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共表達PD-L1抑制劑的溶瘤病毒增強胃癌的溶瘤活性研究

2021-09-25 10:07:50李婷王愛平王紅玲劉適郭文濤三亞市人民醫院消化內科一區海南572000
中國免疫學雜志 2021年18期
關鍵詞:胃癌小鼠

李婷 王愛平 王紅玲 劉適 郭文濤(三亞市人民醫院消化內科一區,海南572000)

胃癌是胃黏膜癌變的一種惡性腫瘤。目前胃癌已經是全球癌癥相關死亡率第三的惡性癌癥,2013年的統計數據顯示,約有98.4萬胃癌新發病例和84.1萬死亡病例,且近年來數字進一步增長[1]。由于早期患者缺乏具體的疾病表現,大多數胃癌患者確診時已經疾病晚期階段,預后較差[2]。

溶瘤病毒可以在腫瘤細胞中選擇性復制,并能夠摧毀癌細胞,進一步將腫瘤抗原暴露至抗原提呈細胞中[3]。一些研究表明,其可以通過局部免疫激活、免疫原性溶瘤細胞死亡、新抗原釋放和呈遞,以及改變免疫抑制的腫瘤微環境來激活T細胞反應,從而進一步增強抗腫瘤免疫反應。值得注意的是,近年來,具有腫瘤選擇性的溶瘤病毒被證明可作為一種載體,攜帶一些免疫調節因子進入腫瘤微環境,從而改變腫瘤微環境。用攜帶致炎細胞因子編碼基因的腫瘤選擇性溶瘤病毒治療有望增強腫瘤微環境中的抗腫瘤免疫反應,一些溶瘤病毒已經在幾種癌癥中進行評估[4-6]。Talimogene laherparepvec(T-VEC)于2015年在美國被批準為治療轉移性黑色素瘤的一類溶瘤病毒,是一種工程化的單純皰疹病毒,插入編碼粒細胞-巨噬細胞集落刺激因子(GM-CSF)的基因作為免疫佐劑來調節免疫微環境[7-8]。Pexastimogene devacirepvec(PexA-VEC,JX-594)也攜帶編碼GM-CSF的基因,目前已經在晚期肝細胞癌患者的Ⅲ期臨床試驗中進行活性評估[9-10]。

有研究表明,溶瘤病毒感染后腫瘤微環境中PD-L1表達會上調,導致腫瘤對溶瘤免疫治療產生抵抗,這一問題應當在溶瘤病毒治療過程中予以克服[11]。本研究中,構建了一種共表達PD-L1抑制劑和GM-CSF的工程溶瘤痘苗病毒。發現這種工程化溶瘤病毒能夠有效裂解腫瘤細胞并表達PD-L1抑制劑,體內實驗表明其可以增強溶瘤病毒的抗腫瘤活性,激活腫瘤特異性T細胞。結果表明,這種工程化的溶瘤病毒對胃癌的治療提供了一種新的方法。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 細胞人胃癌細胞MGC803及人胃癌細胞AGS由中科院上海細胞庫提供;鼠胃癌細胞MFC細胞及HUTK-143B細胞由美國模式菌種保藏庫提供。以上所有細胞均在DMEM完全培養基(額外添加10%FBS)37℃、5%CO2條件下生長。

1.1.2 試劑MTT及二甲基亞砜購自美國Sigma公司,anti-CD8、anti-IFN-γ及anti-TNF-α流式抗體購自Biolegend(美國),anti-PD-L1抗體購自R&D(美國)。GAPDH購自杭州聯科生物科技有限公司。Fix/Perm溶液及Perm/Wash溶液購自BD Biosciences(美國)。

