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不同核酸提取及擴(kuò)增系統(tǒng)組合檢測新型冠狀病毒核酸的效能比較*

2022-12-20 03:40:40李卓敏張昕雨王新宇杜金龍王志陽譚延國
關(guān)鍵詞:意義差異檢測

李卓敏,張昕雨,于 洋,張 磊,王新宇,杜金龍,王志陽,譚延國△

1.首都醫(yī)科大學(xué)附屬復(fù)興醫(yī)院檢驗(yàn)科,北京 100038;2.首都醫(yī)科大學(xué)醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)學(xué)系,北京 100038

新型冠狀病毒肺炎(COVID-19)疫情在我國仍在持續(xù),新型冠狀病毒(SARS-CoV-2)RNA檢測仍是常態(tài)化疫情防控的首選手段,且為疑似病例診斷的“金標(biāo)準(zhǔn)”[1]。隨著經(jīng)驗(yàn)的積累和技術(shù)的進(jìn)步,采用熒光定量PCR檢測SARS-CoV-2 RNA時單次實(shí)驗(yàn)的陽性檢出率已從30%~50%提升至88%[2-3],但如何進(jìn)一步提高檢測質(zhì)量和效能,仍是抗疫工作面臨的重要問題之一。國務(wù)院印發(fā)的《醫(yī)療機(jī)構(gòu)新型冠狀病毒核酸檢測工作手冊(試行第二版)》規(guī)定,各醫(yī)療機(jī)構(gòu)應(yīng)選用核酸擴(kuò)增檢測試劑盒指定的核酸提取試劑及擴(kuò)增設(shè)備等,并對各檢測系統(tǒng)進(jìn)行必要的性能驗(yàn)證[4]。目前,核酸提取試劑及設(shè)備多為配套系統(tǒng),但不同的擴(kuò)增試劑及擴(kuò)增設(shè)備多為搭配使用。首都醫(yī)科大學(xué)附屬復(fù)興醫(yī)院檢驗(yàn)科實(shí)驗(yàn)室所使用的不同核酸提取設(shè)備和試劑、核酸擴(kuò)增設(shè)備和試劑構(gòu)成了多個檢測系統(tǒng),本研究通過回顧性分析陰性標(biāo)本內(nèi)標(biāo)基因(IC基因)以及弱陽性質(zhì)控品N、O、IC基因的Ct值,試圖進(jìn)一步評估不同核酸提取及擴(kuò)增系統(tǒng)組合使用對SARS-CoV-2 RNA檢測效能的影響。

1 材料與方法

1.1人源性標(biāo)本 所有IC基因的Ct值均收集自2021年12月在首都醫(yī)科大學(xué)附屬復(fù)興醫(yī)院SARS-CoV-2核酸檢測實(shí)驗(yàn)室檢測SARS-CoV-2 RNA為陰性的受檢者的標(biāo)本,共3 496份,均為單管采集的口咽拭子標(biāo)本。

1.2儀器與試劑

1.2.1提取系統(tǒng) 均為全自動磁珠法,分別為32通道的Smart32核酸提取儀及配套試劑盒(檢測總耗時32 min,購自中山大學(xué)達(dá)安基因股份有限公司,以下稱為提取系統(tǒng)a),96通道的Autra9600核酸提取儀及配套試劑盒(檢測總耗時17 min,購自上海之江生物科技股份有限公司,以下稱為提取系統(tǒng)b),96通道的MagNA Pure 96核酸提取儀及配套試劑盒[檢測總耗時58 min,購自羅氏診斷產(chǎn)品(上海)有限公司,以下稱為提取系統(tǒng)c]。

