李新紅 李忠
微生物檢驗是疾病預(yù)防控制中心(簡稱疾控中心)日常工作之一,疾控中心通過各種現(xiàn)代化的實驗室設(shè)備和技術(shù),對各種微生物特別是病原微生物進行鑒定、檢測和分析,可以為感染性疾病防控及相關(guān)突發(fā)公共衛(wèi)生事件的應(yīng)急處理提供重要依據(jù),是創(chuàng)造安全環(huán)境、保護公眾健康的重要手段[1]。微生物檢驗項目眾多,在細(xì)菌總數(shù)測定方面,平板計數(shù)法是國標(biāo)規(guī)定的檢測方法,此法精準(zhǔn)度高,但是微生物培養(yǎng)時間長,因此檢驗耗時久,檢驗效率不高,難以滿足疾病預(yù)防控制中心實際工作需要[2]。對此,國內(nèi)外學(xué)者進行了大量微生物快速檢驗方法的研究,力求保證檢驗高精準(zhǔn)度的同時,簡化檢驗程序,縮短檢驗時間,提高檢驗速度和效率。膜分離技術(shù)是在分子水平上將不同粒徑的混合物通過具有一定孔徑的半透膜,從而實現(xiàn)不同粒徑混合物的選擇性分離,依據(jù)半透膜孔徑大小可以分為微濾膜、超濾膜、納濾膜等多種技術(shù)類型[3]。其中,微濾膜分離技術(shù)所用過濾膜的過濾孔徑在0.1~1.0 μm,不僅可以截留懸浮物和大尺寸膠體,亦可截留細(xì)菌及部分病毒,因此不僅在食品生產(chǎn)處理、污廢水處理、海水淡化等領(lǐng)域廣泛應(yīng)用,近年也在實驗室標(biāo)本微生物分離與檢驗中得到推廣[4]。文章現(xiàn)以濟南市疾病預(yù)防控制中心近年接收的86 份微生物待檢樣本為例,以平板計數(shù)法為對照,探討微濾膜分離技術(shù)在微生物檢驗中的應(yīng)用效果,現(xiàn)報道如下。
以2022 年1 月—2023 年6 月濟南市疾病預(yù)防控制中心接收的86 份微生物待檢樣本為研究對象。納入標(biāo)準(zhǔn):(1)待檢樣本的量充足(≥20 mL),可以同時滿足2 種微生物檢驗方法的檢驗需要,樣本類型不限。(2)樣本采集規(guī)范,封閉送檢。排除標(biāo)準(zhǔn):(1)疑似污染樣本。(2)檢驗數(shù)據(jù)資料不全。待檢樣本類型:生活飲用水樣本35 份,血液樣本21 份,食品樣本17 份,污水樣本9 份,其他4 份。
1.2.1 設(shè)備與材料
醫(yī)用YB-MDX23 型膜式電動吸引器(上海醫(yī)療器械產(chǎn)業(yè)公司);STV3 無菌薄膜過濾器(浙江寧海白石藥檢儀器廠);LRH-250 型生化培養(yǎng)箱(上海一恒科學(xué)儀器有限公司);OLYMPUS BX53 三目顯微鏡(奧林巴斯光學(xué)技術(shù)公司);φ50 mm×0.45 μm 的微孔濾膜(上海新亞凈化器件廠);HealForce B2 型生物安全柜(力康醫(yī)療器械科技有限公司);BXM-30R 型立式壓力蒸汽滅菌器(上海博迅實業(yè)有限公司);計數(shù)瓊脂培養(yǎng)基(恒凱生物科技有限公司);營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基(北京陸橋技術(shù)有限公司);J-HH-4A 型精密恒溫水浴鍋(冠森生物科技);500 mL 無菌錐形瓶(賽默飛世爾科技有限公司);90 mm 無菌培養(yǎng)皿(上海晶安生物科技有限公司);綠膿桿菌ATCC9027,大腸桿菌ATCC25922,金黃色葡萄球菌ATCC6538,陰溝腸桿菌CMCC45301,均由中國藥品生物制品檢定所提供。培養(yǎng)液:蛋白胨10 g+牛肉膏粉3 g+氯化鈉0.05 g+氯代三苯基四氮唑0.01 g+1 000 mL 蒸餾水,充分溶解后調(diào)整酸堿值至(7.5±0.1),脫脂棉球過濾后120℃滅菌20 min 備用。生理鹽水為氯化鈉8.5 g+1 000 mL 蒸餾水,脫氯劑為硫代硫酸鈉1.8 g+100 mL 蒸餾水,滅菌方法同培養(yǎng)液。