1.2 方法

1.2.1 重組病毒的構建PD-L1抑制劑由PD-1受體胞外結合域與IgG1 Fc片段組成。穿梭載體pSel-DsRed2N1中插入PSE/l啟動子控制的iPDL1或/和p7.5啟動子控制下的GM-CSF。為獲得重組溶瘤痘病毒(OV),以VGF基因缺失的vSC20為親本病毒進行同源重組。將vSC20以MOI值為0.1感染HUTK-143B細胞2 h,然后將重組穿梭質粒轉染HUTK-143B細胞。挑選3個RFP陽性斑塊進行分離并使其懸浮,進一步感染HUTK-143B細胞,重復3個周期的空斑選擇,直到所有斑塊均為RFP陽性。1 000 r/min離心5 min去掉上清液收獲細胞。再懸浮于冰浴的10 mmol/L Tris緩沖液(pH=9.0)中,超聲1 min,干冰/乙醇交替浴凍融3次。將細胞裂解液小心預置于2 ml 40%蔗糖溶液中,在4℃、20 000 r/min離心2 h。將超速離心后試管底部的白色顆粒重懸在200 ml 10 mmol/L Tris緩沖液中,保存于-80℃。病毒滴定通過HuTK-143B細胞(2×105個)接種于12孔板中,在細胞單層上加入10倍梯度稀釋的病毒溶液。搖床上孵育1 h后,加入2 ml培養基,孵育24~48 h,洗滌并固定于0.1%結晶紫的乙醇溶液中。在顯微鏡下對斑塊進行計數。

1.2.2 Western blot用MOI值為1的溶瘤病毒感染MFC細胞,孵育48 h后收集上清液,10 000 r/min離心2 min。細胞在1×RIPA緩沖液和1×蛋白酶抑制劑中冰浴15 min,10 000 r/min離心2 min。用12%的SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳,將分離的蛋白質樣品轉移到硝酸纖維素膜上。在含有5%脫脂牛奶的TBS緩沖液中室溫下封閉60 min。使用抗PD-1一抗(1∶1 000)4℃孵育過夜,用TBST清洗后與羊抗兔二抗(1∶10 000)室溫孵育1 h后,用奧德賽成像儀進行曝光。GAPDH作為內參。

1.2.3 MTT檢測細胞毒作用將腫瘤細胞以1×104個/孔 接種 于96孔 板中,并 以不 同MOI值(0.1、0.5、1、5)的溶瘤病毒對細胞進行感染。腫瘤細胞活力測定采用MTT法。在VersaMax酶標儀上以490 nm波長讀取光密度。細胞裂解率(%)=[1-OD570(實驗組)/OD570(對照組)]×100%

1.2.4 流式細胞術檢測腫瘤細胞經過溶瘤病毒感染后,離心收集細胞,洗滌3次后用抗PD-L1的抗體避光孵育30 min,進行流式細胞術分析。

腫瘤組織經過消化及過濾獲得單細胞懸液,細胞表面染色通過anti-CD8抗體避光孵育30 min,之后利用PBS洗滌3次,然后進行胞內抗原染色,用于檢測IFN-γ和TNF-α的表達量。細胞在Fix/Perm溶液中固定后,用Perm/Wash Buffer洗滌,然后使用抗體細胞內染色30 min,Perm/Wash Buffer洗滌后進行流式細胞術分析。所有樣本在LSRⅡ細胞儀(BD)上進行操作,并用FACS DIVA軟件v8.0(BD Biosciences)進行分析。

1.2.5 體內實驗將5~7周齡的雌性裸鼠飼養在武漢大學實驗動物中心,在標準無菌室中飼養,每日監測。在小鼠皮下注射MFC細胞建立異種移植模型。接種后第7天,通過瘤周注射PBS,OV-GM,OV-GM/iPD-L1(5×107PFU/只)監測腫瘤的生長狀況。每2~3 d檢查1次瘤體積和小鼠體重。對表現出垂死狀態的小鼠實施安樂死。實驗結束后對腫瘤進行剝離,拍照稱重。