1.2.2擴(kuò)增系統(tǒng) 擴(kuò)增系統(tǒng)為購自不同廠商的3種熒光定量PCR儀,分別為SLAN-96S(購自上海宏石醫(yī)療科技有限公司,以下稱為擴(kuò)增系統(tǒng)1)、安杰思AFD9600(購自杭州安杰思生物科技有限公司,以下稱為擴(kuò)增系統(tǒng)2)及LightCycler?480[購自羅氏診斷產(chǎn)品(上海)有限公司,以下稱為擴(kuò)增系統(tǒng)3]。

1.2.3擴(kuò)增試劑 SARS-CoV-2 RNA檢測試劑購自中山大學(xué)達(dá)安基因股份有限公司(批號:2021391),該試劑同時擴(kuò)增的靶基因?yàn)镺、N和IC基因。檢測下限為500 copies/mL,Ct值≤30判定為陽性。

1.2.4室內(nèi)質(zhì)控品 廣州邦德盛生物科技有限公司提供的SARS-CoV-2液體質(zhì)控品,選取S1濃度,靶值為1.6×103。

1.3方法 使用不同提取及擴(kuò)增系統(tǒng)組合進(jìn)行檢測,實(shí)驗(yàn)操作過程均嚴(yán)格按照儀器、試劑說明書的相關(guān)要求。每92份標(biāo)本為一個檢測批次,每個批次均設(shè)置2個鹽水對照、1個陰性質(zhì)控及1個弱陽性質(zhì)控,并全程參與核酸提取及擴(kuò)增。在實(shí)驗(yàn)有效的前提下,數(shù)據(jù)方可納入本研究。實(shí)驗(yàn)有效性的判定:弱陽性質(zhì)控O、N及IC基因(CY5<30)均為陽性,鹽水對照的O、N、IC基因均為陰性,陰性質(zhì)控的IC基因?yàn)殛栃浴?/p>

2 結(jié) 果

2.1不同提取、擴(kuò)增系統(tǒng)組合檢測人源性標(biāo)本IC基因的Ct值結(jié)果 不同提取系統(tǒng)提取的核酸在同一擴(kuò)增系統(tǒng)上擴(kuò)增、同一提取系統(tǒng)提取的核酸在不同擴(kuò)增系統(tǒng)上擴(kuò)增檢測人源性標(biāo)本IC基因的Ct值具體見表1。

2.1.1同一提取系統(tǒng)提取的核酸由不同擴(kuò)增系統(tǒng)擴(kuò)增的結(jié)果比較 提取系統(tǒng)a提取的核酸在擴(kuò)增系統(tǒng)1、2、3上分別擴(kuò)增,其IC基因的Ct值差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.003),且任意兩種擴(kuò)增系統(tǒng)之間IC基因的Ct值比較差異也有統(tǒng)計學(xué)意義(擴(kuò)增系統(tǒng)1與2之間比較P=0.029,2與3之間比較P<0.001,1與3之間比較P=0.017)。提取系統(tǒng)b提取的核酸在擴(kuò)增系統(tǒng)1和3上擴(kuò)增,其IC基因的Ct比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.026)。提取系統(tǒng)c提取的核酸在擴(kuò)增系統(tǒng)2和3上擴(kuò)增,其IC基因的Ct值差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.001)。見表1。

2.1.2不同提取系統(tǒng)提取的核酸在同一擴(kuò)增系統(tǒng)上擴(kuò)增的結(jié)果比較 提取系統(tǒng)a、b、c提取的核酸在擴(kuò)增系統(tǒng)3上擴(kuò)增,其IC基因的Ct值差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.017),且任意兩種提取系統(tǒng)間差異也均有統(tǒng)計學(xué)意義(提取系統(tǒng)a與b之間比較P=0.034,b與c之間比較P<0.001,a與c之間比較P<0.001);提取系統(tǒng)a、c提取的核酸在擴(kuò)增系統(tǒng)2上擴(kuò)增,其IC基因的Ct值差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.001);提取系統(tǒng)a、b提取的核酸在擴(kuò)增系統(tǒng)1上擴(kuò)增,其IC基因的Ct值差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.036)。見表1。