1.2.2 實驗方法
從每份待檢樣本中各取10 mL 以平板計數(shù)法進行微生物檢驗,另各取10 mL 基于微濾膜分離技術(shù)獲取菌細(xì)胞進行微生物檢驗。
平板計數(shù)法檢驗方法:檢驗操作嚴(yán)格遵照國家標(biāo)準(zhǔn)進行,將待檢樣本置于培養(yǎng)基上,37 ℃恒溫下孵育24~48 h,顯微鏡下觀察有無菌落分布并統(tǒng)計細(xì)菌計數(shù),檢驗結(jié)果以CFU/mL 為單位報告[4]。
微濾膜分離技術(shù)檢驗方法:吸取1 mL 待檢樣本置于99 mL 無菌蒸餾水中,配置成含菌濃度<100 CFU/100 mL的樣本備用。取不銹鋼過濾裝置,預(yù)先高溫灼燒,充分滅菌,然后夾取無菌的微孔濾膜置于過濾頭上并正確安裝濾杯。將100 mL 稀釋后的待檢樣品搖勻并加入濾杯中,以真空泵抽濾至全部液體通過濾膜,然后加入100 mL 無菌生理鹽水2 次抽濾至全部液體濾完,關(guān)閉開關(guān)。輕夾微孔濾膜邊緣,正面朝上緩慢移至培養(yǎng)基上,要保證濾膜與培養(yǎng)基之間完全貼緊,無褶皺、卷邊及氣泡夾留。蓋好皿蓋,放入恒溫箱內(nèi)37℃恒溫下孵育15~24 h,顯微鏡下觀察有無菌落分布并統(tǒng)計細(xì)菌計數(shù)。基于微濾膜分離技術(shù)的微生物檢驗全過程于潔凈工作臺進行,嚴(yán)格遵循無菌化原則,所用儀器和濾膜均高壓滅菌,全程質(zhì)量控制,另設(shè)空白濾膜作為陰性對照,以保證檢驗方法的可靠性。細(xì)菌計數(shù)采用公式Q =F/G 進行計算,式中F 為全部菌落數(shù),G 為過濾樣本量,Q 為每1 mL 樣本中的細(xì)菌總數(shù),樣本稀釋則乘以稀釋倍數(shù)。
初檢完成后進行確認(rèn)實驗,將2 種檢驗方法第1 次檢測確認(rèn)的陽性樣本直接接種到培養(yǎng)液中,劃出典型菌落,再以培養(yǎng)基同法培養(yǎng)后,以AP120E 標(biāo)準(zhǔn)進行鑒定,同時對2 種方法檢驗結(jié)果不一致的樣本重新進行檢驗。確認(rèn)試驗主要是2 次復(fù)檢第1 次檢測的陽性結(jié)果是否存在假陽性情況以及2 種檢驗是否存在假陰性情況,2 次檢驗結(jié)果一致判定為真陽性或真陰性,2 次檢驗結(jié)果不符則再次復(fù)檢,以3 次檢驗中2 次相同的檢驗結(jié)果為最終檢驗結(jié)果。
另外,從2 種方法檢驗結(jié)果為陽性的樣本中隨機抽樣進行回收率實驗。從培養(yǎng)基斜面上取1 mL 新鮮培養(yǎng)的陽性菌,加入9 mL 生理鹽水中充分振蕩搖勻,取1 mL 菌懸液再次加入9 mL 生理鹽水中,得到濃度30~300 CFU/mL 的活性菌懸液。另以樣品替代生理鹽水,加陽性菌同法制作樣液,稀釋度與菌懸液相同。采用活菌計數(shù)實驗,分別取1 mL 菌懸液和1 mL 樣液,37℃恒溫孵育48 h 后計數(shù),分別記為A 和B。以公式C =(A-B)/A×100%計算回收率。
(1)比較平板計數(shù)法與微濾膜分離技術(shù)的微生物檢出率。(2)比較平板計數(shù)法與微濾膜分離技術(shù)檢驗微生物的出報告時間。出報告時間從樣本開始進行前處理起算。(3)比較平板計數(shù)法與微濾膜分離技術(shù)的活菌回收率。
