧化鋁制備8個層析柱,取3 mL樣品液上樣,分別采用70%乙醇10,20,30,40,50,60,70和80 mL洗脫,收集洗脫液,用紫外分光光度計蒽酮比色法,測定甜菊糖苷質量,計算甜菊糖苷提取率與純度。結果見表4。
結果顯示,以50 mL洗脫劑為對照,洗脫劑乙醇的用量10 mL時,甜菊糖苷提取率為13.41%,純度為69.11%,洗脫樣品淡黃色,甜菊糖苷提取率低、純度小(p<0.01);用量20 mL時,甜菊糖苷提取率為17.73%,純度為73.89%,洗脫樣品無色,甜菊糖苷提取率低、純度小(p<0.05);洗脫劑乙醇的用量大于40 mL時,洗脫劑的用量增加,對甜菊糖苷提取率、純度影響差異不顯著(p>0.05),約為10倍柱體積。

表4 洗脫劑用量對甜菊糖苷純化效果的影響
利用柱層析技術分離純化甜菊糖苷混合物樣品,用酸性氧化鋁(氧化鎂)4 g粉末干法裝柱,徑高比1∶5,上樣量3 mL,用70%乙醇進行洗脫,洗脫液用量為10倍柱體積,回收乙醇干燥得白色粉末狀甜菊糖苷粗樣品,用蒽酮比色法計算甜菊糖苷提取率和純度,采用氧化鋁作吸附劑,甜菊糖苷的提取率平均為22.41%,甜菊糖苷純度為90.88%;采用氧化鎂作吸附劑,甜菊糖苷的提取率平均為28.37%,甜菊糖苷純度為92.21%。氧化鋁層析與氧化鎂層析比較,甜菊糖苷的提取率氧化鎂層析高于氧化鋁層析5.96%,甜菊糖苷純度氧化鎂層析高于氧化鋁層析1.33%,氧化鎂作為吸附劑優于氧化鋁。但氧化鎂層析耗時較長,有待進一步改進。該工藝與報道的乙醇沉淀法、微孔膜過濾法、大孔樹脂法[7-8]、分離純化工藝相比,酸性氧化鋁柱層析工藝流程更簡單,且脫色效果好,產品純度高,有一定推廣價值。