2.2不同提取、擴(kuò)增系統(tǒng)組合檢測弱陽性質(zhì)控品O、N、IC基因Ct值結(jié)果 不同提取系統(tǒng)提取的核酸在同一擴(kuò)增系統(tǒng)上擴(kuò)增、同一提取系統(tǒng)提取的核酸在不同擴(kuò)增系統(tǒng)上擴(kuò)增檢測弱陽性質(zhì)控品的O、N及IC基因Ct值具體見表2~4。

2.2.1N基因檢測結(jié)果 提取系統(tǒng)a提取的核酸,由擴(kuò)增系統(tǒng)2、3擴(kuò)增,其N基因Ct值差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.911);提取系統(tǒng)a、b提取的核酸,由擴(kuò)增系統(tǒng)3擴(kuò)增,其N基因Ct值差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.307);其余不同提取系統(tǒng)提取的核酸在同一擴(kuò)增系統(tǒng)上擴(kuò)增,以及同一提取系統(tǒng)提取的核酸在不同擴(kuò)增系統(tǒng)上擴(kuò)增,其N基因Ct值差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見表2。

2.2.2O基因檢測結(jié)果 提取系統(tǒng)a提取的核酸由擴(kuò)增系統(tǒng)2、3擴(kuò)增,其O基因Ct值差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.925);提取系統(tǒng)a、c提取的核酸由擴(kuò)增系統(tǒng)2擴(kuò)增,其O基因Ct值差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.548);提取系統(tǒng)b提取的核酸由擴(kuò)增系統(tǒng)1、3擴(kuò)增,其O基因Ct值差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.117);其余不同提取系統(tǒng)提取的核酸在同一擴(kuò)增系統(tǒng)上擴(kuò)增,以及同一提取系統(tǒng)提取的核酸在不同擴(kuò)增系統(tǒng)上擴(kuò)增,其O基因Ct值差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見表3。

表1 不同提取、擴(kuò)增系統(tǒng)組合檢測人源性標(biāo)本IC基因的Ct值比較

表2 不同提取、擴(kuò)增系統(tǒng)組合檢測弱陽性質(zhì)控品N基因Ct值結(jié)果比較

表3 不同提取、擴(kuò)增系統(tǒng)組合檢測弱陽性質(zhì)控品O基因Ct值結(jié)果比較

2.2.3IC基因檢測結(jié)果 提取系統(tǒng)a、c提取的核酸由擴(kuò)增系統(tǒng)3擴(kuò)增,其IC基因Ct值差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.247);提取系統(tǒng)a、c提取的核酸由擴(kuò)增系統(tǒng)2擴(kuò)增,其IC基因Ct值差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.905);其余不同提取系統(tǒng)提取的核酸在同一擴(kuò)增系統(tǒng)上擴(kuò)增,以及同一提取系統(tǒng)提取的核酸在不同擴(kuò)增系統(tǒng)上擴(kuò)增,其IC基因Ct值差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見表4。

表4 不同提取、擴(kuò)增系統(tǒng)檢測弱陽性質(zhì)控品IC基因Ct值結(jié)果比較

3 討 論

SARS-CoV-2核酸提取和擴(kuò)增儀器、試劑種類繁多,性能不一[5-8]。本研究所用的不同提取及擴(kuò)增系統(tǒng)均經(jīng)過充分的性能驗(yàn)證且通過室間質(zhì)量評價。在此基礎(chǔ)上,本研究嘗試進(jìn)一步探討不同檢測系統(tǒng)組合使用對檢測結(jié)果的影響。

因陽性標(biāo)本較難留取,故本研究所納入的數(shù)據(jù)采集自陰性標(biāo)本的IC基因及同一批號弱陽性質(zhì)控品的靶基因及IC基因,所有數(shù)據(jù)均來自室內(nèi)質(zhì)控在控的實(shí)驗(yàn)批次。實(shí)踐證明,采用人源性內(nèi)標(biāo)的擴(kuò)增試劑可有效監(jiān)控每個標(biāo)本的采集質(zhì)量,以排除因未采集人源性標(biāo)本而導(dǎo)致的假陰性結(jié)果[9]。