采用SPSS 21.0 統(tǒng)計學(xué)軟件進行數(shù)據(jù)分析。計量資料以()表示,組間比較采用獨立樣本均數(shù)t檢驗;計數(shù)資料以n(%)表示,采用χ2檢驗。P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
將平板計數(shù)法與微濾膜分離技術(shù)對86 份樣本的細(xì)菌總數(shù)檢驗結(jié)果進行配對實驗,2 種方法共檢出陽性樣本47 份,其中微濾膜分離技術(shù)檢出45 份,占比為95.74%,平板計數(shù)法檢出陽性樣本47 份,占比為100%。47 份樣本中,2種方法共同檢出陽性45 份,平板計數(shù)法單獨檢出2 份,微濾膜分離技術(shù)未單獨檢出陽性樣本。2 種方法初檢86 份樣本的陽性檢出率比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),2例平板計數(shù)法檢驗陽性的樣本經(jīng)微濾膜分離技術(shù)復(fù)檢均明確陽性,基于復(fù)檢結(jié)果,微濾膜分離技術(shù)初診漏檢2 例,2種方法的復(fù)檢陽性率與漏檢率比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表1、表2。

表1 2 種檢驗方法初檢的配對實驗結(jié)果(n =86)

表2 2 種檢驗方法的初檢與復(fù)檢結(jié)果比較[份(%)]
平板計數(shù)法的培養(yǎng)時間為24~48 h,平均培養(yǎng)時間(32.75±4.36)h ;微濾膜分離技術(shù)的培養(yǎng)時間為15~24 h,細(xì)菌培養(yǎng)過程中通過觀察發(fā)現(xiàn),培養(yǎng)達(dá)到24 h 時菌落即可清晰計數(shù),延長培養(yǎng)時間至48 h,未見更多菌落生長,平均培養(yǎng)時間(20.24±3.17)h,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=21.521,P<0.001)。
微濾膜分離技術(shù)的陽性菌回收率總體高于平板計數(shù)法,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表3。

表3 2 種檢驗方法的陽性菌回收率比較
微濾膜分離技術(shù)以靜壓差為推動力進行膜篩分,可以從氣相和液相的物質(zhì)中去除和截留各種直徑大于半透膜孔徑的物質(zhì),從而實現(xiàn)分離、凈化和濃縮[5]。技術(shù)優(yōu)點:孔徑均勻,過濾精度高,可以全部截留大于孔徑的微粒;孔密度高,膜阻力小,孔體積占膜體積的70%以上,過濾速度快;孔膜厚度不超過150 μm,吸附量極少;微濾膜為高分子材料,不會有脫落介質(zhì),過濾純度高[6]。
文章體現(xiàn)了《臨床微生物學(xué)檢驗過程的生物安全風(fēng)險管理專家共識》[7]的臨床參考,分別以微濾膜分離技術(shù)和平板計數(shù)法對86 份待檢樣本進行微生物檢驗,2 種方法共檢出陽性樣本47 份,根據(jù)復(fù)檢結(jié)果微濾膜分離技術(shù)初診漏檢2 例,2 種方法的初檢與復(fù)檢陽性率以及漏檢率比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。提示2 種方法用于微生物檢驗的效果相當(dāng)。