1.3 統計學分析所有實驗數據采用SPSS19.0軟件進行統計學處理。計量數據采用±s表示,組間樣本比較采用t檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 工程化溶瘤病毒的構建及驗證本研究中構建了3種溶瘤病毒,分別為OV,編碼GM-CSF的溶瘤痘病毒(OV-GM)以及同時編碼GM-CSF和PD-L1抑制劑的溶瘤痘病毒(OV-GM/iPD-L1),如圖1A所示。將3種溶瘤病毒分別感染鼠胃癌細胞MFC,檢測其分泌PD-L1抑制劑的能力。Western blot結果表明,只有感染OV-GM/iPD-L1可以分泌PD-L1抑制劑,感染其他病毒的細胞不能分泌PD-L1抑制劑(圖1B、C)。以上結果說明所構建的溶瘤病毒可以有效感染腫瘤細胞并表達相應的目的蛋白。

圖1 重組溶瘤病毒的產生和鑒定Fig.1 Generation and characterization of recombinant oncolytic virus

2.2 溶瘤病毒對靶細胞的裂解能力如圖2所示,分別選取了小鼠胃癌細胞MFC、人胃癌細胞MGC803及人胃癌細胞ASG作為靶細胞,將不同的溶瘤病毒以不同的MOI值分別感染腫瘤細胞,檢測其對靶細胞的裂解能力。結果表明,3種溶瘤病毒都可以有效的感染并裂解腫瘤細胞,并且3種溶瘤病毒的溶瘤能力隨著MOI值的升高而增強。以上結果表明,這3種OV病毒可以以劑量依賴的方式裂解腫瘤細胞。

圖2 重組溶瘤病毒在不同MOI下對靶細胞的細胞毒性Fig.2 Cytotoxicity of recombinant oncolytic virus to tar?get cells in different MOI

2.3 OV-GM/iPD-L1中和靶細胞PD-L1的表達用OV-GM和OV-GM/iPD-L1溶瘤病毒分別感染MFC細胞后,檢測其對腫瘤細胞表面PD-L1表達的影響(圖3)。流式細胞術檢測結果表明,與OV-GM感染相比,感染OV-GM/iPD-L1的腫瘤細胞表面PDL1的表達量明顯降低,(t=22.98,P<0.000 1,圖3)。以上結果表明,OV-GM/iPD-L1分泌的PD-L1抑制劑可以中和腫瘤細胞表面PD-L1的表達。

圖3 感染細胞中PD-L1表達的分析Fig.3 Analysis of PD-L1 expression in infected cells

2.4 OV-GM/iPD-L1的體內抗腫瘤活性首先建立了小鼠胃癌細胞的皮下移植瘤模型,瘤周注射PBS、OV-GM及OV-GM/iPD-L1,監測腫瘤的生長情況,結果表明,OV-GM和OV-GM/iPD-L1治療較對照組而言可以顯著抑制腫瘤的生長,而OV-GM/iPD-L1的抑制腫瘤生長的能力較OV-GM更強(t=13.32,P<0.05,圖4A)。實驗結束后分析腫瘤重量,結果表明OV-GM/iPD-L1治療組的腫瘤質量比OV-GM治療組更輕(t=3.641,P<0.05,圖4B、C)。并且在整個治療過程中,3個實驗組中的小鼠體重無顯著性差異,說明并沒有產生明顯的毒性(圖4D)。以上結果說明,OV-GM/iPD-L1可以顯著抑制小鼠體內的腫瘤生長。

圖4 重組溶瘤病毒對小鼠胃移植瘤的抗腫瘤效果Fig.4 Antitumor efficacy of recombinant oncolytic virus against xenografts derived from gastric tumor cell lines in mice