本研究僅納入了單采標(biāo)本IC基因的Ct值,可避免混采標(biāo)本因采集過程繁瑣和標(biāo)本來源人數(shù)眾多所產(chǎn)生的質(zhì)量不確定性的問題。本研究發(fā)現(xiàn),不同的核酸提取、擴(kuò)增系統(tǒng)組合用于檢測SARS-CoV-2 RNA時結(jié)果存在差異,且有提取及擴(kuò)增系統(tǒng)的最佳配伍組合,如檢測人源性標(biāo)本IC基因時,提取系統(tǒng)c與擴(kuò)增系統(tǒng)3的組合所檢測的Ct值最低,為16.33±1.86,而提取系統(tǒng)a與擴(kuò)增系統(tǒng)2的組合所檢測的Ct值最高,為21.87±1.80。此外,對于室內(nèi)質(zhì)控品檢測,也存在類似現(xiàn)象,如弱陽性質(zhì)控品IC基因經(jīng)提取系統(tǒng)c或a提取后由擴(kuò)增系統(tǒng)3擴(kuò)增的組合。本研究顯示,最佳的配伍組合可顯著提升檢測效率,相對于效能最差的組合,其可將弱陽性質(zhì)控品靶基因的Ct值提高;另外,對于不同提取系統(tǒng)提取的核酸,擴(kuò)增系統(tǒng)3的擴(kuò)增效率也顯著高于其他兩種擴(kuò)增系統(tǒng)。上述研究結(jié)果的臨床應(yīng)用對于提高低病毒載量標(biāo)本的檢出率具有非常重要的意義。

Ct值的高低從一定程度上可反映檢測系統(tǒng)的擴(kuò)增效率,但其值大小也會受實(shí)驗(yàn)條件等因素的影響,所以不能單純把Ct值作為評價試劑好壞的標(biāo)準(zhǔn),還應(yīng)結(jié)合陽性標(biāo)本的檢出率等綜合判定[10-11]。因缺乏SARS-CoV-2 RNA的陽性標(biāo)本,本研究僅比較了弱陽性室內(nèi)質(zhì)控品的各靶基因和IC基因的Ct值檢測結(jié)果,雖然與人源性標(biāo)本的基質(zhì)不同,可能導(dǎo)致結(jié)果的偏差,但對不同提取及擴(kuò)增系統(tǒng)的性能評估仍具有一定的參考價值[12],因?yàn)橥粋€實(shí)驗(yàn)室的環(huán)境相對穩(wěn)定,試劑種類和批號、室內(nèi)質(zhì)控品水平和批號等也是相對固定的。如條件允許,應(yīng)使用陽性標(biāo)本代替弱陽性室內(nèi)質(zhì)控品,進(jìn)一步對核酸提取系統(tǒng)及擴(kuò)增系統(tǒng)的性能進(jìn)行評價。同時因收費(fèi)標(biāo)準(zhǔn)的下調(diào),以及提取系統(tǒng)b及擴(kuò)增系統(tǒng)1購買時間較晚,因此在本研究中缺少部分提取系統(tǒng)b搭配擴(kuò)增系統(tǒng)2以及提取系統(tǒng)a、c搭配擴(kuò)增系統(tǒng)1的檢測數(shù)據(jù),此為本研究的不足之處。

為提升SARS-CoV-2 RNA的檢測效能,應(yīng)在性能驗(yàn)證的基礎(chǔ)上進(jìn)一步評估實(shí)驗(yàn)室內(nèi)各種核酸提取和擴(kuò)增系統(tǒng)的檢測效能,以便選擇最佳的提取、擴(kuò)增配伍組合。

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