微濾膜分離技術(shù)可以通過膜篩分截留樣本中的菌細(xì)胞,然后再通過實驗室方法培養(yǎng)和檢驗,直徑大于半透膜孔徑的菌細(xì)胞均可以通過微濾膜分離技術(shù)獲取到,因此檢驗的敏感性與準(zhǔn)確性很高,根據(jù)本研究結(jié)果是可以替代平板計數(shù)法使用的[8]。有研究分別以平板計數(shù)法和微濾膜分離技術(shù)進行微生物檢驗,結(jié)果顯示陽性檢出率分別為98.15%和94.37%,檢驗敏感度分別為97.89%和92.10%,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)[9]。另有學(xué)者分別以濾膜法、多管發(fā)酵法和酶底物法檢測水體中的總大腸菌,結(jié)果顯示濾膜法與多管發(fā)酵法均準(zhǔn)確檢出陽性菌,酶底物法假陽性1 例[10]。由此可見,微濾膜分離技術(shù)用于微生物檢驗的陽性檢出率高,與本研究結(jié)論相符。另外,微濾膜分離技術(shù)所用濾膜為單片無菌包裝,檢驗時可直接取用,不僅可以節(jié)省滅菌時間,還能避免和減少2 次污染所致假陽性問題,更符合認(rèn)證規(guī)范[11]。不過,由于微濾膜的孔徑十分微小,如果待檢樣本中大尺寸懸浮微粒的量較大或是含有毒素成分,則可能影響微生物的正常培育,從而導(dǎo)致檢驗結(jié)果不準(zhǔn)確[12]。
出報告時間方面,本研究中微濾膜分離技術(shù)的平均培養(yǎng)時間(20.24±3.17)h,短于平板計數(shù)法(32.75±4.36)h,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),與文獻報道結(jié)論相符[13]。可見微濾膜分離技術(shù)的培養(yǎng)時間更短,微生物檢驗出報告更快。通常情況下,平板計數(shù)法的微生物培養(yǎng)時間在24~48 h,而基于微濾膜分離技術(shù)的微生物培養(yǎng)只需要15~24 h 就能讓菌落生長完全,此時即可清晰計數(shù),延長培養(yǎng)時間并不會有更多的菌落生長。這主要是因為基于微濾膜分離技術(shù)自帶濃縮效應(yīng),濾膜上的菌量高,生長與增殖更快,因此檢驗時間被大大縮短,檢驗效率得到提升,這對于及時發(fā)現(xiàn)待檢樣本中的致病微生物、保障民眾健康具有重要價值[14]。另外,以平板計數(shù)法進行微生物培養(yǎng)時,有些菌落埋藏在培養(yǎng)基內(nèi),計數(shù)困難,也影響檢驗效率。而使用微濾膜分離技術(shù)進行檢驗時,菌落直接在濾膜上培育生長,菌落個大良好,易于計數(shù),也在一定時間上縮短了檢驗時間。
此外,本研究中微濾膜分離技術(shù)的陽性菌回收率總體上也高于平板計數(shù)法,與文獻報道結(jié)論相符[15]。提示前者能更加真實地反映微生物對樣本的污染程度,不過需要注意的是,如果在微濾膜分離技術(shù)中濃度過大的菌懸液,過量的菌細(xì)胞聚集在濾膜上,也會給微生物培養(yǎng)生長和計數(shù)造成困難,有導(dǎo)致回收率降低的可能。因此,應(yīng)用微濾膜分離技術(shù)需要控制樣本的稀釋度,一般宜選擇活性菌濃度稀釋在30~300 CFU/mL 的菌懸液,以保證檢驗效果。
綜上所述,微生物檢驗中應(yīng)用微濾膜分離技術(shù)的陽性檢出率與平板計數(shù)法相當(dāng),但前者的培養(yǎng)時間更短,微生物檢驗出報告時間早,陽性菌回收率更高,效果優(yōu)于平板計數(shù)法,有助于提高檢驗效率,更真實地反映樣品的微生物污染程度。