2.5 OV-GM/iPD-L1對浸潤T細胞的抗腫瘤活性的影響對各個治療組小鼠的腫瘤浸潤T細胞的抗腫瘤活性進行了分析(圖5)。流式細胞術檢測結果表明,OV-GM/iPD-L1治療組的腫瘤浸潤T細胞中,IFN-γ+(t=9.214,P<0.01,圖5A、B)及TNF-α+(t=3.207,P<0.05,圖5A、C)的T細胞比OV-GM治療后的腫瘤浸潤T細胞明顯增多,說明OV-GM/iPD-L1顯著增強了小鼠自身T細胞的抗腫瘤免疫反應。總之,以上實驗說明OV-GM/iPD-L1可以通過抑制PD-1/PD-L1通路增強T細胞的抗腫瘤免疫功能,從而協同增強抑制腫瘤的能力。

圖5 腫瘤浸潤性淋巴細胞免疫活性的流式細胞術分析Fig.5 Flow analysis of immune activity of tumor infiltrat?ing lymphocytes

3 討論

胃癌是全球發病率第四的癌癥,同時也是全球第三大病死率的癌癥。目前來看,早期的胃癌患者和可以通過化療及靶向治療藥物獲得較好的治療效果,但是一些晚期以及一些復發的患者沒有很好的治療手段,因此急需開發有效的藥物來應對這一挑戰[12]。

溶瘤病毒具有選擇性感染腫瘤細胞的能力,而對正常細胞的感染能力有限。由于溶瘤病毒在腫瘤治療領域的潛力,現在已經有越來越多的臨床前研究探索其在實體瘤中的應用[13-14]。本研究結果表明,共表達OV-GM/iPDL1能夠產生PD-L1抑制劑,并能夠中和腫瘤細胞PD-L1的表達。瘤內注射OVGM/iPDL1可有效抑制腫瘤生長,并增強自身的T細胞的抗腫瘤活性,從而更有效地阻斷腫瘤生長。

在一些早期研究中,溶瘤病毒被工程化改造,使其可以表達免疫刺激因子,如熱休克蛋白、趨化因子和細胞因子,以激活抗腫瘤免疫反應[15-16]。然而,到目前為止,溶瘤病毒療法對癌癥患者的療效有限。最近的一些研究報道了表達PD-1/PD-L1抑制劑的武裝溶瘤病毒,可以激活抗腫瘤免疫反應[17]。一種表達抗人PD-L1抗體的“武裝”溶瘤腺病毒被證明能增強人腫瘤異種移植模型中的溶瘤活性[18]。表達PD-1單鏈抗體的溶瘤單純皰疹病毒(HSV)在臨床前的腦膠質瘤小鼠模型中被發現能夠誘導持續的抗腫瘤反應[19]。一種表達PD-1胞外區的重組黏液瘤病毒(VPD1)被發現能抑制PD-1/PDL1信號通路,并激活抗腫瘤免疫[20]。最近的研究發現,病毒感染后腫瘤微環境中PD-L1表達的反應性上調導致腫瘤對溶瘤免疫治療產生抵抗[21]。本研究證明,“武裝”溶瘤病毒分泌的PD-L1抑制劑、GMCSF產生了較傳統的溶瘤病毒更好的抑瘤活性,這一方面歸因于PD-L1抑制劑與腫瘤微環境中高表達的PD-L1結合,解除了免疫抑制活性,同時GM-CSF作為一種免疫刺激因子,進一步激活了機體的免疫反應,在本項研究中,這種協同增效的作用充分反應在經過“武裝”溶瘤病毒治療后,腫瘤浸潤的CD8+T細胞的炎癥細胞因子分泌能力顯著增強,因此這種經過改造的溶瘤病毒代表了一種有效的、個體化的腫瘤特異性溶瘤免疫療法。

綜上所述,這種經過改造的溶瘤病毒能夠通過發揮溶瘤活性,并通過表達GM-CSF和PD-L1抑制劑產生協同作用來激活T細胞抗腫瘤反應,從而提供了一種有效的、特異性的腫瘤免疫療法,該療法可單獨或與免疫檢查點抑制劑、靶向治療和化療聯合用于胃癌患者,為胃癌的治療提供新的思路。

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